peces

MODULO


SISTEMAS DE PRODUCCION ACUICOLA


Jairo Humberto Rojas Bonilla*

UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A
DISTANCIA
UNAD
Bogotá D.C 2006


*Médico Veterinario y Zootecnista, Especialista en Ecología y Medio Ambiente


CONTENIDO

Introducción

UNIDAD 1


ASPECTOS ZOOTÉCNICOS GENERALES DE LA PRODUCCIÓN
ACUÍCOLA


Capítulo 1. Consideraciones generales.

1.1 Generalidades sobre acuicultura
• Definiciones
• Ventajas
• Desventajas
1.2 Historia de la piscicultura en Colombia
• Evolución histórica
• Estadísticas de producción
Capítulo 2. Morfofisiología de los peces

2.1 Morfofisiología externa
• Evolución
• Piel y escamas
• Color
• Línea lateral
• Aletas
• Cabeza
• Branquias
• Tronco y cola
2.2 Morfofisiología interna
• Esqueleto
• Sistema muscular
• Sistema circulatorio
• Respiratorio

• Tracto digestivo
• Vejiga natatoria
• Sistema nervioso
• Oído
• Sistema urinario
• Morfofisiología de la reproducción
• Anatomía de las gónadas
• Control neuroendocrino
• Influencia ambiental
• Inducción a la puesta
• Sistema reproductivo y urinario
• Sistema esquelético
• Sistema nervioso
• Sistema circulatorio y respiratorio
• Sistema muscular
• Vejiga natatoria
Capítulo 3. Tipos de Explotación

3.1 Extensiva
• Definiciones
• Características
3.2 Semiextensiva
3.3 Intensiva
3.4 Superintensiva
Bibliografía

UNIDAD 2

SISTEMAS DE PRODUCCIÓN ANIMAL

Capitulo 1. Aspectos básicos para la acuicultura

1.1 Calidad del agua y productividad
. El recurso agua
. Elección de la fuente

. Parámetros físicos
. Parámetros químicos
. Parámetros microbiológicos
. Correctivos de la calidad
. Oxigenación del agua
. Cadena alimenticia
. El bentos
Capítulo 2. Infraestructura requerida en acuicultura

2.1 Construcción de estanques
. Topografía
. Tipos de suelo
. Oferta hídrica
. Tipos de estanques
. Estructuras de tierra
. Etapas construcción de estanques
. Impermeabilización
. Protección
. Estructuras hidráulicas
. Obras complementarias
2.2 Preparación y acondicionamiento del estanque
. Acondicionamiento.
. Encalado
. Llenado
. Fertilización e incremento de la producción natural
. Tipos de fertilizantes
Capítulo 3. Algunos aspectos sobre el manejo y bienestar animal

3.1 Nutrición y Alimentación de peces
. Introducción.
. Hábitos Alimenticios de los peces
. Exigencias de Nutrientes en las dietas (Proteína, lípidos, Carbohidratos,
Energía, Minerales, Vitaminas).
. Principales parámetros de medición de eficiencia.
. Estrategias de Alimentación (alimento natural, fertilización, Dietas
suplementarias, Dietas completas).
. Manejo de la alimentación.

3.2 Mejoramiento genético en peces.
.. Introducción
.. Sistemas de mejoramiento
.. Selección
.. Cruzamientos
.. Consanguinidad
.. Troncos de apareamiento
3.3Crioconservación de esperma de peces
.. Ventajas
.. Desventajas
.. Aplicaciones
. El esperma de peces
. Biología de la criopreservación
.. Crioprotectores
.. Evaluación seminal
.. Características fisicoquímicas
.. Características microscópicas
.. Congelación
.. Almacenamiento
.. Descongelación
.. Pruebas de efectividad
3.4 Sanidad acuícola
. Las enfermedades en peces de cultivo
. Clasificación de las enfermedades.
. Mecanismos de defensa de los peces
. Características de un pez sano
. Signología clínica de un pez enfermo
. Factores que afectan los peces de cultivo.
. Técnicas de muestreo para análisis de peces
. Enfermedades producidas por bioagresores.
. Enfermedades bacterianas
.. Hongos y micosis
. Enfermedades virales.
.. Problemas nutricionales
.. Control de enfermedades
. Métodos de tratamiento

3.5 Cultivo de peces en jaulas flotantes
.. Introducción
. Selección del sitio y ubicación de las jaulas.
. Calidad del agua
. Batimetría y tipos de fondo.
. Vientos, corrientes y mareas.
.. Infraestructura
.. Tipos de jaula
. Componentes de una jaula flotante
.. Jaulón de estructura modular.
.. Fases de manejo.
.. Impacto ambiental.
.. Ventajas.
.. Limitantes
3.6 Otros Sistemas de Producción
.. Piscicultura en corrales
.. Piscicultura en arrozales
. Cría asociada con otras especies
Bibliografía

UNIDAD 3

ESPECIES PISCÍCOLAS DE IMPORTANCIA ECONÓMICA EN
COLOMBIA

Capítulo 1. Cachama

1.1 Introducción
1.2Características de la especie
. Descripción de la especie
1.3 Reproducción en cautiverio
.. Manejo de reproductores
. Selección de reproductores

.. Inducción hormonal
.. Incubación
.. Larvicultura
.. Enfermedades
.. Engorde
.. Crecimiento
.. Alimentación
.. Procesamiento
.. Prevención de enfermedades
. Tipos de cultivo
.. Comercialización
Capítulo 2. . Trucha

2.1 Introducción
2.2 Características de la especie
.. Clasificación taxonómica
2.3 Producción de semilla
2.4 Infraestructura
.. Estanques para reproductores
. Sala de incubación
.. Filtro
.. Incubadoras
. Canales de reabsorción de vesícula vitelina y alevinaje.
2.5 Reproducción
.. Natural
.. Artificial
. Selección y manejo de reproductores.
. Metodología del desove
2.6 Fecundación artificial
.. Fertilización
.. Incubación
.. Desarrollo del embrión
.. Eclosión

.. Larvas
.. Semilla importada
. Control sanitario en ovas y larvas
.. Alevinaje
. Transporte de ovas y alevinos
2.7 Engorde
.. Estanques
.. Jaulas
.. Manejo de estanques.
.. Alimentación
.. Selección
.. Sacrificio
Capítulo 3. Tilapia roja y plateada

3.1 Introducción
3.2 Aspectos reproductivos
. Producción y selección de reproductores.
.. Producción de alevinos
. Obtención de poblaciones monosexo
. Reversión sexual (insumos requeridos, procedimiento
3.3 Tipos de cultivo
.. En jaulas
. Canales de cemento o tierra
. Estanques en tierra
3.4 Fases del cultivo
.. Levante
.. Pre-engorde
.. Engorde
.. Policultivos
3.5 Manejo de los estanques
3.6 Cosecha y procesamiento

3.7 Manejo postcosecha
.. Enhielado
.. Salado
.. ahumado
Capítulo 4. Bocachico

4.1 Características anatómicas
4.2 Comportamiento natural
4.3 Alimentación
4.4 Reproducción natural
4.5 Manejo en cautiverio.
4.6 Instalaciones
4.7 Selección de reproductores
.. Manejo de reproductores
. Sala de manejo
4.8 Proceso de inducción
4.9 Incubación
.. Sala de incubación
4.10 Larvicultura
. Sala de producción de plancton y Artemia salina.
4.11 Alevinaje
4.12 Levante
Capítulo 5. Bagre
5.1 Características generales
5.2 Hábitos
5.3 Reproducción y manejo en cautiverio.
.. Inducción hormonal
.. Incubación
5.4 Etapas del alevinaje

.. Primera etapa
.. Segunda etapa
.. Tercera etapa
5.5 Engorde
Capítulo 6. Camarón de agua dulce

6.1 Anatomía
6.2 Biología
.. Hábitos alimenticios
. Muda y desarrollo
6.3 Reproducción
.. Dimorfismo sexual
.. Apareamiento y desove
.. Incubación
.. Desarrollo larval
.. Juveniles
6.4 Cría
.. Ventajas
. Cría de larvas
. Tipos de aguas para larvicultura.
.. Alimentación
.. Calidad de agua
.. Densidad de población
. Separación de postlarvas y aclimatación.
.. Cosecha y
.. transporte de postlarvas
6.5 Cultivo en estanques
.. Densidad de siembra
.. Alimentación
.. Crecimiento y supervivencia
.. Cosecha y producción
.. Sanidad

Capítulo 7. Peces Ornamentales

7.1 Introducción
7.2 Principales especies cultivadas
.. Carácidos
.. Ciprínidos
.. Silúridos
.. Ciprinodóntidos
.. Poecílidos
.. Anabántidos
.. Cíclidos
7.3 Cultivo del Escalar
.. Clasificación
.. Agua
.. Alimentación
.. Reproducción
.. Larvicultura
.. Alevinaje
7.4 Cultivo del Disco
.. Clasificación
.. Agua
.. Alimentación
.. Reproducción
.. Larvicultura
.. Alevinaje
7.5 Cultivo del Oscar
.. Clasificación
.. Agua
.. Alimentación
.. Reproducción
.. Larvicultura
.. Alevinaje
Bibliografía


Listado de Tablas

Número Nombre Página
1 Historia de la Acuicultura en Colombia 3,4 y 5
2 Estadísticas de Producción de la
acuicultura en Colombia (1991-1999) INPA,
1999
5 y 6
3 Dosis hormonales de EPC para la
inducción a 27 oC
27
4 Concentración máxima de salinidad
tolerado por diferentes especies (Boyd y
Lichtkoppler, 1979)
36
5 Clasificación del agua de acuerdo a su
dureza
41
6 Dosificación de abonos químicos 62
7 Composición porcentual con base en la
materia seca del alimento natural presente
en el agua de los estanques (Adaptado de
Hepher, 1989).
69
8 Índice de herencia de la ganancia de peso
en diferentes especies (adaptado F.
Gallego)
73
9 Tasa de alimentación de acuerdo con el
peso esperado.
106
10 Valores de importancia para preservar los
ambientes acuáticos.
106
11 Porcentaje promedio de proteína requerido
en la dieta de acuerdo al peso
120
12 Paralelo comparativo entre Cachama
Blanca y Cachama Negra (Bello y Rivas,
1992)
120
13 Datos de crecimiento y peso y su relación
con la tasa alimenticia diaria, en un cultivo
típico de cachama
125-126
14 Contenido Proteínico del alimento de
acuerdo con el tiempo de cultivo.
126
15 Pérdidas por evisceración según el peso de
sacrificio.
126
16 Estructura de costos para un pequeño
productor
126-127


17 Relación respecto a la densidad en
estanques rectangulares y circulares.
143-144
18 Caudal mínimo en litros/minuto para 10000
alevinos según temperatura del agua.
144
19 Necesidades de espacio para levante de
los alevinos de trucha
144
20 Influencia de la temperatura del agua en
el crecimiento de los alevinos de trucha
arcoiris.
145
21 Tamaño máximo y mínimo de las truchas
en un mismo estanque
145
22 Relación entre la separación de las varillas
con respecto a la longitud del pez.
146
23 Transporte de truchas 148
24 Relación entre el tamaño de la trucha y el
ojo de la luz de la malla.
151
25 Caudal necesario para 10000 truchas
según la temperatura del agua.
153
26 Niveles de proteína sugeridos para levante
de reproductores
158
27 Composición genética de algunas especies
del género Oreochromis
162
28 Parámetros de producción de Tilapia en
jaulas Piraquive y Vélez, 2000
170
29 Parámetros de producción de tilapia en
canales Berman 1997
171
30 Parámetros de producción de tilapia en
estanques en tierra
173
31 Cantidad de alimento a suministrar según
el peso y biomasa
174
32 Cantidad de alimento a suministrar según
el peso y biomasa
174
33 Cantidad de alimento a suministrar según
el peso y biomasa
175
34 Preparación de mezclas de agua dulce y 200


agua de mar
35 Preparación de agua de mar artificial –
Fórmula sugerida
200
36 Ejemplo 1 de dietas como alimento
suplementario en la cría de larvas de
camarón de agua dulce
201
37 Ejemplo 2 de dieta como alimento
suplementario en la cría de larvas de
camarón de agua dulce
202
38 Crecimiento promedio del Camarón de
Agua Dulce
206
39 Principales especies de carácidos
ornamentales
210
40 Principales especies de Ciprínidos
ornamentales
212
41 Principales especies de silúridos
ornamentales
215
42 Principales especies de ciprinodóntidos
ornamentales
216
43 Principales especies de poecílidos
ornamentales
217
44 Principales especies de anabántidos
ornamentales
219
45 Principales especies de cíclidos
ornamentales
220

Listado de fotografías

Número Descripción Página
1-6 Secuencia de extracción de huevos a una hembra
yamú
27-28
7 y 8 Medición de temperatura y análisis por colorimetría 34
9 y 10 Laboratorios para análisis físico químico del agua 38
11 y 12 Oxigenación del agua 44
13 y 14 Construcción manual de estanques 46
15 y 16 Construcción mecánica de estanques 47
17 y 18 Panorámica jaulas en embalse de Betania 49
19 Panorámica Lago de Tota Boyacá 50
20 y 21 Construcción diques y drenajes 52
22 y 23 Compuerta e bocatoma y canal de distribución del
agua
55


24 y 25 Desarenadores 56
26 y 27 Canales de distribución del agua a los estanques 57
28 Protección de estanques con mallas
antidepredadores
59
29 Extracción de semen de un bagre 79
30-31 Panorámica Jaulas Flotantes Embalse Betania (Huila
– Colombia)
92
32 y 33 Ceba de mojarra roja en jaulas flotantes Embalse
Betania (Huila Colombia)
91
34 Sistema de jaulas flotantes 91
35 Panorámica Jaulas flotantes para ceba de trucha
arco iris - Lago de Tota (Aquitania Boyacá Colombia)
94
36 Reproductor de Cachama Blanca 111
37 Reproductor de Cachama negra 113
38 y 39 Pesca de reproductores en el estanque 115
40 y 41 Sexaje y selección de los reproductores 115
42 y 43 Comparación macho hembra 115
44 y 45 Incubadoras Artificiales 112
46 Ejemplar adulto de trucha Arco Iris 117
47 Pequeños estanques de producción artesanal de
trucha.
148
48 y 49 Transporte y siembra de alevinos de trucha 148
50 Panorámica cultivo de truchas jaulas flotantes Lago
de Tota (Boyacá Colombia)
151
51 Nidos de tilapias en estanques en tierra 159
52 Conteo de alevinos mediante volumetría 160
53 Inyección de oxígeno para transporte de alevinos 160
54 Protección con mallas antidepredadores 161
55 Hapas para reversión sexual 165
56 Suministro de alimento para reversión sexual 165
57 y 58 Canaletas en cemento con tilapia roja 171
59 y 60 Estanques en tierra 172
61 y 62 Producción en jaulas flotantes 172
63 y 64 Estanques para reversión sexual 173
65 y 66 Alevinos en levante 173
67 Cosecha de Tilapia roja 177
68 Planta de tratamiento de aguas para el 178


procesamiento postcosecha
69 Llegada de peces a la planta de sacrificio 179
70 Descamadora 179
71 y 72 Cuartos fríos de conservación 179
73 Planta de sacrificio 180
74 Selección y empaque 180
75 Ejemplar adulto e bagre rayado 187
76 Sujeción y extracción de huevos 189
77 Extracción de huevos de una hembra de bagre 190
78 Extracción de semen de un bagre 191
79 Camarón adulto 195
80 y 81 Larvas de camarón de agua dulce 195
82 y 83 Acuarios usados en piscicultura ornamental 208
84 y 85 Plantas Acuáticas utilizadas en los acuarios 208
86 y 87 Metynnis sp. (pez moneda) 209
88-94 Diversidad de especies del género Betta 218
95 y 96 Adultos y juveniles de escalares 220
97-102 Diversidad de especies del escalar 221-222
103 Estanque en tierra para reproducción de escalar 225


Listado de esquemas

Número Nombre Página
1 Morfología externa de un pez 7
2 Morfología general de un pez 8
3 Disposición de las escamas en la dermis y epidermis 11
4 Estructura ósea de la cabeza de un pez 12
5 Esqueleto de un pez 13
6 Morfología de una vértebra 14
7 Dinámica de la respiración en el pez 16
8 Posiciones y formas de la boca 17
9 Troncos de apareamiento 76


PRODUCCION ACUICOLA



Panorámica Granja Piscícola

UNIDAD DIDACTICA 1

ASPECTOS ZOOTECNICOS GENERALES

Consideraciones generales

Generalidades sobre la Acuicultura

La Acuicultura es el cultivo de organismos acuáticos, incluyendo los peces,
moluscos, crustáceos y plantas acuáticas, con diferentes fines. Esto implica la
permanente intervención del hombre en el proceso, en operaciones como la
siembra, la nutrición, la sanidad, la reproducción, el manejo y la protección contra
los depredadores; en general las actividades de producción y postproducción,
actuando siempre con una cultura de respeto y protección de los recursos
naturales y el medio ambiente.

Existen algunos reportes históricos del siglo V a.C en China sobre testimonios
que describen el cultivo de carpas, con fines tanto ornamentales como de
consumo.

Colombia cuenta con excelentes condiciones climáticas, topográficas,
hidrológicas y edafológicas para el desarrollo de la acuicultura. Ofrece un régimen
de temperaturas estable durante todo el año, cuenta con todos los pisos térmicos


y altitudes que van desde los 0 hasta los 5800 msnm. Nuestro país es considerado
a nivel mundial como una potencia en recursos hídricos y biodiversidad.

El volumen total de reservas de agua existentes en el país se encuentra distribuido
en 40 grandes lagunas y embalses que abarcan una superficie de 65.526 ha; el
espejo de agua ocupado por ciénagas y otros cuerpos de agua similares se estima
en 607.504 ha, situándose el 57.5 % en los departamentos de Bolívar y
Magdalena (Marín, 1992).

Además, Colombia tiene tres cordilleras con innumerables nacimientos,
manantiales, arroyos, quebradas y ríos, de excelente calidad físico química, que
en sus desembocaduras forman zonas estuáricas y complejos cenagosos.

Colombia además ha sido declarada como poseedor de una alta biodiversidad en
flora y fauna terrestre y acuática y como reserva genética a nivel mundial.

Ventajas de la Acuicultura

¾ Mayor producción por unidad de área comparada con la tierra.

¾ Los peces son excelentes convertidores de alimento; pues, por ser de
sangre fría no gastan energía para el mantenimiento de su temperatura
corporal.

¾ La densidad corporal de los organismos acuáticos (excepto los de concha
dura), es casi igual a la del agua que habitan, por lo que consumen menos
energía para su soporte físico y la invierten en su crecimiento.

¾ Permite utilizar suelos no aptos o de baja productividad agrícola.

¾ Permite el aprovechamiento de cuerpos de agua utilizados para la
generación de energía, riegos o consumo de animales.

¾ Contribuye con el desarrollo de sistemas integrados de producción, al
utilizarse el estiércol de otros animales para la fertilización de los estanques
y a su vez para riego de pasturas y demás cultivos agrícolas.

¾ Gracias a las investigaciones científicas se han logrado tecnologías de
producción y reproducción, bajo criterios de sostenibilidad y competitividad.

¾ Producción de alimento de muy alta calidad nutricional.

¾ Empleo de la mano de obra familiar en el proceso productivo.

¾ Representa una muy promisoria opción empresarial.


¾ Existe apoyo estatal para la construcción de instalaciones piscícolas
mediante el Incentivo a la Capitalización Rural –ICR, en donde se otorga un
subsidio sobre los préstamos tramitados ante entidades bancarias a través
de FINAGRO, para los productores interesados en este campo.

¾ Ayuda a la conservación de especies en peligro de extinción, tanto con
fines de repoblamiento como de investigación.

¾ Permite el aprovechamiento racional y sostenible de la gran riqueza hídrica
del país.

¾ Existe una gran diversidad de especies acuícolas en Colombia para
identificar, investigar y explotar con criterios de competitividad y
sostenibilidad.

¾ La creciente demanda poblacional exige políticas contundentes de
seguridad alimentaria; siendo la acuicultura una excelente opción para la
oferta de proteína y minerales de origen animal.

Desventajas

. Requiere de excelentes condiciones fisicoquímicas del agua y de oferta
permanente del recurso.
. Altos costos de inversión en infraestructura física si la empresa se proyecta
como competitiva y sostenible.
. Limitados canales de comercialización mientras se incursiona en el
mercado regional y nacional.
. Poca oferta de personal técnicamente formado en el área para el manejo de
las piscifactorías.
Tabla No. 1 Historia de la Acuicultura en Colombia

Año Acontecimiento
1930 Introducción de la Trucha Arcoiris (Onchorhynchus mykiss) para
repoblamiento (Lago de Tota – Boyacá) y con fines de pesca
deportiva.


Introducción de carpa (Cyprinus carpio) y la Mojarra (Oreochromis
mossambicus).
1960 Primer curso de piscicultura auspiciado por la FAO.
1965 Establecimiento de un programa de piscicultura en la Universidad
de Caldas (tecnologías para la zona cafetera).
1967 Introducción de la Tilapia rendalli para fomento por parte de la
Federación Nacional de Cafeteros.
Creación del Instituto de Piscicultura Tropical de Buga (Valle del
Cauca) con el fomento del Tucunaré (Cichla ocellaris) para control
de tilapias en estanques.
1968 Creación del Instituto Nacional de los Recursos Naturales
Renovables y del Ambiente – INDERENA; entre sus funciones la
promoción, administración, investigación y fomento de la
acuicultura.
1971 Primer Seminario Nacional de Acuicultura, destacándose las
necesidades de investigación en especies nativas como el
bocachico Prochilodus magdalenae y la Dorada Brycon moorei.
1972 Iniciación del Proyecto INDERENA-FAO para el desarrollo de la
pesca continental para la identificación e investigación de especies
nativas para su incorporación en la acuicultura.
1974 Realización del Segundo Seminario Nacional de Acuicultura.
1975 Puesta en marcha del Programa de Desarrollo Rural integrado DRI,
para fomento de la piscicultura en pequeños campesinos.
1976 Construcción de las Estaciones Piscícolas de Repelón (Atlántico) y
la de Gigante (Huila), como inicio del proyecto INDERENA-Agencia
Interamericana para el Desarrollo (AID).
1979 Introducción del Camarón Gigante Macrobrachium rosembergii y la
Tilapia Nilótica Oreochromis niloticus.
Realización del Tercer Seminario de Acuicultura organizado por la
Universidad del Valle.
Principios
80´s
Reproducción inducida de la Cachama Blanca (Piaractus
brachypomus) y Cachama Negra (Colossoma macropomun), en la
Estación Piscícola “La Terraza” Villavicencio Meta

1984-1990 Incorporación del cultivo de Camarón Marino al Plan de Fomento a
las Exportaciones.
1985 El INDERENA y COLCIENCIAS estructuran el Programa Nacional
para el Desarrollo de la Acuicultura, bajo los lineamientos y como
componente integral del Plan Nacional de Investigaciones
Pesqueras, PLANIPES. Se dio origen a la Red Nacional de
Acuicultura.
1988 Se establece el Proyecto Integrado para el Desarrollo de la
Acuicultura en Colombia, patrocinado por COLCIENCIAS y el
Centro Internacional de Investigaciones para el Desarrollo del


Canadá (CIID)
1989 Puesta en marcha del Programa Nacional de Transferencia de
Tecnología Agropecuaria PRONATTA; creación de las Unidades
Municipales de Asistencia Técnica Agropecuaria UMATA, para
brindar la asesoría técnica integral a los pequeños productores
agropecuarios, incluida la acuicultura.
Logro de la reproducción inducida del Bagre Rayado
Pseudoplatystoma fasciatum en la Estación Piscícola de San
Silvestre (Barrancabermeja).
1991 Inicia labores el Instituto Nacional de Pesca y Acuicultura –INPA
creado por la Ley 13 de 1990.
Al interior del Ministerio de Agricultura se creó la Subdirección de
Producción Pesquera que contó con tres divisiones: Acuicultura,
Pesca Artesanal y Pesca Industrial.
2000-2001 Puesta en marcha de las cadenas productivas, dentro del marco de
las políticas de competitividad y productividad de los Ministerios de
Agricultura y Desarrollo Rural y el Ministerio de Comercio Exterior,
especialmente para tilapia, cachama, trucha y camarón.
Creación de la Asociación Nacional de Acuicultores – ACUANAL.
Creación de la Corporación Centro de Investigaciones de la
Acuicultura de Colombia –CENIACUA.
Conformación de la Federación Nacional de Acuicultores
FEDEACUA que congrega a los gremios productores del país,
como ASOACUICOLA (Antioquia), ACUIORIENTE (Llanos
Orientales), ACUAOCCIDENTE (Occidente de Colombia) y
APISHUILA (Huila).

Tabla No. 2 Estadísticas de Producción de la acuicultura en Colombia (1994-1999)
INPA, 1999


Especie 1994 1995 1996 1997 1998 1999
Bocachico 0 0 2.5 318 1202 1311
Cachama
blanca
4020 3181 6154 12131 12217 12217
Cachama
negra
0 0 0 521 409 445
Carpa 99 3 83 285 794 866
Camarón 8944 8091 5221 6907 7466 9227
Ostras 0 0 10 15 15 16
Tilapia
roja
8140 14204 13594 14554 156240 16612


Trucha 1495 9297 44506 7822 6481 7065
Yamú 0 0 0 0 234 256
Tilapia 2944 1852 430 1558 2963 3230
TOTAL 25642 36628 30000 44203 47141 51376

Morfología de los peces

Morfología externa

Evolución

Los primeros vertebrados conocidos eran peces sin mandíbulas que dejaron
restos fosilizados en las rocas del ordovícico, periodo que comenzó hace unos 500
millones de años. Las formas más primitivas eran de pequeño tamaño —rara vez
superaban unos pocos centímetros de longitud—, y tenían las branquias en una
serie de sacos. Los primeros peces con mandíbulas evolucionaron durante el
devónico, la llamada era de los peces, y se convirtieron en la forma dominante de
vida vertebrada, tanto en hábitats marinos como de agua dulce. Los principales
linajes de peces, como los tiburones, el celacanto y los peces óseos, aparecieron
hacia finales de este periodo.

Los peces representan más de la mitad del total de los vertebrados modernos
conocidos. Los científicos reconocen un número total estimado de 22.000
especies vivas, en comparación con las 21.500 de anfibios, reptiles, aves y
mamíferos. Al contrario de lo que ocurre con los demás vertebrados, siguen
descubriéndose nuevas especies de peces a buen ritmo; se espera que se
aproxime a las 28.000 el número final de especies reconocidas.

Anatomía

Los peces viven en un medio que es casi ochocientas veces más denso que el
aire; por lo tanto, la morfología de su cuerpo está diseñada para soportar la fuerte
presión del medio acuático. Los desplazamientos en el agua están relacionados
con la forma del cuerpo y la fricción de este contra las capas líquidas.

Los nadadores más rápidos presentan un cuerpo de aspecto fusiforme
perfectamente hidrodinámico, como el atún, el salmón o el bacalao. Los
nadadores resistentes tienen el cuerpo más alargado, como es el caso de las
anguilas o el de los pejesapos. Los peces que viven en el fondo marino y los de
aguas dulces presentan un aplastamiento dorsoventral (especies bentónicas,
como rayas y peces rata). Algunas otras especies son prácticamente esféricas,
como el pez luna, cuyo cuerpo tiene forma de un grueso disco, o el pez globo, que
al excitarse adopta una forma esférica cubierta de púas.


Esquema No.1 Morfología externa de un pez

En general, los peces tienen forma ahusada, con el cuerpo moderadamente
aplanado en los lados y más afilado en la zona de la cola que en la de la cabeza.
Sus principales rasgos son el juego de vértebras repetido en serie y los músculos
segmentados, que permiten al pez desplazarse moviendo el cuerpo de forma
lateral. Por lo general el cuerpo está dotado de una serie de aletas, formadas por
membranas con una armadura de espinas, que actúan como medio de propulsión

o de orientación del movimiento. En la línea dorsal, en la parte superior del cuerpo,
puede haber una o más aletas dorsales. En el extremo de la cola hay una aleta
caudal que es el principal órgano para generar el empuje por el que se mueve la
mayoría de las especies. En la línea ventral hay una o más aletas anales, situadas
entre la abertura anal y la cola. El cuerpo tiene dos pares de aletas laterales: las
pectorales, que suelen estar situadas a los costados, detrás de los opérculos que
cubren las branquias, y las pélvicas, que se encuentran en la zona abdominal,
entre la cabeza y la abertura anal. Entre los peces hay gran diversidad de formas y
peculiaridades anatómicas, que oscilan desde las de la anguila (similar a una
serpiente) hasta las del pez luna, que tiene forma de globo, o los peces planos
como el lenguado. Las aletas pueden estar muy modificadas o ausentes, de
acuerdo con los distintos modos de vida. Algunas especies de anguilas de las
ciénagas carecen de casi todas las características que distinguen a los peces,
como las branquias, las aletas y las escamas, e incluso pueden llegar a ser sobre
todo terrestres. Unas 50 especies de peces óseos carecen de ojos.

Esquema No. 2 Morfología general de un pez


a Abertura nasal o narinas
b Branquia
c Ojo
d Aleta dorsal ósea
e Aleta dorsal cartilaginosa
f Línea lateral
g Aleta caudal
h Aleta anal
i Aleta abdominal
j Corazón
k Hígado
l Estómago
m Vejiga natatoria
n Ovario

Piel y escamas

La piel de los peces se compone de dos capas principales: la epidermis, ubicada
en el exterior, y la dermis o cutis, que se asienta sobre los músculos. Las
secreciones de las numerosas glándulas mucosas situadas en la epidermis
excretan un mucus que reduce la resistencia por fricción del agua y constituye una
protección contra los parásitos. La epidermis de algunas especies forma
sustancias duras, como los dentículos cutáneos.


La mayoría de los peces están recubiertos de escamas que les protegen
eficazmente del medio, pero no todos los peces tienen escamas. Estas se
desarrollan a partir de pliegues dérmicos recubiertos de una epidermis con gran
cantidad de queratina (sustancia que constituye la capa externa de la epidermis de
los vertebrados); así, el cuerpo de la mayor parte de los peces se recubre de una
capa de escamas, placas óseas o córneas dispuestas en hileras solapadas en las
que el extremo libre de una escama se superpone al extremo superior de la
siguiente. Las escamas suelen estar cubiertas por una delgada capa epidérmica.
En cierto número de especies las escamas se transforman en placas óseas; en
algunas, como la anguila, las escamas son diminutas, mientras que en otras,
como el siluro, están casi ausentes.

Las escamas pueden ser de varios tipos:

. Ganoideas: con forma de rombo y cubiertas con una capa similar a un
esmalte.
. Placoideas: son las más primitivas. Se puede decir que este tipo de
escamas son como dientes cutáneos, compuestos de pulpa dentaria, marfil
y esmalte. Son típicas de los tiburones; de ahí que su piel se sienta como
lija.
. Cicloideas: son de gran espesor, con forma de rombo, redondas o
elípticas, de bordes lisos y se recubren de un esmalte brillante. El conjunto
de estas escamas constituye una verdadera coraza protectora, tal como
ocurre en el caso de las percas.
. Ctenoideas: son semejantes a las escamas cicloideas, pero uno de sus
bordes basales está provisto de dientes (en forma de peine); es decir con
bordes expuestos y serrados. Este tipo de escamas es el más abundante
entre los peces.
Color

La coloración de los peces se debe a los esquemacromos (colores que resultan de
la configuración física) y a los biocromos o pigmentos verdaderos (Fox, 1953). Las
células especializadas que dan color a los peces son de dos clases, los
cromatóforos y los iridocitos. Los cromatóforos están ordenados por tonos y dan el
verdadero color. Están localizados en la dermis, ya sea por fuera o bajo las
escamas. Los gránulos pigmentarios, que son inclusiones citoplásmicas de los
cromatóforos, son los corpúsculos que proporcionan el color; de acuerdo a los
colores de sus gránulos pigmentarios los cromatóforos básicos son rojo y naranja
(eritróforos), amarillo (xantóforos), negro (melanóforos) y blanco (leucóforos)
(Lagler et al, 1984).

Se produce un cambio de color cuando se extiende o contraen los diferentes
pigmentos de las células. También un cambio de la intensidad de la luz influye en


esos procesos, por lo que algunos peces pueden adaptar su coloración a las
diferencias de la luminosidad y del entorno, bajo el control de la hipófisis.

La línea lateral

A los lados del cuerpo del pez se puede observar una raya longitudinal o línea
lateral como ligera depresión, por donde va un cordón nervioso cuya función es
sensora y detecta así las vibraciones del agua, las variaciones de temperatura y la
ubicación del pez dentro del cuerpo de agua. Puede ser continua desde el
opérculo hasta la cola, o interrumpida en dos segmentos.

Las aletas

Representan los órganos locomotores de los peces; las necesitan para
impulsarse, guiarse y frenar su movimiento esta agua. Las hay pares e impares.
Las aletas pares situadas en los costados, detrás de la cabeza, como las
pectorales, o situadas en la región ventral, como las pélvicas, que se utilizan como
timones para encauzar la dirección, se relacionan más o menos directamente con
el resto de su esqueleto; y, las impares, como la caudal o la cola, la anal y las
dorsales (una o más). La aleta caudal sirve para impulsar al pez, mientras que la
anal y la dorsal se utilizan como estabilizadores. En los peces óseos, las
pectorales están unidas al cráneo; en los peces cartilaginosos, están insertas en la
musculatura por medio de elementos cartilaginosos independientes.

Las aletas son pliegues epiteliales armados sobre radios duros o segmentos. Los
duros, como los de la primera aleta dorsal de la Perca, son realmente rígidos y se
denominan espinosos. Los segmentos, además de flexibles, se ramifican más o
menos cerca del borde de la aleta, y se denominan radios blandos. Las aletas
pueden moverse desde el tronco: tienen en la base dos grupos de músculos que
le permiten al pez plegarlas, desplegarlas y utilizarlas para guiarse y hacer
diversos movimientos. Son impares la dorsal, la caudal y la anal; pares las
pélvicas y las pectorales. La posición de las pares puede ser muy diferente, según
el grupo ictiológico, sobre todo las pélvicas, ya desplazadas hacia atrás (posición
abdominal) o bien hacia delante (torácica o incluso yugular). Algunas especies
carecen de aletas pélvicas.

La ictiología, ciencia de los peces, acude a la disposición de las aletas en el
cuerpo del pez como importante carácter diferenciador. Y reúne en la fórmula
radial el número y estructura de las aletas de cada especie de pez.


Esquema No.3 Disposición de las escamas en la dermis y epidermis

La cabeza

Comprende desde el hocico hasta el borde posterior de los opérculos, que son
unos huesos ligeramente cóncavos que cubren y protegen las branquias (agallas);
y está conformada por el cráneo, las mandíbulas, los opérculos y los arcos
branquiales.

En los peces el extremo anterior de la cabeza es agudo, y por encima de la boca
se forma una prolongación que se llama rostro. A los lados del rostro se sitúan las
aberturas nasales o narinas, aunque hay peces en los cuales se ubican en la cara
ventral, esta sirven para oler más no para respirar.

Los ojos son redondos, planos y grandes. Carecen de párpados y en algunas
especies se desarrolla una membrana sencilla horizontal o dos verticales, el iris no
es contráctil, el cristalino es esférico por lo que los peces tienen visión corta.

La boca suele estar en el extremo anterior de la cabeza o debajo, cuando existe
un hocico o rostro. Otras veces ocupa una posición superior, en especial cuando
la mandíbula inferior es más larga que la superior.


Las Branquias

Las branquias son los órganos respiratorios de los peces, y están formadas por
una serie de laminillas cutáneas, cubiertas por una fina piel, ubicadas sobre los
arcos branquiales, sean estos óseos o cartilaginosos. Tienen una gran irrigación
sanguínea y a ello deben su color rojo intenso. Estas branquias son conocidas
como agallas y se ubican generalmente bajo un opérculo (tapadera) en la parte
posterior de la cabeza.

En los gnatostomados las branquias son los principales órganos de la respiración,
en este caso los arcos branquiales llevan consigo las branquias. En los tiburones,
las branquias están contenidas en cavidades. Los septos interbranquiales que
separan las cavidades en los Chondrichtyes están reducidos en grados variables
en los Osteichthyes donde las branquias de todos los arcos yacen en una cámara
más o menos común.

Además de proteger los filamentos branquiales, las branquiespinas también están
especializadas en todo lo relacionado con los alimentos y los hábitos alimenticios
de los peces. Muchos comedores de plancton tienen las branquiespinas
alargadas, son numerosas y lameladas u ornamentadas de una manera variable,
posiblemente para aumentar la eficiencia de la filtración (Lagler et al, 1984).

El agua aspirada a través de la boca, pasa por entre las laminillas branquiales,
donde se produce el intercambio gaseoso; es decir, la sangre absorbe el oxígeno
y descarga el anhídrido carbónico. Algunos peces rápidos, como la caballa, nadan
con la boca entreabierta, produciendo así una corriente de agua continua a través
de las branquias, que provee del oxígeno necesario para su intensa actividad
natatoria.


Esquema No.4 Estructura ósea de la cabeza de un pez


El tronco y la cola

Los peces no tienen cuello, entonces el tronco le sigue inmediatamente a la
cabeza terminando en la base de la cola. Externamente el tronco está formado
por músculos que conforman la canal, la que da el valor comercial en el mercado.

La cola comienza cerca del ano y en la mayoría de los peces termina en una aleta
caudal. La parte musculosa recibe el nombre de pedúnculo caudal y desempeña,
junto con la aleta caudal, un papel importante en los movimientos y en la
orientación dentro del agua. La forma del pedúnculo y de la aleta incide en la
velocidad y la motricidad para las distintas especies.

La aleta anal, generalmente pequeña, se ubica justo tras la abertura anal.
Las aletas dorsales, ubicadas en la línea media superior del pez, pueden ser una o
varias (como en el caso de las sierras y atunes) e incluso pequeñas y adiposas,
como la aleta dorsal posterior de salmones y truchas.

Morfofisiología interna

Esqueleto

La cubierta escamosa del cuerpo de un pez constituye su esqueleto dérmico o
exoesqueleto. El endoesqueleto (o esqueleto óseo interno) de la mayor parte de
los peces actuales está formado por un cráneo con mandíbulas equipadas de
dientes, una columna vertebral, costillas, un arco pectoral y una serie de huesos
interespinales que sustentan las aletas. En los peces antiguos, representados en
nuestros días por especies como el esturión, el esqueleto es cartilaginoso en lugar
de óseo.


Esquema No. 5 Esqueleto de un pez

La columna vertebral se compone de un número variable de vértebras unidas
entre sí. Las vértebras presentan sobre el centro un orificio por el que pasa el


sistema nervioso central, la médula espinal. Sobre la cavidad ventral presentan las
vértebras debajo unos apófisis espinosos dobles en los que se insertan las
costillas.


Esquema No.6 Morfología de una vértebra

El sistema muscular

Ocupa la mayor parte del cuerpo del pez. La musculatura de los lados del tronco
sirve para la locomoción, se emplea al máximo y está muy desarrollada. Se
extiende desde la nuca hasta la raíz de la aleta caudal y forma dos haces iguales
situados en ambos lados de la columna vertebral. Los músculos se componen de
numerosos segmentos sucesivos unidos entre sí sin sutura, como en paquetes.
De la musculatura del tronco se ha desarrollado también la de las aletas; se
compone de dos músculos principales que producen la extensión y contracción de
las mismas.

El músculo del pez tiene solamente un 3% de tejido conectivo lo cual hace que la
carne sea particularmente tan blanda y digerible.

En el cuerpo del pescado se distinguen cuatro cuadrantes musculares: dos
dorsales y dos ventrales divididos por diafragmas horizontales que se insertan a la
columna vertebral y a la dermis de la piel. También se encuentran músculos
especializados en las mandíbulas, aletas, opérculos y arcos branquiales.
En la natación ordinaria, la contracción sucesiva y alternante de los segmentos
musculares de cada lado (de adelante hacia atrás) da a la aleta caudal un
movimiento ondulante lateral.


Unos cuantos tipos de peces, como la anguila, nadan por medio de movimientos
serpentinos del cuerpo, mientras que otros, entre ellos el pez cofre, se mueven por
la acción de sus aletas, casi sin mover el cuerpo.

La masa muscular de mayor tamaño recorre el dorso a cada lado de la espina
dorsal y la masa de menor tamaño se encuentra debajo de la primera. Cada masa
muscular está compuesta por una serie de segmentos entrelazado

Sistema Circulatorio

El sistema circulatorio de la mayoría de los peces es cerrado; está formado por un
corazón con dos cámaras (una aurícula con su seno venoso y un ventrículo con su
cono arterioso, separadas por una válvula) que bombea sangre hacia adelante,
en dirección a las branquias, desde éstas hacia la cabeza, y desde aquí al resto
del cuerpo a través de una gran arteria situada debajo de la espina dorsal. El
retorno venoso se da por las venas; una vez se ha realizado el intercambio
gaseoso a nivel tisular, a través de los capilares. El ritmo circulatorio es inferior en
los peces que en otros vertebrados.

La aurícula y el ventrículo se contraen a la vez y envían la sangre a las branquias
por la arteria aorta ventral. Allí la sangre se oxigena y por la arteria aorta dorsal se
lleva al resto del cuerpo.

Sistema Respiratorio

En los peces óseos el sistema respiratorio está constituido por la faringe, los
opérculos y las branquias que hacen el papel de pulmones.

El aparato respiratorio de los peces mandibulados consiste en una serie de
hendiduras branquiales que comunican la faringe con las cámaras branquiales
situadas a ambos lados de la cabeza. Estas cámaras se comunican con el agua
exterior, pero pueden estar cubiertas por una serie de huesos llamados
conjuntamente opérculos. En el interior de la cámara y las hendiduras branquiales
están las branquias, que adoptan la forma de delgadas láminas o filamentos en
forma de abanico y muy ricas en vasos sanguíneos, a través de los cuales circula
la sangre. Cuando el pez absorbe agua por la boca y la expulsa a través de las
branquias, el oxígeno disuelto en ella atraviesa la delgada membrana de las
branquias y se disuelve en la sangre, mientras el dióxido de carbono sale de ésta
y se disuelve en el agua. Unas pocas especies, no obstante, como los dipnoos (o
peces pulmonados) pueden respirar también el aire atmosférico por medio de un
pulmón bien desarrollado.


Esquema No.7 Dinámica de la respiración en el pez

Morfofisiología del tracto digestivo

La morfología del aparato digestivo está estrechamente ligada a los hábitos
alimenticios, ya que se han realizado adaptaciones estructurales para facilitar la
búsqueda, ingestión y digestión de alimento.

Boca y cavidad bucal:

• Posición de la boca:
TIPO CARACTERISTICAS
Terminal Mojarra plateada, cachamas
bocachico.
y
Subterminal Barbul.


Esquema No. 8 Posiciones y formas de la boca

• Tamaño de la boca: Depende directamente del tamaño de la partícula que
ingieren:
TIPÒ ESPECIES
Pequeña Peces Planctófagos, herbívoros
detritívoros.
y
Grande Peces carnívoros.

Los Dientes
Según su Posición:


• Mandibulares;
• Bucales; y,
• Faríngeos.
Según su Forma:

TIPO CARACTERISTICAS
Cardiformes Son numerosos, cortos, finos y puntiagudos
como en los bagres.


Viliformes Más alargados que los anteriores.
Caninos Alargados, de forma subcónica, adaptados
para clavarse y sujetar la presa.
Incisivos Extremos cortados en bisel.
Molariformes Con amplias superficies rellenas para
machacar y moler (Bardach-Lager, 1990).

Branquiespinas

Son estructuras ubicadas sobre el arco branquial protegiendo los filamentos
branquiales de la abrasión que producen los materiales toscos que son ingeridos;
y, en conjunto con las branquias actúan como filtros que retienen las partículas de
alimento suspendidas en el agua y las dirigen hacia el estómago.

Los peces Planctófagos posen numerosas branquiespinas y muy próximas entre
sí. Los carnívoros y algunos herbívoros tienen pocas branquiespinas, más gruesas
y bastante separadas entre sí.

Esófago

Es un conducto muscular que comunica la boca y el estómago o directamente al
intestino en el caso de especies sin estómago funcional como en el caso de la
carpa común, la carpa herbívora y el bagre dorado (Blachyplatistoma flavicans).

Su epitelio es ciliado y rico en células secretoras de mucus para facilitar el
transporte del alimento.

En peces carnívoros el esófago posee paredes muy elásticas, para el albergue de
presas ingeridas enteras.

Estómago

La forma y tamaño del estómago depende de dieta del pez y de su frecuencia de
alimentación y volumen de la partícula ingerida.

Los peces omnívoros y herbívoros tienen estómagos con poca capacidad de
volumen, con células secretoras de mucus, de ácido clorhídrico y pepsina, que
mantienen el P.H entre 2 y 5.

En peces carnívoros el estómago es grande y musculoso, con buena capacidad
de almacenamiento y con gran número de ciegos pilóricos que segregan enzimas
proteolíticas para la digestión de espinas, huesos y escamas de los organismos
ingeridos.


Algunos peces no poseen estómago diferenciado, no hay actividad ácida ni
actividad de pepsina pero sí bolsas intestinales que funcionan como pequeños
almacenes de alimento. En estos peces todo el tracto digestivo posee P.H
alcalino.

En trucha, cachama, yamú, bocachico y algunos bagres se encuentran los ciegos
pilóricos, con un gran número de pliegues y surcos que aumentan la superficie de
secreción y de absorción.

Intestino

La longitud del intestino del pez está directamente relacionada con su hábito
alimenticio, y es aquí en donde se realiza la digestión final de los carbohidratos,
los lípidos y la proteína.

La relación longitud del intestino y longitud del cuerpo, se estima de la siguiente
manera:

• En carnívoros : 0.5
• En herbívoros : 2.2
• En omnívoros : 2 a 5
• En los Planctófagos/ detritívoros : 5 – 7
Es muy importante tener en cuenta una situación particular en mojarras, que
consiste en que cuando se completa la digestión de los alimentos en un tramo
determinado del intestino, se puede provocar una deyección eliminando todos los
alimentos que se encuentran detrás de dicho punto, así no estén completamente
digeridos. Por esos es recomendable repartir en varias raciones el alimento del día
para evitar pérdidas económicas y contaminación ambiental del estanque.

La digestión de la proteína en los carnívoros inicia en el estómago, por esto el
intestino es demasiado corto, pero con numerosos pliegues y vellosidades que
hacen muy eficiente la absorción de nutrientes.

Los peces herbívoros y fitoplanctófagos consumen alimentos de digestión más
difícil (lenta) y por esto presentan intestinos más largos.

Digestión, Absorción y Utilización de Alimentos

El tránsito del alimento a través del tubo digestivo se realiza por ondas
peristálticas de contracción muscular voluntaria en la parte anterior del tracto e
involuntarias (músculo liso) en el resto del tracto. Algunos peces pueden


regurgitar la totalidad del alimento con gran facilidad, dada la presencia de
musculatura estriada en el esófago y estómago.

El Páncreas

Secreta enzimas digestivas como la tripsina, quimotripsina, carboxipeptidasa,
amilasa pancreática y lipasa pancreática. Tiene una forma muy particular a
manera de pequeños glóbulos de tejido difusos en el mesenterio, cada glóbulo
posee una arteria, una vena y un conducto. Estos conductos se van uniendo hasta
formar uno común y se comunican con el conducto biliar, para descargarse
finalmente en la parte anterior del intestino.

La vesícula biliar almacena ácidos biliares y álcalis para la emulsificación de los
lípidos y la neutralización de los ácidos del estómago.

Ciegos pilóricos

Aparecen como extensiones del intestino a nivel del píloro, en donde se ha
encontrado la enzima lactasa. También secreta lipasa para el desdoblamiento de
las grasas en ácidos grasos y glicerina.

Secreciones enzimáticas

Las enzimas intestinales son secretadas en la forma inactivada de zimógenos que
luego en la luz del intestino, por diferentes cambios químicos durante la digestión,
son activadas por la enteroquinasa; esta adaptación previene la autodigestión de
la mucosa intestinal. Existen también las carbohidrasas que digieren carbohidratos
específicos; la amilasa, que hidroliza el almidón en glucosa y maltosa;
glucosidasas; maltasas; sacarasas; lactasas y celobiasas (Nelson et al, 1999).

Vejiga Natatoria

La mayoría de los peces óseos tienen un órgano que utilizan para controlar su
flotación llamado vejiga natatoria. Este precursor del pulmón es una cámara que
comunica con el canal alimentario y se llena de oxígeno y nitrógeno extraídos de
la sangre. Su principal función es adaptar al pez a la presión existente a diferentes
profundidades para que tenga una capacidad de flotación neutra, lo que permite
permanecer a cualquier profundidad sin esfuerzo. La vejiga tiene la capacidad de
dilatarse o contraerse a voluntad, funcionando como órgano hidrostático para
equilibrar el peso específico del pez respecto al agua. Cuando la vejiga natatoria
se dilata el peso específico del pez disminuye manteniéndolo elevado. Cuando se
contrae el peso específico del pez aumenta y así puede descender al fondo.


Sistema Nervioso

El sistema nervioso central de la mayor parte de los peces consiste en una médula
espinal, un gran cerebelo, un par de lóbulos ópticos, un cerebro pequeño y una
médula oblongada o bulbo raquídeo. La forma y tamaño de las diversas partes del
cerebro varían mucho de una especie a otra. Los ojos tienen cristalinos casi
esféricos con una córnea aplanada. Los ojos de algunos peces cavernícolas que
viven en total oscuridad son rudimentarios o están ausentes. Los peces huelen por
medio de un par de orificios nasales dobles que conducen a una cámara olfativa;
muchos de ellos detectan los estímulos olfativos a través de órganos sensoriales o
tentáculos (barbelos) que llevan alrededor de la boca o en otras partes del cuerpo.

Oído

Los peces oyen sin ayuda de oídos externos. Las vibraciones del sonido son
transmitidas a través de los huesos hasta el cráneo y un oído interno que contiene
tres canales semicirculares, el cual actúa también como órgano del equilibrio. Los
peces tienen también órganos sensoriales especiales llamados líneas laterales;
consisten en canales que recorren los costados de la cabeza y el cuerpo y están
comunicados con el exterior por medio de pequeños poros. La principal función de
la línea lateral es detectar vibraciones de una frecuencia muy baja, pero en
algunas especies también puede detectar campos eléctricos de poca potencia.

Sistema Urinario

Está conformado por los riñones que son órganos alargados y compactos de color
rojo ubicados ventralmente a la columna vertebral. De allí salen los uréteres que
van a la vejiga urinaria y de allí se comunican al poro urogenital, a través de la
uretra, por donde se elimina la orina.

Morfofisiología de la reproducción

Los peces tienen diversos mecanismos de reproducción. Aunque la
heterosexualidad es el más común, algunas especies son hermafroditas —es
decir, sus miembros desarrollan tanto ovarios como testículos, bien en fases
vitales distintas o simultáneamente—. Algunas especies de rapes exhiben
parasitismo sexual; en este caso, el macho se fija sobre el cuerpo de la hembra de
forma permanente, obteniendo su alimento del sistema circulatorio de ésta.

Los peces ovíparos son los que ponen huevos, que son fecundados en el exterior
del cuerpo de la hembra; en estos casos, el desarrollo de las crías es también
externo. Las especies que dispersan sus huevos en el agua producen a menudo
cantidades prodigiosas de ellos. Un único bacalao, por ejemplo, puede producir
hasta 7 millones de huevos. Otros peces ovíparos, como el salmón del Pacífico,


pueden efectuar notables migraciones de regreso a su lugar de origen para
desovar. La atención familiar tras la puesta puede estar totalmente ausente, o ser
muy elaborada, lo que implica la defensa del territorio o el nido. En la amia y
algunos cíclidos africanos, los peces jóvenes penetran en la boca de uno de sus
progenitores para huir de la amenaza de los depredadores.

Los peces vivíparos presentan fecundación interna y alumbran las crías en un
estado de desarrollo avanzado. El viviparismo se ha dado a menudo entre los
peces y perdura en el tiburón, el celacanto y algunos peces de acuario como el
guppy. Hay diversos mecanismos para proporcionar nutrientes a los embriones,
que pueden multiplicar hasta mil veces su tamaño antes del alumbramiento.
Ciertas especies son ovovivíparas, lo que quiere decir que las crías salen del
huevo en el oviducto de la hembra y, por tanto, nacen vivas.

La reproducción sólo se lleva a cabo en los sitios con características óptimas de
temperatura, oxígeno, p.H, corrientes, etc., y en lugares donde abunde el alimento
y no haya presencia de predadores. En los peces no existe un modelo único de
reproducción, existe gran variabilidad y por esto los mecanismos implicados en el
control de la reproducción son múltiples y totalmente influenciados por el medio
ambiente en que viven las especies (Zanuy y Carrillo, 1997; Harvey y Hoar,
1980).

Los mecanismos de reproducción en los peces son muy variados presentándose
por lo menos tres modelos diferentes: bisexual o gonocorístico, partenogénesis y
hermafroditismo. Sin embargo, muchos autores incluyen a la hibridogénesis y
superfertilización dentro de los mecanismos reproductivos (Vazzoler, 1996).

Anatomía de las gónadas en Teleósteos

Ovarios

Corresponden a dos sacos alargados, situados a cada lado del cuerpo, en
posición ventrolateral a la vejiga hidrostática unidos a la pared celómica.

La parte interna del ovario o estroma ovárico está recubierto por una capa de
células epiteliales llamada epitelio germinal, el cual se pliega en forma de láminas
alojando las ovogonias. Esta capa contiene vasos sanguíneos y células somáticas
asociadas al desarrollo del oocito, células foliculares y tecales (Valeria et al, 1996).

El grosor del epitelio germinal está influenciado por la actividad sexual, siendo
máximo durante la puesta y mínimo en la fase de reposo (Zanuy y Carrillo, 1997 y
Takano, 1968).

Existen especies en las que la ovulación se lleva a cabo en la cavidad ovárica y
después los huevos son expulsados (desovados) al exterior a través de un


oviducto (cachama); otras especies (trucha) ovulan los huevos hacia la cavidad
abdominal a través de ductos y no poseen oviductos.

Testículos

Generalmente son pares en forma alargada, localizados en posición ventral a la
columna vertebral y a la vejiga hidrostática, prolongándose en dirección caudal por
el canal deferente. De la superficie medio dorsal posterior de cada testículo se
origina un espermiducto que desemboca en la papila urogenital, ubicada entre el
ano y los ductos urinarios.

Sin embargo, se encuentran múltiples formas de testículos que van desde los
sacos alongados de muchos carácidos a los tractos reproductivos digitiformes
típicos de los bagres, en los que inclusive se pueden llegar a presentar vesículas
seminales y gonopodios (Loir et al., 1989).

Se encuentran rodeados por una capa de células fibrosas denominada Capa
Albugínea, cuyo grosor está condicionado a la actividad sexual, siendo máxima
durante el reposo y mínimo durante la maduración (Zanuy y Carrillo, 1977).

Control neuroendocrino de la reproducción

La reproducción es un evento condicionado a diversos factores, enmarcado por
las condiciones ambientales y fisiológicas del pez. Las condiciones externas son
captadas por el pez y transformadas en señales nerviosas que activan la
formación y liberación hormonal, desencadenando el proceso reproductivo.

Glándula pineal

Corresponde a una glándula localizada en la parte posterior del cerebro, con
actividad secretora de gran importancia en la actividad reproductiva. Su posición
anatómica en el cráneo, bajo una depresión traslúcida, la hace sensible a los
cambios en la duración e intensidad del fotoperíodo. Secreta una hormona
llamada melatonina.

Hipotálamo

Localizado en la región ventral del diencéfalo, y está constituido por cuerpos
neurales agrupados en núcleos y con función neurosecretora. El hipotálamo capta
impulsos nerviosos procedentes del cerebro transformándolos en mensajeros
químicos llamados hormonas liberadoras hipotalámicas (RH).


Hormonas Liberadoras

Las hormonas liberadoras de gonadotropinas son las claves en la regulación de la
reproducción. Las células neurosecretoras responden a una señal procedente del
cerebro, liberando un mensajero químico en el terminal del axón, llamado hormona
liberadora de gonadotropina (GnRH). Esta a su vez actúa sobre las células
gonadotropas de la adenohipófisis, estimulando la liberación de gonadotropinas
(FSH y LH en mamíferos o GtH I y GtH II en peces) (Zanuy y Carrillo, 1987). Al
llegar a la célula, hormona y receptor se acoplan y desencadenan una serie de
eventos intracelulares que culminan con la síntesis de la hormona que produce la
célula.

Hormonas inhibidoras

La Dopamina es una neurohormona de la familia de la adrenalina (catecolamina),
que actúa bloqueando la liberación de gonadotropinas.

Hipófisis

Ubicada ventral al hipotálamo, es el sitio de síntesis, almacenaje y liberación de
varias hormonas peptídicas, posibilitando que el sistema nervioso central controle
un rango muy amplio de funciones endocrinas, sobre la reproducción, la
osmorregulación, el crecimiento y alguna forma de control del metabolismo (Zanuy
y Carrillo, 1987 y Villaplana et al, 1995). Anatómicamente está constituida por tres
segmentos: neurohipófisis, parte intermedia y adenohipófisis.

Control endocrino

Cuando se alcanza la madurez gonadal, la actividad hormonal se altera por
diferentes factores como la temperatura, fotoperíodo, señales asociadas con las
lluvias y demás factores que pueden cambiar el entorno del pez provocando que
se disparen los mecanismos activadores del proceso reproductivo.

Estos estímulos son procesados por receptores sensoriales y transformados en
señales neuronales que llegan a los núcleos hipotalámicos, produciéndose la
liberación de GnRH. Este neuropéptido se dirige por los cuerpos neuronales hacia
la hipófisis, siendo captado por las células gonadotropas (GSH), las cuales se
estimulan para producir gonadotropina (GtH). Esta hormona glicoproteica es
vertida al torrente sanguíneo, más exactamente a la vena hipofisiaria y conducida
hasta las gónadas, en donde influenciará la producción de esteroides sexuales
responsables de la maduración de los gametos y su posterior ovulación o
espermiación (Milongas et al, 1997).


Influencia ambiental en la reproducción

Las periodicidades medio ambientales en los peces son expresadas por diversas
actividades biológicas presentadas en determinados períodos del año que
posibilitan el éxito de su adaptación. En el caso de la reproducción en la zona
tropical las temporadas de lluvia suelen ser el gatillo que dispara el inicio de los
eventos reproductivos ya que son en estos períodos en los cuales las aguas y los
alimentos se hallan en las mejores disposiciones para supervivencia de los
alevinos.

Según Zanuy y Carrillo (1987) deben considerarse unas variables ambientales
que han ejercido una presión de selección para que la actividad reproductiva se
lleve a cabo en un período determinado de tiempo. Estos factores suelen
presentar gran variación de acuerdo con las especies y son: inundaciones,
temperaturas elevadas, disponibilidad de alimento, competitividad por alimento y
espacio, grado de predación Inter e intra especies y características físico químicas
del agua. Sin duda alguna, el más importante de los anteriores factores es la
disponibilidad de alimento, ya que esta condiciona de forma directa y en gran parte
la supervivencia de las especies.

Inducción a la puesta

¾ Propagación natural

Consiste en ofrecerle al pez ciertas condiciones medioambientales para la
reproducción propia de su especie. El manejo que se realiza trata de simular
ciertos aspectos biológicos involucrados en su actividad reproductiva. Las
estrategias utilizadas para esto son:

1. Proporcionar un sustrato artificial para el desove como nidos,
superficies, receptáculos, etc. que faciliten el desove del pez,
simulando el medio natural.
2. Simular condiciones manejando corrientes de agua, relación macho-
hembra adecuada, densidades adecuadas, fotoperíodo, substratos
naturales de postura, propiedades físico químicas del agua, p.H,
salinidad, y todas aquellas que tengan un papel preponderante en
la biología reproductiva del pez.
¾ Propagación artificial

Debido a que muchas especies no se reproducen naturalmente en cautiverio, es
necesario el uso de hormonas para lograrlo. La utilización de estos compuestos
dependen de factores tales como:


1. Especificidad del inductor: Homoplásticos cuando los compuestos
hormonales aplicados a una especie determinada proceden de la
misma especie; y, heteroplásticos cuando proceden de otra especie.
2. Dosificación: la cantidad de sustancia aplicada depende de
factores como el origen del producto ya que las sustancias puras
tienen niveles de dosificación más bajos que los extractos brutos; la
especificidad, los compuestos homoplásticos suelen tener una
dosificación menor que los heteroplásticos; el estado fisiológico, ya
que los peces en estados avanzados de maduración gonadal
requieren dosis menores que los que presentan fases tempranas de
desarrollo; peso del pez, la dosis es directamente proporcional al
peso; sitio de acción y lugar y forma de aplicación, ya sea
intramuscular, intraperitoneal y oral.
3. Hora y época de aplicación: influenciada por factores
medioambientales como temperatura, humedad, fotoperíodo, etc.
4. Lugar de acción: teniendo en cuenta el sitio de impacto de los
compuestos utilizados en la inducción reproductiva, se tiene la
clasificación: hipotalámicos (antiestrogénicos, antidopaminérgicos);
hipofisiarios (GnRH) y Gonadales (esteroides, antiestrógenos,
prostaglandinas, extractos hipofisiarios, extractos purificados de GtH
y HCG.
La Hipofisación

El uso de hipófisis en la inducción hormonal es el procedimiento más generalizado
en las explotaciones piscícolas. Los extractos hipofisiarios utilizados deben
provenir de animales sexualmente maduros, pues sólo son efectivos en hembras
que presenten la mayoría de sus ovocitos en fase de maduración final. Las
hipófisis pueden ser inyectadas en fresco o en estado de preservación.

Ventajas

• Aplicación simple, sencilla y económica.
• No requiere determinar el momento preciso de la ovulación ni vigilar la
hembra para decidir si está lista al desove artificial a mano.
• Se evitan lesiones en los reproductores.
• Fácil cálculo de la dosis.

. Se evita la sobremaduración de huevos en el ovario, ya que el desove se
presenta al finalizar la maduración.
Desventajas

¾ Difícil de estandarizar la dosis por desconocer la potencia gonadotropa del
donador.

¾ La potencia gonadotropa varía a lo largo del año.
¾ Existe alta especificidad en algunos teleósteos al utilizar heteroplásticos.
¾ Algunas hembras no liberan sus huevos en el tanque llevando a la


sobremaduración.
¾ Las hembras pueden desovar en ausencia del macho.
¾ El extracto fresco puede ser vector de enfermedades.
¾ Hay que sacrificar una especie madura para inducir a otra.


Especie Hora 1ª. Dosis
mg/kg
Hora 2ª. Dosis
mg/kg
Desove
(grados hora)
Cachama 0 0.5 18 5.0 260-300
Yamú 0 0.5 12 5.0 150
Coporo 0 2.0 12 6.0 243-260
Bagre rayado 0 0.6 12 6.0 240-270
Yaque 0 0.6 12 6.0 173
Carpa 0 0.5 18 5.0 250

Tabla No. 3 Dosis hormonales de EPC para la inducción a 27 oC

F-1Sujeción y secado de la región ventral F- 2 Iniciación masaje ventral


F- 3 Y 4 Expulsión de los huevos

F- 5 Finalización del masaje F-6 Mezcla de semen y huevos con pluma,
en seco.

Tipos de explotación

Esta clasificación se da de acuerdo al nivel tecnológico, manejo y rendimiento que
presenten los cuerpos de agua empleados en la acuicultura.

Extensiva

Tiene las siguientes características:

. El cuerpo de agua es de un tamaño apreciable o extenso y cuya función
original no es exclusivamente el cultivo de peces. (un lago, embalse,
reservorio, jagüey, etc.).
. Se ejerce muy poco control sobre los peces cultivados.

. El medio acuático es el que condiciona la especie a cultivar y el manejo.
. Se pueden introducir peces para repoblación o pesca deportiva.
. La alimentación de los peces es de tipo natural; es decir, la que se produce
directamente en el cuerpo de agua (fitoplancton, zooplancton, semillas,
frutas, entre otros).
. Eventualmente se pueden suministrar subproductos agrícolas de la finca
para su alimentación.
. Generalmente la entrada y salida del agua no tienen ningún control;
suficiente es mantener el nivel constante, reponiéndose las pérdidas por
evaporación y filtración.
Semiextensiva

. Se implementa un cierto grado el uso de tecnologías.
. Exige un mayor cuidado y monitoreo de los peces.
. Pueden utilizarse estanques construidos o reservorios de mediana
capacidad.
. Los cuerpos de agua se fertilizan con cierta regularidad para mejorar la
oferta de alimento natural.
. Eventualmente se usan concentrados o suplementos en la alimentación de
los peces.
. Generalmente se manejan policultivos
. Parte de la producción se vende y la otra de destina al autoconsumo.
Intensiva

. Son explotaciones de tipo comercial en donde se busca la máxima
producción en espacios reducidos.
. Se emplea una alta tecnología.
. Los estanques son diseñados técnicamente de acuerdo a las especies a
explotar.

. Se requiere permanente oferta de agua de excelente calidad y cantidad.
. Se manejan altas densidades de siembra.
. La entrada y salida del agua están bajo absoluto control.
. Los peces dependen exclusivamente de la alimentación artificial a base de
concentrados comerciales balanceados según los requerimientos de la
especie.
Superintensiva

. Generalmente se aprovechan grandes cuerpos de agua como represas o
embalses).
. Lo más frecuente es el uso de jaulas y jaulones flotantes, corrales, o
canales.
. Se manejan las más altas densidades de siembra de peces por área.
. Se requiere un recambio de agua permanente sobre las jaulas sembradas.
. La alimentación es a base de concentrados comerciales con dietas
balanceadas.
. Es muy exigente el manejo y sanidad de los peces.
. Se maneja a gran escala, con producción sostenible y de manera
competitiva con base en la calidad.
Bibliografía

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destinado a la América Tropical.
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CORNARE-INDERENA-POLITECNICO COLOMBIANO JAIME ISAZA CADAVID.
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seminario nacional Medellín. 151 p.
ESTEVES, M 1990. Manual de piscicultura. Universidad Santo Tomás – USTA
Bogotá, 232 p
GARZON,F.1991. La piscicultura de fomento en Colombia, Análisis de la situación
actual,DRI,Bogotá


INPA.1999. Boletín estadístico pesquero. Grupo de estadísticas. Bogotá 65 p.
VILLANEDA, A y BELTRAN, C,2001. Perfil de la pesa y la acuicultura en
Colombia.
WEDLER, E.1998. Introducción en la acuicultura con énfasis en los neotrópicos.
Primera edición, Santa Martha. 388 p.



UNIDAD 2

SISTEMAS DE PRODUCCIÓN ANIMAL

Aspectos básicos para la acuicultura

Calidad del agua y productividad de estanques

Deben tenerse en cuenta las siguientes consideraciones:

. El agua existe en la naturaleza en cantidad limitada y está distribuida en un
modo desigual en el tiempo y en el espacio.
. El agua en superficie y a lo largo de su recorrido empieza a interactuar con
los organismos biológicos, con los nutrientes del suelo, el oxígeno
atmosférico, el dióxido de carbono y la energía solar; dándose así el
proceso de productividad.
. La calidad del agua está dada por el conjunto de propiedades físicas,
químicas y biológicas.
. Para la elección de un cuerpo de agua para proyectos acuícolas es
determinante conocer el estado de la cuenca: analizar el manejo de los
suelos observando deforestación, quemas, cambio de vocación forestal a
agrícola y ganadera, contaminación de aguas por industria, agroquímicos,
aguas servidas, explotaciones inadecuadas de yacimientos mineros,
canteras, material de arrastre, obras civiles existentes mal diseñadas, etc.
Elección de la fuente

Para considerar la elección de un cuerpo de agua para un proyecto acuícola debe
realizarse un estudio profundo sobre el estado de la cuenca hidrográfica, teniendo
en cuenta los siguientes factores:

. Manejo de los suelos: deforestación, quemas, zonas agrícolas en
pendientes muy marcadas, sobrepastoreo de ganado, avance de la frontera
agrícola y disminución de la forestal.
. Contaminación de la fuente por la industria, actividades agropecuarias,
vertimientos de aguas servidas, disposición de residuos sólidos.

. Explotación inadecuada de yacimientos mineros, material de arrastre,
canteras, etc.
. Obras civiles mal diseñadas que ponen en riesgo la fuente, como
carreteras, puentes, represas, embalses, y pueden causar a posteriori
impactos ambientales adversos.
Este tipo de circunstancias pueden desencadenar en las siguientes
consecuencias:

. Erosión y sedimentación sobre los lechos de los cursos hídricos.
. Disminución de los caudales.
. Deterioro de la calidad del agua.
. Sequías prolongadas.
. Crecientes y avalanchas
. Disminución de la productividad natural de las aguas.
. Generación de plagas y enfermedades.
Parámetros Físicos y Químicos

Físicos

1. Temperatura
Se debe partir de que los peces no tienen capacidad propia de regulación de su
temperatura corporal y ésta depende del medio acuático en que viven.

La temperatura rige algunos parámetros físicos, químicos y biológicos, tales como
la evaporación y la solubilidad de los gases. Dentro de los biológicos están los
procesos metabólicos como la respiración, nutrición, actividad de las bacterias en
la descomposición de la materia orgánica, etc. de ahí la necesidad de conocer y
evaluar los cambios de temperatura del agua.

Welch (1952) advierte los grupos de factores que afectan la temperatura del agua:


Aumenta la temperatura del agua Reduce la temperatura del agua
Radiación solar Radiación devuelta
Calor atmosférico Conducción de calor a la atmósfera
Condensación de vapor de agua Conducción de calor al fondo
Calor de reacciones químicas
Calor de fricción producido por
movimiento de las partículas del agua
Conducción de calor del fondo


F 7 y 8 -Medición de Temperatura del agua y Análisis por Colorimetría

La conductividad de calor depende de las diferencias de temperatura y del área de
contacto entre el agua y el aire. El viento aumenta esa área y además crea
turbulencia, mezcla los estratos y dispersa el calor absorbido a través de la
columna de agua.

La principal fuente de energía calórica en el estanque es el sol, ésta es absorbida
por el agua y se convierte en calor, por consiguiente cualquier factor que influya
sobre la penetración de los rayos solares (Ej. Materia en suspensión) afectará el
calentamiento del agua, lo cual causará diferencias térmicas entre los estanques
en un mismo sitio y a su vez afectará la composición del plancton, la distribución
de los organismos en la columna de agua y la productividad del estanque.

En estanques poco profundos no se presentan diferencias marcadas de
temperatura en la columna de agua, debido a que la brisa puede mezclar el agua y
distribuir la temperatura absorbida. En cambio en los grandes lagos existe una
gran diferencia entre la temperatura superficial del agua y la profunda.

La temperatura influye sobre la biología de los peces e invertebrados,
condicionando los siguientes procesos:


. la maduración gonadal;
- el tiempo de incubación de las ovas;
. el desarrollo larval;
. la actividad metabólica; y,
. el ritmo de crecimiento de las larvas, alevinos y adultos.
Por lo general las reacciones químicas y biológicas se duplican cada vez que hay
un aumento de 10ºC en la temperatura del agua, por lo tanto un organismo
acuático consume el doble de oxígeno a 30ºC que a 20ºC.

Por esto deben considerarse las siguientes situaciones:

. El aumento de temperatura disminuye la concentración de oxígeno.
. Temperaturas altas y P.H básico, favorecen que el amoníaco se encuentre
en su forma tóxica.
. El consumo de oxígeno causado por la descomposición de la materia
orgánica, se incrementa en la medida que aumenta la temperatura.
. A mayor temperatura los fertilizantes se disuelven más rápido y los
herbicidas son más efectivos.
. Las diferentes especies de peces tienen sus rangos óptimos de
temperatura (Truchas: menores a 18ºC; Carpa: 18-24ºC; Mojarra,
Cachama, Camarón de agua dulce y Bagre: más de 25ºC.)
. Los peces presentan poca tolerancia a los cambios bruscos de
temperatura.
. Cuando los organismos no están en su rango óptimo de temperatura, no
rinden productivamente porque disminuyen drásticamente el consumo de
alimento.
2. Salinidad
En aguas continentales la salinidad corresponde a la concentración de todos los
iones disueltos en el agua, especialmente el contenido de cloruros.

Debe considerarse lo siguiente:


. La presión osmótica del agua se incrementa proporcionalmente con la
salinidad.
. A medida que aumenta la concentración de iones, aumenta la
conductividad.
. El agua de las áreas de alta precipitación, donde los suelos son lavados
constantemente, tienen una baja salinidad (150 a 250 mg/l).
. En zonas de poca lluvia donde la evaporación es mayor que la
precipitación, la salinidad del agua está en un rango de 500 a 2500 mg/l.
. El agua de pozos profundos tiene valores altos de salinidad que
generalmente está dada por la concentración de iones sulfato.
ESPECIE SALINIDAD
Ctenopharyngodon idella (Carpa herbívora) 12000
Cyprinus carpio (carpa común) 9000
Hypophtalmichtys molitrix (Carpa plateada) 8000
Ictalurus punctatus (Bagre de canal) 11000
Oreochromis niloticus (Mojarra plateada) 24000
Oreochromis mossambicus 30000
Mugílidos (lisa, lebranche) 14500

Tabla No. 4 Concentración máxima de salinidad tolerado por diferentes especies
(Boyd y Lichtkoppler, 1979)

Existe una gran diferencia de concentración total de sales disueltas como también
de sus proporciones. Sin embargo, la gran mayoría está integrada por los
siguientes iones: calcio, magnesio, sodio, potasio, carbonatos y bicarbonatos,
sulfatos y cloruros.

3. Luz
Sin lugar a dudas el sol juega un papel determinante en el proceso fotosintético
desarrollado por los vegetales dentro del agua. Sin embargo, una muy alta
intensidad lumínica (80 kiloluz) presenta una marcada disminución de la actividad
fotosintética, debido a que la radiación ultravioleta afecta los cloroplastos. De igual
manera, la disminución en la intensidad lumínica, afecta notablemente dicha
actividad.


4. Evaporación
La evaporación del agua consiste en el cambio de su fase líquida a vapor, por la
acción del calor (sol). Esta, aumenta la concentración de sales y actúa como
regulador de la temperatura. El viento ejerce un papel importante al causar
turbulencia, aumentando de esta manera el área de evaporación y reduciendo la
humedad relativa sobre la superficie del agua.

A mayor concentración de sales, menor evaporación. El agua de mar se evapora
menos que el agua dulce (2 a 3% veces).

5. Turbidez
Está dada por el material en suspensión en el agua, bien sea mineral u orgánico.
El grado de turbidez varía de acuerdo a la naturaleza, tamaño y cantidad de
partículas sus pendidas.

La turbidez originada por el plancton es una condición necesaria en acuicultura.
Entre más plancton, mayor turbidez. Este parámetro se mide mediante el Disco
Secchi, estructura de 30 cm de diámetro que pose cuadrantes pintados
alternadamente en blanco y negro, amarrado a una cuerda calibrada y tiene un
peso en el lado opuesto, para que se pueda hundir fácilmente en el agua sin
perder la horizontalidad.

La turbidez causada por partículas de arcilla en suspensión que actúa como filtro
de los rayos solares afecta la productividad primaria del estanque y por
consiguiente la actividad fotosintética del fitoplancton y su producción de oxígeno.
La turbidez limita la habilidad de los peces para capturar el alimento y por
consiguiente éste irá al fondo del estanque incrementando la cantidad de materia
orgánica en descomposición lo que va en detrimento del oxígeno disuelto.

6. Color
Está dado por la interacción entre la incidencia de la luz y las partículas
suspendidas en el agua. Las aguas incoloras en días soleados toman tonalidades
azulosas. La mayoría de los florecimientos de fitoplancton tienden a dar una
coloración verdosa. Aguas con altos contenidos de hierro tienden a ser rojizas. El
color más común del agua está dado por el material vegetal en descomposición, el
cual produce un color café claro muy característico del alto contenido de humus.
Además, estas aguas por lo general son ácidas.

El color en sí no afecta a los peces, pero restringe la penetración de los rayos
solares y disminuye de esta manera la productividad primaria del estanque,
centrada en el proceso fotosintético.


Parámetros químicos
Oxígeno Disuelto


F 9 y 10 Laboratorios para análisis físico químico del agua

Oxígeno disuelto (OD)

Corresponde al parámetro más importante en la calidad del agua. Si hay déficit se
afecta el crecimiento y la conversión alimenticia de los peces y demás organismos
acuáticos.

Deben considerarse los siguientes aspectos:

. El oxígeno es disuelto en el agua por difusión desde la atmósfera (por
vientos o medios artificiales) y por la fotosíntesis.
. El oxígeno es consumido del agua por la respiración de los organismos lo
cual es esencialmente lo inverso al proceso fotosintético.
. Durante el día con la fotosíntesis se produce oxígeno que es removido del
agua por la demanda respiratoria de los animales y de las plantas.
. En la noche, tanto plantas como animales continúan respirando sin que
haya nuevos aportes de oxígeno al agua; de ahí los críticos niveles de
oxígeno en los estanques en las horas de la madrugada, cuando no se
dispone de una entrada de agua fresca que corrija tal situación.
. El oxígeno también se remueve del agua como un resultado de ciertas
reacciones químicas inorgánicas, lo que se conoce como demanda química
de oxígeno (DQO).

. La saturación de oxígeno disuelto depende de la temperatura, la salinidad y
de la altitud.
La concentración de oxígeno en un estanque puede variar de acuerdo con las
siguientes características:

. Iluminación solar; sin esta no es posible la fotosíntesis y por consiguiente la
producción de oxígeno.
. A mayor temperatura del agua más rápido el proceso de degradación de la
materia orgánica y por consiguiente mayor consumo de oxígeno.
. Cantidad de fitoplancton que libera oxígeno durante el día y lo consume por
las noches.
. Cantidad de zooplancton y otros organismos que consumen oxígeno
durante el día y la noche.
. La materia orgánica y las poblaciones bacterianas que consumen grandes
cantidades de oxígeno entre la capa superficial y la columna de agua.
. La producción de oxígeno en los días nublados es menor que la de días
despejados.
. El viento, que al crear olas y turbulencia en el agua, permite intercambio de
oxígeno entre la capa superficial y la columna de agua.
Las fluctuaciones regulares de oxígeno disuelto en un estanque durante un día,
son las siguientes:

. Los niveles más bajos de oxígeno se darán en las primeras horas de la
madrugada y la mañana e irán incrementándose a medida que es mayor la
intensidad solar.
. Los niveles máximos de oxígeno se darán en las primeras horas de la
tarde y con el ocaso van disminuyendo gradualmente con la intensidad de
luz.
Es común observar en los estanques densos florecimientos de plancton como una
nata de algas en la superficie, que al morir repentinamente en su proceso de
descomposición, se consumen gran cantidad de oxígeno. Por esto debe tenerse la
precaución de remover del estanque todo tipo de materia orgánica en
descomposición, para no comprometer la disponibilidad de oxígeno disuelto.


Potencial de Hidrógeno (p.H)

El valor del p.H está dado por la concentración del ión hidrógeno e indica si el
agua es ácida o básica y se expresa en una escala que varía entre 0 y 14. Si el
valor es de 7 hablamos de un p.H neutro.
Los cambios de p.H dentro de un mismo cuerpo de agua están relacionados con la
concentración de dióxido de carbono, el cual es fuertemente ácido. Los
organismos vegetales demandan dióxido de carbono durante la fotosíntesis, de tal
forma que este proceso determina en parte la fluctuación de p.H y es así como se
eleva durante el día y disminuye en la noche.

La estabilidad del p.H viene dada por la llamada reserva alcalina o sistema de
equilibrio (tampón) que corresponde a la concentración de carbonato o
bicarbonato.

Los extremos letales de p.H para la población de peces en condiciones de cultivo,
están por debajo de 4 y por encima de 11. Además, cambios bruscos de p.H
pueden causar la muerte.

Las aguas ácidas irritan las branquias de los peces, las cuales tienden a cubrirse
de moco llegando en algunos casos a la destrucción histológica del epitelio. La
sobresaturación de dióxido de carbono acidifica aún más el agua causando
alteraciones de la osmorregulación y acidificando la sangre. Cachafeiro (1984)
señala la peligrosidad de las aguas ácidas ricas en hierro, al producirse un
precipitado de hidróxido férrico en las branquias de los peces, tornándose estas
de un color marrón oscuro y causando la muerte de los peces por asfixia. P.H
alcalinos pueden ocasionar lesiones de córnea y cristalino causando ceguera y
también necrosis de las aletas dorsal y caudal en truchas (Eicher, 1947).

El amoníaco en p.H ácido se transforma en ión amonio, forma ionizada no tóxica,
pero en p.H básico se torna altamente tóxico.

Dióxido de carbono

El CO2 es esencial para la fotosíntesis e influye grandemente sobre el p.H del
agua. Pude llegar a ser tóxico causando problemas de equilibrio en los peces,
seguido de adormecimiento y disminución de la frecuencia respiratoria; además
los peces no permanecen en la superficie.

La concentración de CO2 en el agua está determinada por:

. La respiración de los organismos acuáticos;
. la fotosíntesis; y,

. descomposición de la materia orgánica.
Durante el día, a través del proceso de fotosíntesis, hay consumo de CO2 y a su
vez hay producción del mismo producto de la respiración de los organismos
animales. En los estanques ricos en fitoplancton, el consumo de CO2 puede ser
tan alto que puede llegar a cero. Durante la noche cesa la fotosíntesis, no se
consume más CO2, pero continúa la respiración, y por consiguiente la liberación
de CO2 al agua de modo que vuelve a subir su concentración, alcanzando el
mínimo en las primeras horas de la tarde y el máximo en la noche. El CO2 al
mezclarse con el agua produce ácido carbónico.

Alcalinidad total y Dureza total

La alcalinidad corresponde a la concentración total de bases en el agua expresada
como mg/l de carbonato de calcio equivalente y está representado por iones de
carbonato y bicarbonato. La capacidad amortiguadora del p.H en el agua está
dada por estos iones.

La dureza total se define como la concentración de iones, básicamente Calcio (Ca)
y Magnesio (Mg) y se expresa en mg/l de carbonato de calcio equivalente. Otros
iones divalentes contribuyen a la dureza, pero son menos importantes.

Dureza ( mg/l ) Clasificación
0 – 75 Blanda
75 – 150 Moderadamente dura
150 – 300 Dura
Mayor a 300 Muy dura

Tabla No.5 Clasificación del agua de acuerdo a su dureza

Los mejores niveles de alcalinidad total y dureza total para acuicultura están entre
20 y 300 mg/l. Si los valores de estos dos parámetros son bajos se pueden
corregir mediante encalamiento de los estanques.

Compuestos nitrogenados

Estos se originan en los estanques como producto del metabolismo de los
organismos bajo cultivo y son liberados durante la descomposición que hacen las
bacterias sobre la materia orgánica animal y vegetal.


Este proceso se debe a la acción de bacterias aeróbicas, como Nitrosomonas,
responsables del paso de amoníaco a nitritos, y la bacteria Nitrobacter es la
responsable del paso de nitrito a nitrato. La desnitrificación de nitratos a nitrógeno
y salir del agua como un gas disuelto, pude llevarse a cabo por una variedad de
bacterias como Pseudomonas, Achrobacter, Bacillus, Micrococcus y
Corynebacterium.

Si se sospecha de intoxicación por nitritos, se recomienda sacrificar un animal y
observar su sangre y si su coloración es achocolatada, es debido a la formación
de metahemoglobina. Además los peces mueren con la boca abierta y los
opérculos cerrados.

El aumento del p.H y de la temperatura incrementa el porcentaje de amoníaco no
ionizado y por consiguiente su toxicidad.

La presentación del amoníaco en el agua se da bajo dos formas:

. amoníaco no ionizado (NH3) que es tóxico; y,
. el ión amonio (NH4) que no es tóxico, a menos que la concentración sea
demasiado alta.
Sulfuro de Hidrógeno

Generalmente se presenta cuando hay déficit de oxígeno y un alto contenido de
sulfato y materia orgánica en el agua, en donde los iones sulfurosos se combinan
con el hierro de la hemoglobina, bloqueando el intercambio gaseoso. En estos
casos las branquias toman una coloración violeta rojiza, con infiltración
sanguinolenta, con la consecuente muerte del pez.

Fósforo

Es el nutriente más requerido para el crecimiento de las plantas y es abundante en
los huesos y dientes de los animales. La relación de carbono-nitrógeno-fósforo,
requerido por la mayoría de las especies de fitoplancton es de 106-16-1 (Stickney,
1979), lo que indica que cantidades muy pequeñas de fósforo influyen
grandemente en la productividad primaria de las aguas.

El fósforo se puede encontrar en forma mineral o en compuestos orgánicos,
quizás el más común corresponde al fosfato tricálcico Ca3 (PO4)2, es así como la
harina de huesos tiene un 22-25% de fósforo.

La principal fuente de fósforo en el agua proviene de la descomposición de restos
de materia orgánica en el fondo de los estanques.


Correctivos a la calidad del agua

Remoción del dióxido de carbono

El CO2 puede removerse del agua mediante la aplicación de hidróxido de calcio
Ca(OH) 2, a razón de 1.68 mg/l de agua por cada mg/l de CO2 a eliminar. Su
aplicación debe efectuarse con cuidado debido a que puede incrementarse el p.H
del agua.

Alcalinidad

La adición de cal a estanques de baja alcalinidad incrementa el p.H del agua,
facilitan la solubilidad del fósforo e incrementa el carbono disponible para la
fotosíntesis.


La aplicación de cal es más práctica hacerla cuando el estanque está desocupado,
pero también se puede hacer con el estanque lleno.
La cal apagada Ca (OH) 2 y la cal viva CaO son mejores neutralizantes que la cal
agrícola; sin embargo, su aplicación en grandes cantidades incrementa el p.H y su
uso es también recomendado para eliminar peces después de drenar los
estanques.


Disminución de la turbidez

La causa principal de la turbidez en el agua es la arcilla en suspensión la cual
limita la penetración de los rayos solares y por consiguiente la fotosíntesis y la
productividad de los estanques.

La turbidez se puede controlar mediante la aplicación de alumbre (sulfato de
aluminio) el cual permite que las partículas de arcilla se floculen y se precipiten al
fondo. La dosis es de 35 a 40 mg/l. Se debe tener la prevención que se produce
una reacción ácida que disminuye el p.H y afecta la alcalinidad, por consiguiente
en alcalinidades menores de 20 mg/l es necesario encalar.

Otros métodos para corregir turbidez consisten en la aplicación de paja seca a los
estanques a razón de 2 a 4 toneladas por ha o estiércol de vacuno a razón de 2
ton/ha, pero los resultados se observan luego de varias semanas.

Control del p.H

Para disminuir el p.H se aplican fertilizantes a base de amonio, cuyo efecto se
presenta debido a que el ión amonio es nitrificado a nitrato, liberando el ión
hidrógeno, que permite una disminución del p.H.


Oxígeno disuelto

Se recomienda aplicar 1.68 mg/l de Ca (OH) 2 por cada mg/l a eliminar de CO2.
Cuando el nivel de CO2 es alto, el nivel de oxígeno es muy bajo y la aplicación de
Ca(OH) 2 eliminará la materia orgánica y la producción de CO2.

Oxigenación del agua


F- 11 Oxigenador tecnificado F-12 Oxigenador artesanal

Consiste en el uso de equipos y/o mecanismos que incrementen el contenido de
oxígeno del agua, generalmente este efecto se consigue sobre la superficie del
agua.

Cuando se utilizan altas densidades de siembra en un estanque es necesario
aplicar en forma permanente la aireación, sino se dispone de un recambio
adecuado de agua. Por eso se debe renovar entre un 10 y un 30% el volumen de
agua, para la remoción de amonio y otros metabolitos tóxicos. Algunos
piscicultores emplean la aireación solamente de noche cuando la concentración
de Oxígeno disminuye.

La aireación además de incrementar el intercambio de oxígeno entre la atmósfera
y el agua, también homogeniza su temperatura, se incrementa la circulación del
agua tanto en sentido horizontal como en la columna y ayuda a la eliminación de
gases disueltos.

La aireación tiene como desventaja el gasto de energía que utilizan los peces para
enfrentar las corrientes de agua generadas, así como la erosión causada por
socavación de orillas.


Cadena alimenticia

El Plancton está constituido por todos los organismos microscópicos que están
suspendidos en el agua e incluye pequeña plantas (fitoplancton), pequeños
animales (zooplancton) y bacterias.

Los organismos acuáticos se pueden dividir así:

¾ Productores o autótrofos: son las plantas, que tienen la capacidad de
autoalimentarse y son las encargadas de la producción de materia orgánica
con base en la energía solar y los nutrientes por medio de la fotosíntesis y
son las que inician la cadena alimenticia.

. Consumidores o heterótrofos: corresponden a los animales y utilizan la
materia orgánica producida por los productores o autótrofos. Dentro de esta
categoría se ubican los descomponedores, como las bacterias, que se
encargan de la degradación de la materia orgánica.
De esta forma la cadena alimenticia de los organismos de un estanque puede ser
corta o larga. Corta cuando el consumo es de primer eslabón o de los productores;
y, larga cuando se alimentan de otros animales.

En los estanques de aguas continentales hay dos tipos de vegetales:

. Las algas planctónicas: algas verdes; algas verde azules o cianofíceas;
diatomeas; y,
. los vegetales superiores sumergidos (potamogeton), flotantes (eichornia,
salvinia) o erguidos cerca de las orillas como el junco (Typha).
Estos vegetales son consumidos por la fauna herbívora, constituida por el
zooplancton como pequeños crustáceos los cladóceros (Daphnia, Bosmina),
copépodos (cyclops, Diaptomus) y rotíferos; caracoles que viven sobre los
sustratos, como limnaea, Planorbis, Pomacea, Marissa y por peces herbívoros
como la mojarra plateada Oreochromis niloticus (filtrador de fitoplancton) y la
mojarra herbívora Tilapia rendalli que consume vegetales superiores. Estos
herbívoros sirven de alimento a los peces carnívoros de primer orden, pero el
zooplancton es también objeto de atención de otros carnívoros como insectos.
Una cierta parte de los carnívoros de primer orden son consumidos por
depredadores de segundo orden como la trucha Onchorhynchus mykiss y el
tucunaré Cichla ocellaris, que culminan la cadena.


El bentos de un estanque

El término bentos se aplica a todos los organismos que viven dentro o sobre el
suelo del fondo del estanque. Estos organismos influyen en las características del
suelo, como resultado de sus diferentes actividades. El grupo de mayor influencia
son las bacterias, que actúan descomponiendo la materia orgánica del suelo y en
sus actividades metabólicas consumen oxígeno y producen desechos metabólicos
potencialmente tóxicos, lo que debe atenderse con adecuadas prácticas de
manejo.

Infraestructura requerida en acuicultura

Construcción de Estanques

Un estanque es un embalse artificial para almacenar agua, el cual se puede llenar
y vaciar controladamente y que se construyen con el fin de albergar seres vivos
con fines productivos y/o–de investigación.


F 13 - Construcción de diques en piedra F 14- Recubrimiento paredes de estanques
con plástico.

Se tendrán en cuenta los siguientes aspectos:

Topografía

Se refiere a la forma y características superficiales del terreno (relieve) que deben
óptimas para facilitar la construcción del estanque. Es factor determinante para la
viabilidad económica y financiera de la inversión.

Es muy importante que el terreno tenga desnivel o pendiente, no exagerado, para
no construir diques demasiado altos y costosos en la parte baja del terreno,

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permitir el fácil llenado y vaciado de los estanques al fluir el agua por gravedad y
además garantizar la estabilidad y seguridad para evitar derrumbamientos.

Pendientes naturales inferiores a 5% son recomendables para la construcción de
estanques. La pendiente ideal es de aproximadamente 0.5 – 1 %, es decir, 0.5 a 1
metros de desnivel por cada 100 metros de longitud en el terreno.

Una forma sencilla de hallar la pendiente es mediante la siguiente fórmula:

Pendiente P = Diferencia de altura entre dos puntos del estanque-/longitud entre
los dos puntos del estanque X 100


F 15 y 16 Construcción mecánica de estanques de 1 Há de espejo de agua (200 m L x 50 m A)

Suelo

Se requiere que sea de tipo arcilloso, es decir impermeable para garantizar la
mayor retención posible de agua. Se deben evitar suelos con textura gruesa,
grava, arena, a menos que se puedan impermeabilizar y controlar la infiltración;
pero esto implica mayores inversiones económicas.

Se consideran como suelos buenos para la construcción de terraplenes o diques
homogéneos, los que contienen material limoso o arcilloso, que son poco plásticos
y presentan pocas variaciones de volumen con los cambios de humedad y
además poseen suficiente impermeabilidad. Los suelos arcillosos son
impermeables, de baja plasticidad y poco cambio de volumen con los cambios de
humedad. Las arcillas arenosas son de buena impermeabilidad (Villamizar, 1984).
Se debe tener cuidado con las arcillas expansivas (aquellas que cambian de
volumen según el grado de humedad), que se podrían utilizar haciéndoles un
tratamiento de estabilización con cal y adicionalmente revestir el dique con una
tela impermeable para mantener constante la humedad.


De cualquier forma es recomendable realizar un análisis granulométrico sobre el
suelo y establecer así el tamaño de las partículas. Los suelos con porcentajes de
arcilla superiores al 35% son de buenas características técnicas para la
construcción de diques. Cuando se tengan porcentajes de arena superiores al
50% deben descartarse para acuicultura.

Los colores negros o grises en los horizontes más profundos del suelo indican un
mal drenaje. Colores rojizos o pardos brillantes indican buen drenaje.

La textura del suelo hace relación al porcentaje de presentación de las diferentes
partículas que componen el suelo y que determinan la facilidad para manipularlo,
la cantidad de agua que retienen y la velocidad con que lo atraviesa.

La permeabilidad del suelo se mide en función de la velocidad del flujo de agua a
través de él durante un período determinado. Entre más fina sea la textura, más
lenta será la permeabilidad.

Dentro de las propiedades químicas del suelo, el PH debe estar entre 6.5 y 8.5
para obtener buenas condiciones de productividad de los estanques. Si el PH es
superior a 11 o inferior a 4, los suelos deben ser descartados para la construcción
de diques o para el fondo de estanques en acuicultura.

Oferta hídrica

El agua debe ser de excelente calidad y cantidad. Las pérdidas del recurso en el
estanque se dan por infiltración por el fondo y los diques y por evaporación.

Las pérdidas de agua por evaporación dependen de las condiciones climáticas
locales y va en proporción a la superficie del estanque. Altas temperaturas, vientos
fuertes, baja humedad y radiación solar, incrementan la evaporación. Alta
pluviosidad y nubosidad, baja temperatura y humedad elevada disminuyen la
evaporación.

Para el cálculo de la cantidad de agua perdida por evaporación se deben conocer
las velocidades de evaporación expresadas como la profundidad de agua perdida
en milímetros durante un período de tiempo. El método más usado para obtener
las velocidades de evaporación es el de Cubetas de clase A.

Se han estimado las pérdidas de agua para clima cálido, así:

¾ 0.5 a 1 cm./ día por evaporación.
¾ 0.5 cm./día en terrenos arcillosos, hasta 4 cm./día en terrenos más
permeables, por infiltración.


Para la compensación de las pérdidas de agua por filtración y evaporación,
Alonso Ramos diseñó la siguiente fórmula:

Necesidades L/min = área m2 (evaporación cm/día mas filtración cm/día)

Dentro de las principales fuentes de agua utilizadas para la acuicultura tenemos
las siguientes:

¾ Nacimientos o manantiales: Estas agua tienen tres ventajas: son frescas,
no contaminadas y de fácil cuidado; y como limitantes que son profundas,
de temperatura baja, pobres en oxígeno, contienen algunos gases como
dióxido de carbono y materiales ferrosos. Estos aspectos son fácilmente
corregibles, al dejar correr el agua un trayecto descubierto y en capa
delgada para su oxigenación y con caída al estanque para la oxidación de
los metales, aumentar su temperatura, evaporar los gases indeseables y
fortalecer en proceso de oxigenación.

. Represas: son cuerpos de agua generalmente destinados a la generación
de energía eléctrica. Se utilizan en piscicultura extensiva o mediante el uso
de jaulas flotantes (producción intensiva).
F-17 Panorámica embalse de Betania (Huila) F-18 Jaulas Flotantes en el embalse

¾ Pozos: Son aquellos que tienen una profundidad mayor a 40 metros con
un diámetro aproximado de 50 cm. Son aguas poco oxigenadas, acumulan
gases como el dióxido de carbono y amoníaco, metales pesados como el
hierro y temperaturas bajas, pero como ya se anotó, esto se corrige
fácilmente. Tiene la desventaja de los altos costos de construcción y
extracción del agua por bombeo.


F-19 Panorámica Lago de Tota (Boyacá – Colombia)

¾ Aljibes: Tienen una profundidad menor o igual a 40 metros y un diámetro
aproximado de 1 metro. La cantidad de agua es limitada y posee las
mismas desventajas del agua de los pozos.

¾ Jagüeyes: Son reservorios de aguas, de profundidad variable de 1 a 3
metros, que generalmente se utilizan como abrevaderos del ganado. Tienen
como desventaja que pueden contaminarse fácilmente y en verano
disminuir considerablemente.

. Ríos y quebradas: Son cuerpos de aguas corrientes con cauces variables
dependiendo de la época del año. Debe analizarse el grado de
contaminación de sus aguas por factores antrópicos, así como la
precaución de evitar la invasión de los estanques con organismos no
deseables para el cultivo de peces establecido.
. Lagos y lagunas: Presentan como desventaja la posible sobresaturación
de materia orgánica que limita la cantidad de oxígeno disuelto del agua y
generan gases tóxicos que comprometen seriamente la supervivencia de
los peces.
. Acueductos: No son recomendables estas aguas para piscicultura por los
tratamientos químicos de potabilización realizados sobre ellas para el
consumo humano; pues, resultan lesivas para los peces.
Tipo de estanques

• De presa
Los diques se construyen a través de la corriente en la parte baja de hondonadas
alimentadas por una o varias fuentes de agua, poseen forma irregular según la


topografía del terreno, con difícil control sobre el volumen del agua y su manejo a
veces es complicada. Necesita de un vertedero bien ubicado y construido para
evitar la ruptura del dique en época de invierno.

• De derivación
Son estanques que reciben una cantidad de agua controlada, proveniente de una
derivación de un canal o fuente principal. Tienen la ventaja de ejercerse control
sobre ellos, se pueden aplicar abonos y alimento artificial. Pueden ser:

-Excavados: cuando la topografía es plana o con un mínimo de inclinación.

-Semiexcavados: en suelos con pendientes entre 2 y 8 %. Son los más
económicos y eficientes.

-Terraplenados: para terrenos totalmente planos, se requiere suelo adecuado de
una zona cercana para la construcción de los diques.

Los estanques pequeños tienen las siguientes ventajas:

• Fácil y rápida cosecha.
• Llenado y drenaje rápido.
• Fácil tratamiento de enfermedades y parásitos.
• Menor efecto de la erosión causada por el viento.
Las ventajas de estanques grandes son:
• Menor costo de construcción por hectárea.
• Mayor capacidad de intercambio de oxígeno por la superficie.
• Mejor aprovechamiento de espacios.
La profundidad mínima de un estanque debe estar entre 0.5 y 0.75 m (Ramírez et
al, 1996). Esta propicia el desarrollo del fitoplancton, facilita la captura y alivia los
costos de construcción de diques. La profundidad máxima está entre 1.2 y 1.5 m.

Estructuras de tierra

Conformadas por los cimientos y diques que son construidos en tierra y los
canales de abastecimiento y drenaje que son excavados.


F 20 -Construcción canales de drenaje F 21 -Construcción de diques en tierra

Cimientos

No se requieren en suelo compactados, pues, estos sostienen los diques y
retienen el agua.

Diques

Es un terraplén compactado destinado a retener agua, forman las paredes del
estanque y se fabrican con el material disponible en el área de construcción. Su
construcción inicia después de la limpieza y descapote del terreno, retirando la
grava, arena, material vegetal, etc., que puedan provocar mal asentamiento y
filtración.

En corte transversal tiene forma de trapecio y se diferencian las siguientes partes:
cima, altura, talud o pendiente y base.

La cima o corona corresponde a la parte superior del dique, debe tener mínimo un
metro de ancho, de acuerdo con la altura del dique.

La altura corresponde a la profundidad del estanque más una porción libre para el
control del nivel del agua y evitar fugas por olas.

El talud corresponde a la pendiente natural o parte inclinada de los diques, está
dada por la altura del dique y el ancho de la base; un talud de 2:1 quiere decir que
por cada metro de altura, la base se extiende 2. La pendiente depende del tipo de
terreno, la profundidad del terreno, la acción de la ola y el tamaño del estanque.


Etapas para construcción de estanques

1. Descapote: Consiste en retirar la capa superficial del suelo que contiene
material vegetal, humus, piedras, árboles, troncos, hasta que aparezca la
capa arcillosa.
2. Material de excavación: Previamente debe haberse definido el sitio
depósito del material de excavación.
3. Marcación o estacado de los diques: señalar con estacas los puntos
que delimitan los terraplenes que conformarán los diques del estanque.
4. Compactación y apisonado: Se hace con el fin de aumentar la resistencia
al deslizamiento o separación de las partículas del dique, siendo el
resultado de la expulsión del aire de la tierra.
5. Fondo del estanque: Debe arreglarse para que pueda vaciarse totalmente
y que al finalizar la operación se facilite la recolección de los organismos
cultivados cerca al sistema de vaciamiento. El declive debe ser ligero, para
que el vaciado se realice lentamente y evitar los charcos que retengan
peces. Una pendiente entre el 1 – 2% es conveniente en estanques
menores a 1000 m2.
En el caso de estanques grandes es necesario cavar un desaguadero que llegue
al sitio de drenaje, con una red de venas transversales que faciliten el drenaje y la
cosecha. El declive debe ser un poco mayor.

Impermeabilización

1. Compactación
Una vez retirados del estanque los restos vegetales y limpia su superficie, se
rellenan las grietas y orificios con material adecuado y se escarba el suelo de 2025
cm de profundidad con disco, rodillo, picas, se remueven rocas y raíces y
luego se compacta el suelo, de manera similar a la compactación del dique.

2. Capa de arcilla
Consiste en el recubrimiento de áreas con material que contenga más del 20% de
arcilla, con el objeto de evitar pérdidas por infiltración. El grosor de la capa de
arcilla depende de la cantidad de agua a depositar. El mínimo es de 30 cm cuando
la profundidad del agua alcanza hasta 3 m y se debe incrementar en 5 cm de capa
de arcilla por cada capa de adicional de 30 cm de agua. Para proteger la capa de
arcilla contra las rupturas por secado, es recomendable colocar una capa de


grava de 30-40 cm sobe la capa de arcilla especialmente donde se concentra más
el agua.

3. Bentonita
La bentonita es una arcilla coloidal de textura fina que al mezclarse en una buena
proporción con material granulado, bien compactado y saturado, que al hidratarse
hace que la mezcla sea prácticamente impermeable, con la desventaja que al
secarse vuelve a su estado original formando grietas.

4. Aditivos químicos
Consiste en la aplicación de pequeñas cantidades de químicos que provocan un
colapso de las partículas del suelo agrietadas o abiertas causando su
reagrupación, esto reduce la permeabilidad.
Las sustancias más utilizadas por su efectividad son los polifosfatos de sodio, el
pirofosfato de tetrasodio y el tripolifosfato de sodio, aplicados a dosis de 0.3 a 0.5
Kg/m2. El cloruro de sodio se aplica en dosis de 1.1 a 1.8 Kg/m2 y la ceniza sódica
en dosis de 0.5 a 1.1 Kg/m2.

5. Telas impermeables
Algunas telas impermeables como el geotextil son utilizadas para impermeabilizar
estanques en suelos de grano grueso, con la limitante que su coso es elevado.

6. Protección
Se realiza mediante cubiertas vegetales para contrarrestar efectos de la lluvia, el
viento, el oleaje y el tránsito que causan erosión de los diques. También se
aconseja plantar hierbas de cobertura sobre los diques que formen césped
compacto y continuo, para evitar erosión.

Estructuras Hidráulicas

Están representadas en las obras del sistema de abastecimiento y el sistema de
drenaje. El nivel de entrada del agua al estanque debe estar 10 cm por encima de
la superficie para asegurar una buena aireación y evitar el escape de los
organismos cultivados en el estanque.

La toma de agua debe cumplir los siguientes requisitos (según Proenca et al,
1994):

• Permitir un control total sobre el volumen de agua a ser captado.

. Captar agua siempre a favor de la corriente, nunca directamente u opuesta
a la misma.
. Captar el agua por debajo del nivel mínimo de la corriente, pensando en la
época de la sequía.
. Colocar un sistema de protección (malla, filtro de piedra y arena gruesa)
para evitar la entrada de organismos indeseable al cultivo.
. Al igual que el canal de derivación, debe estar por encima del nivel o cota
máxima del estanque.
La bocatoma


F 22-23 Compuerta de bocatoma y canal de distribución del agua

Es la estructura construida sobre la fuente de abastecimiento de agua para
conducirla hacia la piscifactoría, cuya dimensión y diseño depende de la
concesión otorgada por la autoridad ambiental de la zona.

Existen varios tipos como la compuerta ahogada, formada por una tabla removible
entre dos ranuras de concreto. Se recomienda elevar el nivel de agua de la fuente
mediante una pequeña presa de piedra, arcilla, concreto, etc. Construida por
debajo de la toma de agua y colocándole un vertedero y una rejilla en la salida en
forma vertical u oblicua, con barras separadas de 8 mm con el fin de establecer
una barrera entre el cauce de la propia fuente hídrica y el del canal de
abastecimiento. De esta forma se controla el ingreso de peces indeseables al
estanque, así como restos vegetales y demás material flotante. También se puede
utilizar la rejilla horizontal sumergida (1 m2 de rejilla horizontal capta 1 m3 de agua
por minuto).


Desarenador

F 24-25 Desarenadores
Es una estructura complementaria de la bocatoma que busca impedir la entrada
de sedimentos y hojarascas arrastradas por la corriente de agua que alimenta los
estanques. Básicamente es un tanque de paredes de concreto en donde se
reduce la velocidad del agua que viene de la bocatoma, permitiendo que las
partículas de mayor tamaño se sedimenten. Su tamaño depende del caudal
captado de la fuente hídrica.

La pared de entrada del agua deberá construirse a un nivel inferior al del canal
que trae el agua de la bocatoma (10 cm.) para evitar caídas bruscas del agua que
pongan en suspensión las partículas decantadas.

A la salida del tanque debe ubicarse otra rejilla para atrapar los materiales
arrastrados por la corriente.

El desarenador debe tener un sifón lateral que facilite las acciones de vaciado,
lavado y desinfección cada vez que se requiera.

Cuando las circunstancias lo exijan, el desarenador deberá tener más
compartimientos.

Paralelo al desarenador se acostumbra a construir un tanque de almacenamiento
a manera de reservorio, que luego de dirige a los estanque a través de los
canales de conducción. Su capacidad debe permitir el recambio del 15% del total
del agua de los estanques.


El canal de derivación

F 26 y 27 Canal de distribución del agua a los estanques

Conduce el agua desde la bocatoma hasta los estanques, en un canal o en
contadas ocasiones mediante tubería. Este canal es de caudal constante,
destinado a llevar agua a una altura tal que permita llenar los estanques.

La velocidad de la corriente en el canal no debe causar erosión de las paredes.
En tierra fina es de 0.15 m/seg. y en piedras 1 m/seg.

Canal de abastecimiento y cajas de derivación

La dimensión depende de la cantidad de agua que se va a conducir. Se debe
considerar un borde libre no menor a una tercera parte de la columna de agua en
el canal.

Llegada de agua al estanque

Los canales abiertos están generalmente conectados a los estanques a través de
compuertas metálicas, un tubo metálico o de PVC o una compuerta ahogada
como la de la toma de agua para controlar los volúmenes. El tubo de alimentación
debe ubicarse horizontal y a la altura de la corona del dique de la parte menos
profunda.

Sistema de drenaje

• Debe localizarse en la parte más profunda, de modo que el estanque se
pueda desocupar totalmente.
. Debe tener una capacidad suficiente de drenaje, sin llegar a ocasionar
problemas de erosión.

. El control de nivel o exceso de agua debe eliminarse por el fondo, donde se
encuentra el agua de baja calidad, especialmente con niveles bajos de
oxígeno disuelto.
Los tipos más comunes de desagüe son los monjes y el tubo en L con codo móvil.

El monje

Corresponde a una estructura vertical en concreto cuya sección horizontal es en
forma de u abierta hacia el estanque y una tubería que atraviesa el dique del
estanque y va al canal de desagüe o a la caja de pesca. Se construye en la parte
más profunda y con preferencia empotrado en el dique o afuera. La altura debe
corresponder a la cima del dique es decir 30 cm arriba del nivel máximo del agua y
la capacidad del tubo de drenaje debe ser superior al de abastecimiento. En la
parte vertical se tiene una pared dorsal de donde sale el tubo de desagüe y dos
laterales que presentan normalmente tres ranuras verticales internas en cada una
por donde corren tablas de madera dispuestas una sobre otra que cierran el
monje. Entre la segunda y tercera serie de tablas se rellena con arcilla apisonada.
Con este sistema se logra que el recambio se haga del agua del fondo del
estanque.

Tubo en L y codo móvil

Con frecuencia utilizados en estanques con áreas inferiores a 1000 m2. Se usan
tubos PVC de 4 o más pulgadas de diámetro, con un codo móvil para facilitar la
salida del agua del fondo del estanque.

Canal de Drenaje

Es la estructura hidráulica destinada a recibir todas las aguas provenientes de los
drenajes de los estanques y demás infraestructura de la granja piscícola y
conducirlas a un lugar para el tratamiento y disposición final. Se pueden construir
en concreto, piedra, prefabricado o directamente en tierra cuando sean suelos
impermeables. El declive o pendiente del fondo debe tener como mínimo 5 por mil.

Obras complementarias

Salida de emergencia o aliviadero

Es prácticamente un rebosadero cuya salida se ubica unos 5-10 cm por encima
del nivel de agua del estanque, con el fin de evacuar aguas sobrantes
provenientes de lluvias o excesos de caudal.


Caja de pesca

Sirve para recoger la cosecha cuando se desocupa el estanque, se construye en
la parte más profunda del estanque, cerca del desagüe o fuera del estanque y
generalmente 30 cm por debajo del fondo.

Laguna de Oxidación

Es un cuerpo de agua que debe representar al menos un 10% del área total del
espejo de agua de la piscifactoría, el cual recibe las aguas que han sido
utilizadas en los estanques, con el fin de someterlas a una descarga de
contaminación orgánica para poder hacer los vertimientos puntuales según lo
ordena la normatividad ambiental vigente.

Mallas antipájaros


F 28- Protección de estanques con mallas antidepredadores
Preparación del estanque
Acondicionamiento del estanque
Si es un estanque viejo que fue desocupado, se requiere hacerle una limpieza
para retirar ramas, raíces, peces muertos, predadores, etc., seguidamente debe
acondicionarse con limo y arcilla el fondo del estanque.

Encalado

Consiste en la aplicación de cal agrícola pulverizada (Carbonato de Calcio CaCO3)

o cal dolomita (Carbonatos de Calcio y de Magnesio) con el fin de corregir la

acidez del suelo y del agua; realizar acción desinfectante, además de incrementar
la dureza del agua.

La cal se debe esparcir sobre el suelo seco, se procede luego a llenarlo y se
espera al menos una semana antes de sembrar los peces. En caso de que el
estanque tenga ya agua y peces, la dosis total calculada (100 – 200 g/m2) se
divide en cuatro porciones, para aplicar una cada dos semanas. En este caso se
prepara una lechada, es decir se diluye la cal en agua y se distribuye por toda la
superficie del estanque.

Llenado del estanque

Luego de dos semanas de haber realizado el encalado, se permite la entrada del
agua lentamente, por la parte menos profunda del estanque, con una ligera caída
para efectos de su oxigenación.

La fertilización y el incremento de la producción natural de organismos del
estanque

El nitrógeno, fósforo y potasio son los nutrientes primarios, los cuales
conjuntamente con la energía solar constituyen la materia prima para iniciar la
producción de materia orgánica a partir del proceso fotosintético efectuado por el
fitoplancton, el cual sirve de alimento al zooplancton, a insectos acuáticos y a
peces herbívoros; con la utilidad adicional de la generación de oxígeno. El calcio,
el magnesio y el azufre son denominados nutrientes secundarios.

Tipos de fertilizantes

Abonos orgánicos

Fertilización orgánica

Los abonos orgánicos son utilizados para estimular la cadena alimenticia
heterotrófica al ecosistema del estanque; el estiércol sirve principalmente como
un substrato para el crecimiento de bacterias y protozoarios, los cuales a su vez
sirven como alimento rico en proteínas para otros animales incluyendo los peces y
camarones cultivados (Tacón, 1989).

Los fertilizantes orgánicos corresponden a materia fecal de animales o desechos
vegetales. Estos pueden servir como fuentes directas de alimento para los
organismos acuáticos, o se descomponen y los nutrientes inorgánicos liberados
pueden originar florecimientos de plancton. Aquí debe actuarse con precaución
puesto que en el proceso químico de descomposición de la materia orgánica se
consumen grandes cantidades de oxígeno.


El estiércol de animales de granja representa el principal abono orgánico utilizado
en la piscicultura mundial.

El estiércol fresco de cerdo se utiliza no solo como abono del estanque sino
también como alimento de los peces, dosificado a razón de 1 Kilogramo por cada
10 metros cuadrados del estanque, incorporado al estanque cada 8 días.

La gallinaza es otro excelente abono, especialmente para cultivos de peces
filtradores como la tilapia nilotica que aprovechan las algas resultantes de la
filtración. Se aplica a razón de 1 Kilogramo por cada 20 metros cuadrados.

El estiércol de bovinos es menos efectivo que los anteriores por su gran contenido
de celulosa cuya descomposición es más lenta.

Cualquiera que sea el abono orgánico utilizado, este debe aplicarse seco libre de
materiales de la cama como viruta, cascarilla, aserrín, etc., pues su
descomposición es más lenta y se puede acidificar el agua.

Otra forma de usar los abonos orgánicos es mediante la llamada pila de abonos,
que consiste en amontonar ( apilar) los materiales orgánicos en descomposición
como hojas, paja, hierbas, vainas de arroz y demás residuos de cosechas,
formando una capa de 30 cm; sobre esta, se pone una capa de estiércol de
animales que cubra la primera capa, en una capa no superior a 15 cm; sobre
esta segunda capa se esparce cal y cenizas; y así sucesivamente se van
alternando en ese orden las nuevas capas hasta alcanzar una altura de la pila de

1.5 metros por 1.5 m de ancho. El montón se debe conservar húmedo pero no
mojado. Al cabo de los tres meses el abono ha mermado en su volumen a 1/10 de
su tamaño inicial y está listo para usar, depositándola en los extremos del
estanque, comprimiéndola con una malla o cubriéndola con lodo, para la lenta y
gradual liberación del abono.
Se han estimado algunas cantidades de estiércol animal a aplicar según la
especie, así:

¾ Bovinaza : 1.000 Kg/Há.

¾ Porquinaza : 500 – 1500 Kg/Há.

¾ Pollinaza : 125 – 250 Kg/Há

Abonos químicos

Son fertilizantes inorgánicos que se consiguen fácilmente en el comercio y que
disueltos en el agua del estanque lo proveen de sus nutrientes inmediatamente.
En ambientes tropicales deben incorporarse fertilizantes químicos a base de
fósforo asimilable (P2O5), en proporción de 25 kilogramos por hectárea.
Comercialmente se vende en el mercado superfosfato simple (16%) para aplicar a


razón de 1600 g/100m2; superfosfato triple (42%) a razón de 600 g/100 m2 y 1030-
10 para aplicar 400 ó 500 g/100m2 de estanque.

En un estanque la producción de plancton se desequilibra con mayor frecuencia
por la escasez de fósforo. Debe tenerse en cuenta que las condiciones de
fertilización son muy particulares para cada estanque.

No se recomienda asociar abonos químicos con la cal: pues, se forman
compuestos insolubles que impiden la asimilación del fósforo a corto plazo.

La aplicación de grandes cantidades de fertilizante a intervalos prolongados es
inadecuada, porque la mayoría del fósforo es absorbido por el lodo y el nitrógeno
se pierde por desnitrificación (Boyd y Lichtkoppler, 1979). Por esto, es más
eficiente si el fertilizante se coloca en plataformas sumergidas a 30 cm por debajo
del agua, esto con el fin de que el fósforo no sea atrapado por el lodo del fondo y
las corrientes distribuyan los nutrientes a medida que se disuelven.

Es recomendable efectuar control de macrófitas dentro de los estanques
invadidos, ya que de no ser así, finalmente serán estas las beneficiadas por la
fertilización en lugar del plancton. Finalmente los estanques con lodos ácidos y
alcalinidad total por debajo de 15-20 mg/l puede ser que no respondan a la
fertilización, a menos que primero se aplique cal.

Es inútil la fertilización en estanques que tienen flujo permanente de agua a través
de él, así como en sistemas intensivos y superintensivos, donde los peces reciben
casi todos los requerimientos alimenticios a base de alimentos concentrados.

Algunos fertilizantes tales como la urea, sulfato de amonio y nitrato de amonio
estimulan la formación de ácido y su uso continuado puede originar un descenso
en la alcalinidad.

N – P - K DOSIS/FRECUENCIA
15-15-15 2-2.75 g/m2/semana
12-24-12 2-2.5 g/m2/semana
10-30-10 1.5-2.5 g/m2/semana
18-46-0 1.5 g/m2/semana
11-53-0 1.3 g/m2/semana
Superfosfato 1.25-1.5 g/m2/semana
46-0-0 (urea) 1.5-2 g/m2/semana

Tabla No. 6 Dosificación de abonos químicos


Algunos aspectos sobre el manejo y bienestar animal
Nutrición y Alimentación de Peces
Introducción

La nutrición y alimentación, junto con el manejo y las condiciones ambientales, son
aspectos determinantes para lograr los rendimientos productivos esperados.
Según Hepher (1968), los componentes básicos involucrados en la nutrición de
los organismos acuáticos en estanques son:

. Requerimientos específicos de nutrientes
. Alimento natural disponible; y,
.. Alimentación suplementaria.
Para el balanceo de raciones alimenticias se requiere conocer sobre:
. Hábitos alimenticios de los peces en su ambiente natural;
. Morfofisiología del sistema digestivo y de sus exigencias nutricionales;
. Tipo de explotación: intensivo, semiintensivo y extensivo.
Hábitos Alimenticios de los peces

Los hábitos alimenticios hacen referencia a la manera como se alimenta el pez,
es decir, la conducta directamente relacionada con la búsqueda e ingestión de los
alimentos. Dicho de otra manera, el hábito es el comportamiento para tomar el
alimento, y el alimento es el material que habitual u ocasionalmente consumen
(Vásquez Torres, Walter, 2002).

De acuerdo a sus preferencias alimenticias, los peces se pueden clasificar en los
siguientes grupos:

GRUPO CARACTERISTICAS ESPECIES
Carnívoros o
Predadores
Consumo de organismos vivos que van
desde pequeños organismos planctónicos
hasta insectos, crustáceos, moluscos,
peces, reptiles, anfibios, y pequeños
mamíferos. Estas especies a través del
Truchas, salmones,
algunos bagres y los
sábalos.


tiempo y en condiciones de cautiverio se
han adaptado al consumo de dietas
artificiales, con la característica de
contener altos contenidos de proteína.
Herbívoros: Prefrieren los alimentos de origen vegetal
(ricos en fibra y bajos en proteína y
energía). Se alimentan de plantas
macrófitas y de algas filamentosas.
Frecuentemente se explotan en
policultivos por ocupar un nicho ecológico
muy especializado y para el control de
malezas acuáticas.
La carpa herbívora
(Ctenopharyngodon
idella) y la Tilapia
herbívora (Tilapia
rendalli)
Omnívoros Significa que los peces utilizan varias
fuentes de alimentación, por ejemplo
frutas y semillas. Las cachamas en su
ambiente natural se alimentan de frutas,
semillas y hojas; especialmente en las
épocas de inundaciones, y en la época
de aguas bajas, se alimentan de
caracoles, cangrejos, insectos, cadáveres
de animales diversos y de plancton (Arias
y Vásquez Torres, 1988).
Cachama blanca
(Piaractus
brachypomus) y
Cachama negra
(Colossoma
macropomun); el
yamú (Brycon spp),
las palometas (
Mylossoma spp) y
algunas sardinas
(Triportheus spp.) (
Araujo-Lima y
Goulding,1997).
La mojarra plateada
(Oreochromis
niloticus) y la carpa
común (Cyprinus
carpio) también son
consideradas
omnívoras, porque
además de
alimentarse de
fitoplancton pueden
consumir algas
verdeazules y
alimentos
concentrados.
Planctófagos
o Filtradores
Se alimentan de fitoplancton (organismos
vegetales como algas unicelulares) y de
: Las tilapias, la carpa
cabezona


zooplancton (protozoarios, rotíferos,
cladóceros, peces, microcrustáceos
copépodos y formas larvales de diferentes
organismos). Prácticamente todas las
especies de peces pasan por una fase
planctófaga en sus primeras etapas de
desarrollo (postlarva y alevinos), antes de
alcanzar su hábito alimenticio definitivo.
Se denominan filtradores porque utilizan
sus rastrillos branquiales llamados
branquiespinas para filtrar y concentrar el
plancton presente en el agua que pasa a
través de la cámara branquial (Bardachlager,
1990).
(Aristichthys nobilis),
la carpa plateada
(Khypophthalmichthys
molitrix) y la cachama
negra (Colossoma
macropomun), son
ejemplos de peces
que mantienen su
hábito planctófago
durante toda su vida.
La mojarra roja es
considerada un pez
omnívoro y filtrador.
Detritívoros Consiste en el consumo de detritos o
restos orgánicos que se acumulan en el
fondo de los estanques, compuestos por
hongos, levaduras, larvas y huevos de
insectos, de moluscos, y otros
organismos
El bocachico
(Prochilodus spp), la
sapuara
(Semaprochylodus
sp) y estuáricos como
la lisa ( Mugil
cephalus) y el
lebranche (Mugil liza).

Exigencias de Nutrientes en las dietas

Proteína

La proteína es el constituyente básico de la célula, como nutriente es utilizado
como fuente de energía y para el crecimiento. En la elaboración de una dieta es el
componente más costoso.

Los niveles de proteína bruta (PB) requeridos para un óptimo crecimiento varían
en las diferentes especies con las condiciones de cultivo, condiciones
ambientales, y estado fisiológico y de desarrollo de los individuos. (Elangovan y
Shim, 1997); también con los niveles de los otros nutrimentos no proteicos
presentes en la dieta. Cuando hay desequilibrio entre la proporción de proteína y
las demás fuentes de energía, carbohidratos y lípidos, esta es metabolizada para
producir energía en detrimento de su deposición en los tejidos (Samantaray y
Mohanty, 1997).


La calidad de la proteína está representada por el contenido de aminoácidos, los
que se fijarán finalmente en los tejidos en la forma de nuevas proteínas, como
músculos, huesos, piel, células sanguíneas, enzimas, productos sexuales, etc.

Existen los aminoácidos esenciales y los no esenciales. Los esenciales son
aquellos que no pueden ser sintetizados por los peces o lo hacen en mínimas
cantidades no alcanzando a suplir sus necesidades metabólicas, siendo necesaria
su incorporación en la dieta suplementaria. Los no esenciales pueden ser
sintetizados por el animal en las cantidades que lo requiera.

Los peces, más que requerimientos específicos de proteína, tienen requerimientos
para niveles de aminoácidos esenciales (King et al, 1996).

Dentro de las fuentes de proteína se considera la torta de soya de alto valor
biológico o alto valor nutricional, por la buena oferta de aminoácidos esenciales.

Si ofrecemos altos niveles de proteína en la dieta, superiores a los requerimientos
de la especie, es impráctico por efectos del alto costo, desequilibrio en la
eficiencia de aprovechamiento y el impacto ambiental adverso ocasionado sobre el
medio acuático.

Cuando los niveles están por encima del óptimo la tasa de eficiencia proteica
disminuye substancialmente como ha sido observado en la cachama blanca
(Vásquez Torres et al, 1999) y en diferentes especies de peces (Elangovan y
Shim, 1997), disminuye significativamente la conversión alimenticia, posiblemente
debido a un desvío en la utilización de la proteína para la producción de energía a
través de procesos de desaminación o por excreción de los aminoácidos
absorbidos en exceso.

Lípidos

Se requieren en la dieta como fuente de energía metabólica y de ácidos grasos
esenciales. Los ácidos grasos esenciales el pez no los puede sintetizar y cuando
consigue hacerlo, lo hace en cantidades que no satisfacen lo requerido por el
organismo. Las grasas se desdoblan en ácidos grasos y colesterol.

Fisiológicamente los ácidos grasos constituyen la principal fuente de combustible
aerobio para el metabolismo energético del músculo de los peces. De igual forma
los fosfolípidos, que son el segundo grupo de lípidos más abundantes después de
los triglicéridos, hacen parte de la estructura celular y son fundamentales en el
mantenimiento de la integridad y funcionamiento de las biomembranas (Watanabe,
1988).


El valor energético global comparativo es: lípidos 9.5 Kcal/g; Proteínas 5.5 Kcal/g;
carbohidratos 4.1 Kcal/g. Altos niveles de grasa en la dieta afectan el proceso de
peletización y ocasiona rancidez en raciones almacenadas largo tiempo.

Niveles de lípidos superiores al 15% afectan negativamente el crecimiento y la
eficiencia de la utilización de la proteína (Chou y Shiau, 1996). Para las tilapias
son necesarios niveles del 12% de lípidos para generar el máximo crecimiento.

Carbohidratos

La inclusión de carbohidratos en las raciones de engorde debe tenerse en cuenta
porque representan una fuente económica de energía dietética muy valiosa para
aquellas especies no carnívoras (Gallaghier, 1997); además, porque su uso
cuidadoso puede representar un ahorro en lo referente a la utilización de la
proteína como fuente energética.

La actividad intestinal de la amilasa responsable de la hidrólisis de los
carbohidratos es mayor en peces omnívoros como la tilapia, carpas y bagre de
canal en comparación con peces carnívoros como la trucha, la anguila y los
salmones.; por esta razón, en estos últimos, altos niveles de carbohidratos
disminuyen el crecimiento, aumentan la concentración de glucógeno en el hígado
y eventualmente causan la muerte.

Energía

Son necesarias las siguientes consideraciones generales, relacionadas con la
energía:

. Los peces no gastan energía para mantener la temperatura corporal, pues
son ectodermos.
. Excretan los residuos nitrogenados en la forma de amonio, directamente
por las branquias por un mecanismo de simple difusión, sin tener que
recurrir a grandes gastos energéticos para transformarlo en ácido úrico o
urea, caso de las aves y mamíferos, quienes además lo excretan por vía
urinaria.
. En su desplazamiento los peces gastan muy poca energía por su forma
hidrodinámica y su densidad corporal parecida a la del agua.
Las exigencias de energía de los peces son expresadas en términos de energía
digestible (ED) que corresponde a la fracción de energía, del total contenido en el
alimento (Energía Bruta, EB), que es absorbida por el organismo; la energía
restante es excretada en las materias fecales.


Se tiene muy poca información útil sobre los requerimientos de energía en dietas
artificiales para los peces, pero en términos generales se deben tener en cuenta
las siguientes consideraciones:

. Con el aumento de la temperatura del agua la tasa metabólica y
consecuentemente, los requerimientos de energía para el mantenimiento,
también aumentan.
. Los requerimientos energéticos son inversamente proporcionales al tamaño
del animal.
. Los requerimientos energéticos aumentan durante los períodos de
producción gonádica y actividad reproductiva, dependiendo del estado
fisiológico.
. La calidad del agua y el estrés causado por factores como la
contaminación, el aumento de la salinidad, bajas concentraciones de
oxígeno disuelto y confinamiento excesivo, aumentan los requerimientos
energéticos para mantenimiento.
Minerales

Son importantes para la formación de huesos y dientes, metabolismo energético,
componente de los fosfolípidos en las membranas celulares, cofactores
enzimáticos de diversos procesos metabólicos, componente de la hemoglobina,
equilibrio osmótico y balance ácido – base de la sangre, transmisión de impulsos
nerviosos, componentes de las hormonas tiroideas, componentes de las sales
biliares, etc.

Se clasifican en macrominerales (necesarios en mayores cantidades por el
organismo) como el calcio, fósforo, potasio, magnesio, cloro y sodio; y, los
microminerales (requeridos en pequeñas cantidades) como hierro, manganeso,
zinc, cobre, yodo y selenio.

Las harinas de carne y hueso y las harinas de peces, son buenas fuentes de
minerales. Las materias primas de origen vegetal como las tortas y las harinas,
son muy pobres en minerales, por eso se requiere su suplementación.

Vitaminas

Son consideradas compuestos esenciales, actúan como componentes o
cofactores enzimáticos en diferentes procesos metabólicos y presentan acciones


fisiológicas específicas esenciales para el crecimiento, reproducción y salud de los
peces.

Las deficiencias vitamínicas generalmente se manifiestan en enfermedades
irreversibles, por esto la necesidad de incorporarlas en las dietas artificiales.

Principales parámetros de medición de eficiencia

. Tasa de conversión de alimento = Alimento consumido (g) / Ganancia de
Peso Vivo (g). Indica la cantidad de alimento suministrado para cada
unidad de peso ganado.
. Eficiencia de utilización de proteína = Ganancia de peso vivo (g) /
Proteína Bruta Consumida (g). Indica cuánto se ha ganado en peso vivo por
unidad de proteína consumida.
Métodos de alimentación

Alimento Natural

Podemos afirmar que los alimentos naturales poseen alto valor energético, altos
niveles de proteína de excelente calidad y se constituyen en importantes fuentes
de vitaminas y minerales.

Alimento
natural
MS
%
PB LIPIDOS CENIZAS ENN EB(Kcal/kg)
Fitoplancton 14-22 17-31 4-10 27-47 -2200-3800
Vegetación
acuática
15.8 14.6 4.5 13.9 -3900
Rotíferos 11.2 64.3 20.3 6.2 -4900
Oligoquetos 7.3 49.3 19 508 -5600
Artemia 11 61.6 19.5 10.1 -5800
Cladóceros 9.8 56.5 19.3 7.7 28.2 4800
Copépodos 10.3 52.3 26.4 7.1 9.2 5500
Insectos 23.2 55.9 18.6 4.9 20.1 5100
Chironomides
(Larvas)
19.1 59 4.9 5.8 22.5 5000
Moluscos 32.2 39.5 7.8 32.9 7.5 3900

Tabla No. 7 Composición porcentual con base en la materia seca del alimento natural
presente en el agua de los estanques (Adaptado de Hepher, 1989).

La importancia del alimento natural en la producción de peces disminuye con el
aumento de la biomasa por unidad de área; pues, cuanto mayor sea la biomasa


menor será la cantidad de alimento natural disponible para cada pez, aumentando
la necesidad de alimento suplementario para el mantenimiento de la tasa de
crecimiento deseada. En condiciones de cultivo en estanques con baja renovación
de agua y bajas densidades de biomasa, cerca de 30-40% de la ganancia de peso
de las tilapias, 15-20% en la carpa común y cerca de 10% del bagre de canal,
pueden ser atribuidos al aprovechamiento del alimento natural.

Estrategias de Alimentación

1. Alimento natural
Esta estrategia es utilizada en sistemas extensivos y semiintensivos de
explotación. El crecimiento de los peces depende totalmente del consumo de
animales vivos y de plantas, existentes de forma natural en el cuerpo de agua. El
crecimiento de los peces incrementará con el aumento de la productividad del
estanque y decrecerá al aumentar la densidad de carga.

2. Fertilización
Consiste en la incorporación de compuestos orgánicos e inorgánicos al cuerpo de
agua, a manera de abonos o fertilizantes, con el fin de incrementar la producción
de alimento vivo (animales y plantas).

Los fertilizantes inorgánicos son los mismos que se usan en agricultura. Los
abonos orgánicos están representados en excrementos de animales, fertilizantes
verdes (desechos de plantas recién cortadas) y subproductos de la agricultura,
frescos o ensilados. Sirven como sustrato para el crecimiento de bacterias y
protozoarios, los que son alimento para los peces.

3. Dietas suplementarias
Usado en sistemas semiintensivos y consiste en la oferta de nutrientes para los
animales en crecimiento y ceba, para complementar el alimento natural que
tienen los estanques.

Los alimentos suplementarios normalmente consisten en subproductos animales
o vegetales de bajo costo, que se suministran solos, frescos o no procesados o
en combinaciones con otras materias alimenticias.

4. Dietas completas

Consiste en la provisión externa de un alimento de alta calidad, nutricionalmente
completo y con un perfil de nutrientes predeterminado, de acuerdo a los
requerimientos metabólicos de la especie y su estado fisiológico.

Manejo de la alimentación

Luego de la compra de la ración alimenticia, la responsabilidad pasa a ser del
piscicultor, por lo tanto deben tenerse en cuenta las siguientes consideraciones:

ASPECTO GENERAL CONSIDERACIONES
Evaluación inicial de la calidad de los
concentrados.
Depende del prestigio y seriedad de la
empresa comercial productora. Para
confirmar el aporte de nutrientes puede
recurrirse a un análisis bromatológico.
Almacenamiento de concentrados Debe ser sobre estibas de madera, en
tanques plásticos, en sitios secos,
ventilados, protegidos del sol, de las
altas temperaturas, de los insectos y
roedores. En lo posible consumirlos
antes de 30 días de almacenamiento.
Ajuste periódico de granulometría El tamaño de los gránulos debe
ajustarse en función de la especie y el
tamaño de la boca.
Ajuste en los niveles y frecuencia de
alimentación
En condiciones adecuadas de
temperatura y de calidad de agua, es
necesario alimentar entre 4-6 veces al
día a una tasa entre el 15-20% del peso
vivo, en la fase de larvicultura; de 2-3
veces y a una tasa del 3-5% del PV, en
la fase de alevinaje y recría y, de una 12
veces en la fase de engorde, a una
tasa del 1% del Peso Vivo. De todas
formas, deben realizarse muestreos
cada 4-6 semanas para hacer los
ajustes necesarios según la biomasa.
Métodos de alimentación En granjas pequeñas se acostumbra
manualmente, y el operario vigila
detenidamente la voracidad y velocidad
del consumo del alimento. En granjas
tecnificadas el suministro es de tipo
mecánico controlado manualmente,


como tractores, camiones o
boleadoras. También se utilizan
alimentadores automáticos (controlados
por reloj según horarios y cantidades
programadas) o dispensadores por
demanda accionados por los mismos
peces cuando tienen hambre.

Horario y sitio para el suministro de

Es necesario suministrar el alimento en
alimento

horas frescas, hay especies que
prefieren horas de baja luminosidad. El
sitio debe permitir el acceso de los
peces, libre de plantas acuáticas y con
suficiente profundidad para permitir el
libre movimiento de los animales
durante la captura del alimento. Estas
prácticas generan una rutina y
costumbre en los animales.

Mejoramiento Genético en peces

Introducción

El mejoramiento genético en los peces tiene las siguientes potencialidades:

. La mayor variabilidad genética que presentan las especies poiquilotermas
como los peces, facilitan los programas de selección.
. La fecundidad de los peces es considerablemente mayor a la de los
vertebrados terrestres, lo cual permite mayores intensidades de selección.
. En muchas especies su intervalo de generación es mucho menor que en
los mamíferos, permitiendo observar los resultados de los programas
genéticos en menor tiempo.
La mayoría de las características de importancia económica en los sistemas de
producción acuícola, tales como la tasa de crecimiento, conversión alimenticia,
mortalidad, calidad de la canal, fecundidad y tolerancia a otros ambientes, están
bajo el control de un elevado número de genes (herencia poligénica) que se
distribuyen como caracteres cuantitativos y continuos, producto de la segregación
de varios loci, cuya expresión puede ser modificada por el cambio en la frecuencia
de los genes de una población a través del uso de programas de selección y de
cruzamientos (Cook,1993).


El Fenotipo o expresión del carácter externo se define como la suma del genotipo
y los efectos medioambientales. El genotipo de un individuo está constituido por
dos clases de genes, unos con acción aditiva cuyo efecto se transmite de padres a
hijos independientemente de la combinación en que se encuentren. De estos
efectos genéticos hacen uso los programas de selección. Los otros genes tienen
acción no aditiva y su efecto depende de la combinación genética que ocurra en la
progenie. El vigor híbrido o superioridad de los individuos cruzados está ligado la
heterocigosis o diferencia genética entre los padres. A la fecha un pequeño
número de especies de peces y crustáceos han sido evaluadas en la varianza
genotípica de los caracteres productivos.

Sistemas de Mejoramiento

Selección

La heredabilidad es la proporción de varianza genética aditiva sobre la cual se
fundamenta la selección y tener conocimiento de su magnitud es de gran ayuda
para predecir cuál programa de selección es más efectivo. En general puede
decirse que peso y longitud son uno de los atributos que ofrecen a priori ciertas
garantías de poder ser seleccionados con éxito.

Especie / Rasgo Índice de herencia
Tilapia áurea- Ganancia de peso 40
semanas
0.38 +/-0.08
Tilapia roja – Peso 40 semanas
(hembras)
0.34+/-0.08
Carpa – Peso 4 meses 0.48
Salmón coho – Peso 141 días 0.22
Trucha –Peso 243 días 0.60
Bagre de canal – Peso 48 semanas 0.27

Tabla No. 7 Índice de herencia de la ganancia de peso en diferentes especies (adaptado

F. Gallego)
Realizando selección masal en tilapia nilótica para peso a los tres meses de edad,
Basiao y Doyle (1999) encontraron una respuesta positiva del 3%, la cual
representa una ganancia proyectada del 34% en cinco generaciones. La
heredabilidad realizada fue de 0.16.

En el programa de selección en el Salmón de Noruega, la nueva generación crece
10% más que la anterior cada año, se estiman 18 años para duplicar el peso
inicial. Las hembras de trucha arco iris maduraban a los 4 años con un peso
aproximado de 700 gramos, después de un programa de selección las hembras


mejoradas maduran a los dos años con un peso de 4.5 kilogramos, además
producen mayor número de huevos (Pérez, 1996).

Al realizar selección para dos características, color y peso, en la Estación
Piscícola de Alto Magdalena del entonces Instituto Nacional de Pesca y
Acuicultura -INPA, la presión de selección por color disminuyó la respuesta de
selección en peso en la primera generación, cuando se utilizó selección sobre la
ganancia de peso a los 180 días de edad, como único carácter, se obtuvo una
respuesta de 85.6 g en promedio a favor del grupo de selección con relación al
grupo control (Gallego, 1999).

Después de 10 años de selección, durante 4 generaciones en salmón coho se han
alcanzado incrementos del 60% en la tasa decrecimiento y disminución en los
costos de producción (Guo, 1996).

Métodos de selección

. Masal: Consiste en escoger los mejores individuos en el carácter
seleccionado, a partir de selección masal o individual, para hacer de ellos
los nuevos reproductores. Los caracteres que mejor responden a la
selección masal son aquellos que tienen heredabilidades medias de 0.20 a
0.40.

. Selección Familiar: Se tiene el tipo interfamiliar en el cual se escogen las
mejores familias de varias que constituyen un grupo de comparaciones (no
deben ser menos de 45 parejas) e intrafamiliar en el que se seleccionan los
mejores individuos de las familias. La selección familiar evita la
consanguinidad al utilizar apareamientos rotacionales, además es útil para
mejorar la conversión alimenticia, pues es más fácil medir los promedios
familiares que individuales. En la selección individual existe más
probabilidad de consanguinidad. Cuando se escogen las familias con mayor
promedio (5-15%), las hembras de una familia se aparean con los machos
de otra, siguiendo la técnica de troncos de apareamiento (Tucker y
Robinsón, 1990). Si se desea mayor ganancia genética se debe seleccionar
los mejores hijos de las mejores familias (Selección intrafamiliar).
Cruzamientos

Son una forma de realizar mejoras genéticas, ya que la heterosis o el vigor híbrido
permiten a la descendencia superar a los progenitores en uno o varios caracteres.
En los sistemas permanentes de cruzamiento se pueden obtener beneficios aún
cuando los caracteres de interés económico muestren una acción puramente
aditiva si se logra la complementación de al menos dos rasgos en un mismo
individuo.


Efectos de la consanguinidad

La alta fecundidad de los peces ha permitido utilizar como reproductores a muy
pocos individuos, lo que ha traído como consecuencia tamaños efectivos muy
pequeños, conllevando a la pérdida de variabilidad genética y a la presencia de
consanguinidad.

Los efectos de la consanguinidad o endogamia sobre los caracteres productivos
son conocidos como la depresión consanguínea. En carpas se encontró una
reducción del 15% en el crecimiento cuando el apareamiento fue entre hermanos,
en truchas arco iris se incrementa el porcentaje de deformidades y se disminuye la
conversión y el peso. En la mayoría de especies la consanguinidad reduce la
resistencia a la manipulación y a las enfermedades.

En salmónidos, valores de consanguinidad del 25% ocasionan disminuciones en la
tasa de crecimiento del 26.2% y en la conversión del 14.6%, igualmente la
sobrevivencia se reduce en un 10.3% (Gjerde y Shaeffer, 1999).

Troncos o lotes de apareamiento

Es una técnica utilizada para producir los reemplazos de los reproductores, evita
la consanguinidad y permite hacer apareamientos de individuos seleccionados
para diferentes características.

Las prácticas son las siguientes:

. Reproducir cada lote por separado.
. Seleccionar en cada lote machos y hembras por las características de
interés.
. Conformar los troncos uniendo los machos seleccionados de un lote con las
hembras seleccionadas de otro lote.
Para producir después la segunda generación de reemplazos, los machos y
hembras del lote E se pueden aparear con las hembras y machos del lote G y los
del F con los del H. Cuanto más troncos o lotes se establezcan mayor número de
generaciones se pueden obtener sin producir o incrementar la consanguinidad.


LOTES A B C D


1 2 3 4 5 6 7 8
1 X 43 X 2 5 X 8 6 X 7


NUEVOS
LOTES E F G H
1,3,5,7 =MACHOS 2,4,6,8 =HEMBRAS

Esquema No. 9 Troncos de apareamiento

Principios básicos de la criopreservación de esperma de peces

Esta técnica busca preservar indefinidamente el potencial total de vitalidad y las
funciones metabólicas normales de las células, mediante su estabilización
criogénica generalmente a -196°C.

Ventajas

. Permite contar permanentemente con una fuente de semen de buena
calidad con fines reproductivos.
. Permite aumentar la frecuencia de reproducción artificial para la crianza o
repoblación de una especie.
. Favorece el transporte e intercambio de material genético para el
mejoramiento de especies y la actividad de producción animal.
. Disminuye costos de sostenimiento de reproductores cuando se dispone del
material criopreservado.
. Permite también utilizar el semen de especies silvestres que en cierta forma
se están desperdiciando genes capaces de brindar resistencia a
enfermedades, plagas y al medio ambiente.
. En poblaciones amenazadas de extinción, representa una buena opción
para conservación de su material genético para futuros repoblamientos.

Desventajas

. Técnica aún en investigación.
.. Inversión inicial costosa.
. Falta de personal técnico especializado en el área.
El esperma de peces

El esperma de los peces es altamente diverso en cuanto a sus formas de
transmisión, fertilización, morfología y filogenia. Cuando el esperma es liberado en
el agua y presenta una fase de natación libre se denomina aquasperm, el cual en
peces corresponde al tipo denominado ectaquasperm o de fertilización externa.
Cuando los espermatozoides son implantados directamente al interior de la
hembra y se produce una fertilización interna se denominan intraesperm
(Jamieson, 1990).

Al igual que en los mamíferos, los espermatozoides de los peces poseen cabeza
(con núcleo y ADN); la parte media y el flagelo (con 9 pares de microtúbulos
periféricos y en algunas especies uno central). La forma de la cabeza puede variar
de redondeadas hasta ovoides y elongadas.

El proceso de la crioconservación comprende tres pasos fundamentales en los
cuales se presentan diferentes reacciones fisicoquímicas en las células: en la
congelación empieza a formarse hielo sobre el exterior de la célula y a medida que
baja la temperatura, empieza a deshidratarse. Si el enfriamiento es muy lento, la
célula puede perder agua suficiente para no congelarse en el interior, sin embargo
esto no sucede por lo general y en el semen el ritmo de enfriamiento requerido
para el enfriamiento es demasiado lento para ser factible (IFGB,1996). Cuando las
células son enfriadas en una solución acuosa, ambas, células y solución, son
enfriadas en extremo; tomando lugar la nucleación heterogénea, usualmente en la
solución extracelular. Cuando el agua es congelada, la solución extracelular
cambia su concentración progresivamente. Si la tasa de enfriamiento es lenta,
existe el tiempo suficiente para que la célula pierda agua hasta quedar en un
equilibrio osmótico con la concentración de la solución extracelular; si embargo, si
existe una excesiva deshidratación la célula muere (Jamieson, 1990).

Una situación de equilibrio que permita la sobrevivencia de la célula está dada por
una tasa de enfriamiento lo suficientemente alta que reduzca el tiempo de
exposición a la solución concentrada y lo suficientemente baja para minimizar la
cantidad de hielo intracelular disminuyendo el nivel de peligro de lesiones de la
célula. Ciertos químicos pueden incrementar el balance entre los efectos del hielo


intracelular y la solución concentrada, así se mejora la sobrevivencia. Estos son
denominados crioprotectores (Jamieson, 1990).

La descongelación es otro punto crítico de la técnica y el ritmo de esta es esencial
para no destruir la célula. Debe ser tan lenta como para permitir la rehidratación
pero tan rápida como para que los cristales no se expandan demasiado. En semen
de peces parece que la mayor rapidez posible es lo mejor, pero todavía no es
regla general. Durante la descongelación, procesos fisicoquímicos toman lugar en
orden inverso. Teóricamente la tasa de descongelación debe ser similar la de
enfriamiento, sin embargo hay una cantidad pequeña de hielo presente, cuando se
utiliza una tasa de enfriamiento óptimo y se produce una recristalización durante
la descongelación, formándose cristales de hielo intracelularmente que son letales.

Teóricamente el material biológico puede ser mantenido indefinidamente en
estado de congelación.

Sin embargo reacciones a nivel atómico toman lugar a temperatura del nitrógeno
líquido. Estas reacciones causan descomposición del núcleo por radiación, lo cual
es de gran interés en la criopreservación debido a que podría ser potencialmente
mutagénico.

Los crioprotectores son sustancias químicas que ayudan a minimizar daños de la
célula asociados a la formación de hielo. Deben ser de bajo peso molecular,
altamente soluble en solución acuosa de electrolitos, penetrar en la célula y no ser
tóxico a altas concentraciones. Pueden ser permeables a la membrana celular de
la célula y no permeables. Los permeables más comúnmente utilizados son
DMSO (Dimetil Sulfóxido), glicerol, metanol y 1.2 propadiol. Los no permeables
incluyen azúcares (sucrosa, glucosa), polímeros (destrona, hidroxietil almidón,
polivinilpirolidol) y proteínas (yema de huevo, suero, leche descremada)
(Ashwood-Smit et al 1972).

Los lípidos con su potencial de disminuir la temperatura de la fase de transición de
la membrana, son utilizados específicamente para minimizar los daños de la
membrana durante el inicio del enfriamiento (choque frío) y congelación. (Graham
y Foote, 1987).

La proporción de dilución semen-diluyente para las diferentes especies de peces,
varía desde 1:1; 1:3; 1:5; 1:8 y 1:10. La mezcla se puede hacer en bolsas
plásticas, a temperatura ambiente o manteniendo el crioprotector refrigerado a 4
oC.

Evaluación del semen:

Toma de la muestra:


Los machos deben anestesiarse, por ejemplo con quinaldina, a razón de 0.5 ml
por 20 litros de agua. Una vez los peces pierden el equilibrio se sujetan con la
ayuda de una toalla por la aleta caudal y se les cubren los ojos para mantenerlos
mas tranquilos. Seguidamente se seca la parte ventral con toallas de papel para
evitar el riesgo de activación del semen con el agua. (Alderson y Macneil, 1984 y
Steyn et al, 1989).

Se procede a hacer un suave masaje y extrusión antero-posterior a la altura de las
gónadas hasta el poro genital, el semen se recolecta en una jeringa estéril de 1 a
5 ml para evitar contaminación con orina, heces y sangre. (González, 1994). Se
recomienda realizar la evaluación seminal dentro de los cinco minutos siguientes a
la recolección, aunque las muestras recolectadas se pueden mantener en
temperaturas bajas 4 oC durante varias horas, pero se debe tener cuidado de
evitar el contacto con agua porque el semen se activa y ya no sirve para
criopreservar.

Características físico-químicas:

. Volumen: se mide con jeringas desechables estériles de 1 a 5 ml y se
deposita en bolsas plásticas.
. Color: se determina por observación directa. El semen de algunas
especies presenta color blanco como en el caso de la cachama blanca y
otras color crema como en el bagre rayado y el capitán de la sabana
(González, 2001). El color también indica posible contaminación de la
muestra, por ejemplo, tonalidad roa a rojo por sangre, amarillento o aguado
por orina.
F- 29 Extracción de semen de un bagre


. P.H: se puede hacer por colorimetría agregando una gota de semen sobre
papel indicador, o con un potenciómetro digital de alta sensibilidad,
colocando el sensor en el fluido seminal. Generalmente el semen es de pH
neutro o cercano a él.
. Aspecto: se describe como cremoso, lechoso, o acuoso en relación con la
concentración de espermatozoides.
Características microscópicas:

¾ Motilidad: Corresponde al porcentaje de células vivas que se movilizan en
cualquier dirección, colocando una gota de semen sin diluir sobre una
lámina portaobjetos, se realiza un extendido y se observa al microscopio
para verificar en primera instancia la inactivación del esperma. Se agrega
una gota de agua para activarlo y se observa inmediatamente asignando
una calificación en porcentaje. Se reconocen tres movimientos: uno rápido
y vibrante con el mayor poder fecundante, un segundo en que la vibración
generalmente decae y un tercero en el que cesa todo movimiento
(Rodríguez, 1992).

. Vitalidad o supervivencia: Determina el número de espermatozoides vivos
y se hace por coloración selectiva nigrosina-eosina (Cecolfes, 1988). Con
una proporción 1:1 de semen colorante se realiza un extendido sobre un
portaobjetos, se deja secar a temperatura ambiente y se observa al
microscopio, haciendo un conteo para obtener el porcentaje de células
vivas. Los espermatozoides vivos no absorben el colorante, mientras que
los muertos se colorean de rojo y son en apariencia más grandes y
redondos.
. Concentración: Indica la cantidad de células espermáticas por unidad de
volumen. Para realizar el conteo se debe diluir el semen según las
recomendaciones de Kavamoto (1986) de 1:5000 o 1:2000 del semen con
respecto al diluyente. Luego de la dilución homogénea se lleva a la cámara
de Neubauer para proceder al conteo respectivo.
. Morfología: Describe la forma de las células espermáticas con la ayuda de
la técnica de Coffin (Rodríguez, 1992). La cabeza de los espermatozoides
se tiñen de púrpura, las colas y porciones intermedias de rosa a rojo. La
presencia de porcentajes elevados de formas anormales indican baja
capacidad fecundante.

Congelación

Normalmente se obtiene con nitrógeno líquido (-196oC) en proporción de
dilución semen-diluyente de 1:1 a 1:10. La descongelación puede ser gradual

o en un solo paso. El semen se coloca en pajillas especiales plásticas,
marcadas y selladas en uno de sus extremos en presentaciones de 0.25 ml,
0.5 ml y 1 ml.
Almacenamiento

Existen termos diseñados para mantener el nitrógeno líquido de varios
tamaños y diseños. También se cuenta con termos secos en los cuales el
nitrógeno líquido es absorbido en un material poroso, ideal para el transporte.

Descongelación

Se realiza sumergiendo la pajilla en agua precalentada de 40 a 60 oC durante
varios segundos (Alderson y Macneil, 1987); o pulverizando la pajilla y
adicionando inmediatamente a los huevos (IFGB, 1996).

Pruebas de efectividad

Determina el porcentaje de motilidad post descongelación. Por lo general se
requiere de una solución activadora para el esperma congelado que sirva de
medio adecuado para la supervivencia del semen luego del proceso y ayude a
inducir o iniciar la motilidad. Estas soluciones corresponden a sales como
NaHCO3 o NaCl. Con la ayuda de una pluma se realiza una mezcla
homogénea de huevos y esperma, después de 10 minutos se agrega agua
hasta cubrirlo, dejando 10 minutos más en reposo, tiempo en que se inicia la
hidratación y se cierra el micrópilo; finalmente se procede al lavado y se deja
en agua limpia durante media hora para que se hidraten completamente, antes
de proceder a ubicarlos en las respectivas incubadoras.

Sanidad Acuícola

Las enfermedades en los peces en cultivo

La signología que puede indicar la existencia de una enfermedad es la siguiente:

. Cambios en el comportamiento y/o la integralidad corporal de los peces.
. Disminución de los rendimientos productivos.
. La muerte de los animales afectados, en los casos extremos.

Dentro de las causas de enfermedad tenemos de orden físico, químico o biológico,
actuando solas o en asociación, para perturbar la fisiología normal del animal y
manifestándose de manera natural o inducida (bajo la acción humana).

Todos los procesos de manipulación inadecuada desencadenan en estrés en los
animales y predisponen a la presentación de enfermedades. Entre ellos contamos
la captura, selección por tamaños, transporte, transferencia a aguas de
condiciones físico químicas diferentes, subalimentación, sobrealimentación y altas
densidades. Se suman a esto problemas causados por la calidad del agua y los
cambios ambientales difíciles de controlar, tales como la temperatura.

Las causas de las enfermedades se pueden agrupar así:

¾ De orden físico:

Dadas por las propiedades del agua, especialmente con la temperatura y
materiales en suspensión. La temperatura condiciona el contenido de Oxígeno
disuelto en el agua, también influye sobre la toxicidad de otros compuestos o
facilita su absorción por elevación del ritmo respiratorio. (Kinkelin et al, 1991).

¾ De orden químico:

Relacionadas con las propiedades del agua (P.H, alcalinidad, contenido de gases
disueltos, presencia de materiales nitrogenados, toxinas segregadas por algas o
diversos contaminantes como mercurio, pesticidas, clorofenoles, detergentes,
entre otros.

¾ De orden biológico:

Representadas en bioagresores como virus, hongos, bacterias y parásitos, los
cuales a su vez están condicionados a los factores físicos y químicos del medio
ambiente.

Los bioagresores son seres vivos que subsisten a expensas de los peces, están
siempre presentes donde se encuentran sus huéspedes para los que representan
una amenaza permanente. En el medio acuático conviven animales y vegetales;
igualmente se encuentran predadores, hospedadores intermediarios de parásitos,
algas tóxicas, que potencialmente pueden llegar a causar serios daños.

Clasificación de las enfermedades

Las enfermedades se pueden clasificar según sus orígenes así:

. Infecciosas: tales como virus, bacterias, hongos y parásitos.

. Nutricionales: por deficiencias nutricionales o por toxinas producidas por las
mismas.
. Por contaminantes químicos en el agua.
Mecanismos de defensa de los peces

. Piel: las células epidérmicas producen un mucus, el cual inhibe el
establecimiento y desarrollo de microorganismos patógenos. También las
escamas representan una barrera defensiva.
. Inflamación: corresponde a una reacción fisiológica de defensa y
reparación de daños tisulares.
. Reacción inmune: el organismo reacciona a través del sistema
inmunológico mediante la producción de anticuerpos, cada vez que un
antígeno (patógeno) ingresa en él.
Características de un pez sano

. Reacción permanente de fuga.
. Reacción de gira normal de los ojos cuando se saca del agua.
. Movimiento de aleta caudal con el fin de mantener la siempre vertical.
. Coloración rojo intenso de las branquias.
. Coloración del pez según la especie brillante, lubricada, sin opacidades.
Signología clínica de un pez enfermo

¾ Letargo, pérdida de apetito.
¾ Pérdida de equilibrio, nadado en espiral o vertical.


¾ Agrupamiento en la superficie y respiración agitada.

¾ Producción excesiva de mucus que genera opacidad generalizada del
cuerpo.

¾ Coloración anormal, teniendo en cuenta los parámetros propios de la
especie.


o Erosiones, úlceras en la piel y las aletas.
¾ Branquias inflamadas, erosionadas o pálidas.
. Abdomen inflamado, algunas veces lleno de fluido o sangre, ano
prolapsado y enrojecido.
.. Exoftalmia
Para el desarrollo de una infección deben darse las siguientes situaciones:

. Presencia del organismo patógeno.
. Medio ambiente inadecuado que ocasiona estrés al pez.
. Peces débiles y susceptibles a enfermarse.
Factores que afectan los peces de cultivo

¾ Físicos: los más incidentes sobre la salud de los peces son la
temperatura, la luz y los gases disueltos.

. Químicos: la contaminación (pesticidas, residuos de metales pesados,
materia orgánica), los desperdicios metabólicos de los mismos peces
(amonio) y partículas en suspensión (afectan branquias y huevos).
o Biológicos: la densidad, la nutrición, la presencia de microorganismos,
algas tóxicas y ciertos animales (crustáceos, moluscos y aves) pueden
comprometer grandemente la salud y el bienestar de los peces al
manejarse inadecuadamente y sin estricto control.
Técnicas de Muestreo para análisis

Los muestreos se realizan sobre lotes (grupos de acuerdo a edad, origen y cepa)
siempre que hayan compartido el mismo cuerpo de agua.

Para el diagnóstico de una enfermedad se requiere de una serie de pasos, tales
como el diligenciamiento de formatos a manera de anamnesis e historia clínica
en donde se revelen los cambios de comportamiento de los peces. Para la
recolección y envío de muestras de animales enfermos se debe proceder así:


¾ Ejemplares vivos en agua: especialmente para alevinos, dedinos y
juveniles.

. Ejemplares moribundos: enviados dentro de cajas de icopor con hielo
triturado, cuando las muestras se reciben en el laboratorio el mismo día de
envío.
¾ Muestras congeladas: los peces se empacan individualmente en bolsas
plásticas, colocándolas en un recipiente con hielo. No es la forma más
adecuada pero se utiliza como último recurso.

. Muestras preservadas: peces moribundos con señales de la enfermedad
se colocan en un recipiente con solución acuosa de formaldehído al 4%,
alevinos y dedinos pueden remitirse enteros; aún cuando su talla sobrepase
2 cm es necesario efectuar una incisión en la parte ventral para que el
líquido preservativo penetre en la cavidad abdominal, de esta forma se
preservan los tejidos para análisis histológico.
Una vez en el laboratorio se procede a realizar el examen externo y seguidamente
el interno en una bandeja de disección.

Enfermedades producidas por Bioagresores

Parasitología

Inicialmente debemos hacer diferenciación entre los siguientes términos:

. Parasitismo: sucede cuando un ser vivo (parásito) se aloja en otro de
diferente especie (huésped u hospedero) del que se alimenta.
. Comensalismo: se presenta cuando dos especies diferentes se asocian en
tal forma que solo uno de ellos obtiene el beneficio, pero ninguno sufre
daño. Un ejemplo de este caso tenemos la ameba no patógena (Botero y
Restrepo, 1992). Los principales parásitos reportados en Colombia en la
cachama (alevinos y dedinos) corresponden a tremátodos monogéneos,
protozoos externos como Piscinoodinium sp. e internos como
microsporidios (Eslava e Iregui, 1998).
Enfermedades bacterianas


. Bacterias Gram-negativas:
GÉNERO LESIONES OCASIONADAS
Vibrio Necrosis cutáneas superficiales
especialmente en la cabeza, a veces
con bordes pálidos o rojizos que en el
centro dejan ver la musculatura
inflamada o enrojecida. Los peces
afectados muestran hemorragias en la
base de las aletas y cola, alrededor del
ano y en la boca y decoloración de la
piel.
Aeromonas Hemorragias en branquias, ano y
órganos internos, así como abscesos y
úlceras, aletas sangrientas, descargas
sanguinolentas por ano y nariz.
Pseudomonas Causan la septicemia bacterial, también
ocasionan hemorragias en piel y base
de las aletas.
Cytophaga Las lesiones se limitan a piel, aletas y
músculo, con coloraciones
blanquecinas llegando a erosionar por
completo la aleta caudal dejando
expuesto el músculo. Ataca
especialmente la trucha.
Edwarsiella y Yersinia Lesiones cutáneas hasta peritonitis y
necrosis del tejido hepático y renal.
Yersinia Inflamación y erosión de mandíbulas y
paladar., exoftalmia bilateral y
aletargamiento

. Bacterias Gram-positivas:
GÉNERO LESIONES/ SÍNTOMAS
Estreptococos Síntomas nerviosos, cambios en la
pigmentación de la piel, exoftalmia,
ascitis sanguinolentas (Berridge et al,
1997);


Corynebacterium Lesiones en el riñón de color blanco en
forma de nódulos granulomatosos,
rodeados de una zona de hiperemia.;
Mycobacterium Adelgazamiento extremo,
oscurecimiento de la piel y distensión
abdominal.

. Hongos y micosis
GÉNERO LESIONES/ SÍNTOMAS
Saprolegnia Afectan la piel y las branquias
Scolecobasidium Afectan el abdomen y la piel, con
ascitis, adherencias y zonas grisáceas
en los órganos internos.
Sphaeropsidales Afecta a alevinos especialmente.
Branchiomyces Se localiza en los vasos sanguíneos de
las branquias.

. Enfermedades virales
Los virus (del latín traduce veneno) se reproducen únicamente en células vivas del
huésped.

GÉNERO LESIONES/ SÍNTOMAS
Herpes Causante del epitelioma papiloso de la
carpa.
Irido Causante de la necrosis vírica de los
eritrocitos.

Problemas nutricionales


ALTERACIÓN SÍNTOMAS
Deficiencias de Vitaminas .. Liposolubles (A,D,E,K):
crecimiento incipiente, ceguera,
malformaciones óseas y
problemas de coagulación.
. Hidrosolubles (Complejo B):
ceguera, cataratas, hemorragias
internas pérdida de equilibrio,
convulsiones nerviosas y
coloración oscura en el cuerpo.
Eventualmente se presenta
fusión de las branquias.
Deficiencia en minerales Crecimiento reducido, deformación del
esqueleto, calcificación anormal de
espinas y radios de las aletas, aumento
en el depósito de grasas, cataratas y
flacidez muscular.
Sobreoferta de grasas Degeneración lipoide del hígado
(aspecto broceado e inflamado);
hemorragias en otros órganos y
palidecimiento de las branquias.
Intoxicación por aflatoxinas Tumores en el hígado (especialmente
en truchas), por presencia de hongos
del género Aspergillus en concentrados
mal elaborados o mal almacenados.

Control de enfermedades
Desinfección

Es una práctica comúnmente realizada para eliminar o inactivar patógenos, para la
cual debe tenerse en cuenta los siguientes aspectos:

. Poder microbicida del desinfectante.
. Características fisicoquímicas del agua.
. Concentración del desinfectante.
. Duración de la exposición al desinfectante.
. Dosis o cantidad a usar del desinfectante.

. Método de aplicación.
. Resistencia del patógeno a la acción del desinfectante.
Según sus características químicas los desinfectantes se pueden clasificar de la
siguiente manera:

1. Compuestos alcalinos: liberan iones OH-que tienen alto poder germicida
en soluciones acuosas.
. Soda cáustica o hidróxido de sodio: comercialmente se adquiere a
una concentración del 95 – 98%. Su mayor acción germicida se
obtiene en soluciones entre el 2 y el 4%. No debe exponerse al aire
porque reacciona con el CO2 y pierde su efectividad desinfectante.
. Cal: El CaO (Cal viva), en forma de polvo seco, no tiene poder
desinfectante, por lo tanto se requiere la mezcla con agua, a razón
de un litro de agua por un kilogramo de cal, para obtener Ca(OH)2
(hidróxido de calcio); a esta dilución se le agregan de 4 a 9 litros de
agua, dependiendo de la concentración a la cual se vaya a utilizar
(10-20%). Una vez preparada la solución debe emplearse lo más
pronto posible ya que se inactiva pasadas 10 horas.
2. Compuestos clorados: su acción es oxidante, se inactiva en presencia de
materia orgánica:
. Cal clorada: en solución acuosa libera oxígeno y cloro activo con
acción germicida. A temperaturas superiores a 25 oC se pierde Cloro.
. Hipoclorito de calcio: posee gran capacidad oxidante, 2.2 veces
superior a la cal clorada.
. Hipoclorito de sodio y potasio: similares al hipoclorito de calcio.
3. Aldehidos
. Formol: tiene el 40% de sustancia activa. Como desinfectante se
usa entre el 1 y el 4%. Para obtener una concentración del 1%, se
toma una parte de formol en 39 partes de agua.
Algunas de las sustancias activas más comúnmente utilizadas en piscicultura son:


. Cloruro de amonio: empleado para el tratamiento de Girodactilosis, a
razón de 10 – 25 g por litro de agua en forma de baño por 10-15 minutos.
. Azul de metileno: usado para el tratamiento de Ichthyophthiriasis (punto
blanco), tremátodos de la piel y branquias y como un medicamento de
alivio en todos los casos de enfermedad de las branquias cuando hay
dificultad para respirar. Se usa como baño permanente y la cantidad total
requerida se agrega en dos partes con un intervalo de un día, mientras que
en casos graves la concentración puede ser incrementada durante los días
siguientes. La solución madre es una dilución de 1 g en 100 cc de agua. Se
toman de tres a seis gotas de esta solución por litro de agua. Para baños
cortos (5 minutos) se recomienda 1 g por 100 l de agua.
. Cloruro de sodio: causa incremento de mucus que cubre la piel del
pez y en su desprendimiento remueve los organismos adosados a ella; y,
aumenta el peso específico del agua y cambia la presión osmótica del agua
haciendo reventar algunos parásitos externos. Se emplea por esto para el
tratamiento de parásitos externos (protozoarios y vermes), así como en
casos de enfermedades bacterianas.
. Formol: efectivo para el tratamiento de ectoparásitos como costia,
Trichodina, Ichthyophthirius y tremátodos monogenésicos; así como de
hongos y bacterias externas en concentraciones entre 1600 y 2000 ppm
durante 10-15 minutos. Debe tenerse la precaución en su uso, debido a
que el formol reduce 1 ppm el oxígeno por cada 5 ppm usados y en
temperaturas por debajo de 18 oC pude desnudar al pez del mucus que
recubre su cuerpo. Cuando se aplique al estanque se aconseja disponer de
aireación artificial para evitar las bajas de oxígeno. Se recomienda dosificar
de acuerdo a la temperatura: 250 ppm a 10 oC; 200 ppm de 10- 15 oC y
169 ppm a más de 15oC.
. Sulfato de cobre: usado como alguicida y ectoparasiticida (Trichodina,
Costia, Scyphidia, Ichthophthirius o afecciones externa causadas por
myxobacterias. Se recomienda para el tratamiento de branquiomicosis
(podredumbre de las branquias). Su uso se limita a la dureza de las aguas:
en aguas blandas no debe usarse; sólo en aquellas comprendidas entre
50 y 199 ppm de dureza total, a concentraciones de 0.5 a 2 ppm;
respectivamente.
. Solución de Yodo: nunca usarse en la modalidad de baños, se
recomienda su aplicación únicamente en el área afectada, cuidando que no
caiga sobre las branquias. Se diluye una parte de Yodo comercial (10%) en
9 partes de agua.

Métodos de tratamiento

. Inmersión: consiste en baños cortos de los peces a concentraciones
deseadas en recipientes independientes del medio en que viven.
. Chorro: se aplica la droga con la entrada del agua al estanque,
especialmente en canales o en incubadoras de huevos.
. Baño corto: Consiste en la adición de la droga al estanque y su
distribución homogénea dentro de él, y luego de una hora de acción se
debe recambiar totalmente el agua del estanque.
. Baño largo o indefinido: se trata de agregar directamente al estanque la
droga a bajas concentraciones para su distribución homogénea. Para
disminuir costos es muy práctico bajar el nivel de agua.
. Incorporado a la alimentación o tratamiento oral: se incorpora la droga
en el alimento, calculada su dosis de acuerdo a la biomasa del estanque.
. Inyección: es un tratamiento individual y sólo se realiza en ejemplares de
valor como en el caso de los reproductores. Se usa la vía intraperitoneal
(IP) e intramuscular (IM).
. Tratamiento biológico: consiste en la interrupción del ciclo de vida de
ciertos parásitos, eliminando sus hospederos intermediarios tales como
caracoles, aves, crustáceos y mamíferos, bien sea manualmente o
mediante filtros en la entrada del agua o con mallas protectoras
perimetrales y aéreas. En los llamados cultivos limpios se han generalizado
prácticas como el uso extractos de plantas que han demostrado tener
efectos medicinales antibacterianos y bactericidas, tales como el romero
(Rosmarinius officinalis), albahaca (Ocimium basilicum), guayaba (Psidium
guajava), eucalipto (Eucalyptus sp), pino (Pino sp), caléndula (Cassia alata)
y ajo (Caléndula officinalis).
Otros sistemas de producción

Además del cultivo de peces en estanques, existen otros que se llevan a cabo en
escenarios no tradicionales como en jaulas y corrales, asociaciones peces-patos,
peces-cerdos, aves de corral-peces, que han mostrado excelentes resultados en
la ceba de peces en aguas cálidas.


Cultivos en presas y reservorios


F 30 y 31 Panorámica Jaulas Flotantes Embalse Betania (Huila – Colombia)

Cultivo de peces en jaulas flotantes

Introducción

El cultivo de peces en jaulas flotantes es un sistema que se realiza en recintos
cerrados y suspendidos en el agua y se fundamenta en el mantenimiento de
organismos de cautiverio dentro de un espacio cerrado, pero con flujo libre de
agua. Las jaulas flotantes pueden ser móviles o semimóviles y se pueden instalar
en amplios reservorios, lagos, lagunas y embalses.

En los últimos 15 años el cultivo de peces en jaulas en aguas continentales se ha
incrementado en Europa, Asia, África, y América. En Asia se emplean para la cría
de carpas y tilapias y en los Estados Unidos para la cría de bagre de canal, tilapias
y salmónidos.

En Colombia el cultivo en jaulas flotantes se ha efectuado inicialmente con trucha
arcoiris (Oncorhynchus mykiss), en embalses con tilapia plateada (Oreochromis
niloticus), siendo reemplazada en la actualidad por el híbrido de tilapia roja
(Oreochromis spp.) y se cuenta con algunas experiencias en el cultivo en jaulas
con la cachama blanca (Piaractus brachypomus), cachama negra (Colossoma
macropomum) y la carpa roja (Cyprinus carpio).

Las dimensiones de las jaulas son muy variables, algunas son pequeñas y su
volumen no sobrepasa el metro cúbico, otras son más grandes, fijas y abiertas y
se diferencian de un recinto o corral en que tienen fondo y flotan (Bard et al.,


1975). Las jaulas pueden ser elaboradas en bambú, madera o en materiales que
aunque resultan más costosos tienen mayor duración y permiten un mejor flujo de
agua como son las mallas de nylon, plástico, polietileno y acero, entre otras.


F 32 y 33 Ceba de mojarra roja en jaulas flotantes Embalse Betania (Huila Colombia)

La mayor parte de los modelos utilizados son de tipo flotante y consisten en una
estructura circular, rectangular, cuadrada o poliédrica, hecha en madera, bambú,
tubo de acero o plástico, del que se suspende una red de fibra sintética. Para
mejorar su flotación se utilizan espumas de estirenos o canecas metálicas o de
plástico. Generalmente las jaulas se agrupan en balsas y se anclan al fondo del
lago, río o embalse, o se unen a la orilla por una pasarela de madera. Los modelos
de jaulas fijas se emplean en aguas poco profundas de fondo cenagoso.


F 34 Sistema de jaulas flotantes


Para montarlas se suspenden bolsas hechas en paño de red de fibra sintética
sobre postes clavados en el fondo; estas jaulas son más fáciles de construir y más
baratas, debido a que no llevan anillo de flotación que son más costosos, pero
tienen el inconveniente de que su resistencia a las condiciones meteorológicas
adversas es baja.

El cultivo en jaulas conlleva consecuencias a los cuerpos de agua, tanto por la
presencia física como por los cambios que se puedan inducir en las características
físicas, químicas y biológicas del agua, a causa del método de cultivo y de las
especies utilizadas. Como aún no existe un desarrollo importante en el país y no
se tiene una explotación considerable con este tipo de tecnología de producción,
en un futuro y a medida de su desarrollo es necesario elaborar una
reglamentación acerca de las instalaciones, cantidades, especies a utilizar y
sistemas de cultivo, ya que estos cuerpos de agua son de propiedad de la nación
y tienen que administrarse y manejarse en beneficio de la comunidad.


F 35- Panorámica Jaulas flotantes para ceba de trucha arco iris - Lago de Tota (Aquitania
Boyacá Colombia)

Selección del sitio y ubicación de las jaulas.

La adecuada selección del sitio para colocar las jaulas es determinante para
alcanzar el éxito del proyecto; por tal razón deben considerarse los siguientes
aspectos:

. Se requiere de zonas protegidas de los vientos fuertes, que a su vez
forman oleajes que pueden desestabilizar la estructura.

. En los embalses se debe conocer la cota mínima necesaria para los
requerimientos hidroeléctricos y los mínimos niveles en las épocas de
sequía, con el fin de establecer la ubicación de la infraestructura.
. También se debe considerar la acción de crecientes que cuando arrastran
palos y objetos flotantes pueden afectar la infraestructura, así como
incrementar la turbidez y el descenso de la temperatura, produciendo
disminución del consumo de alimento, baja de crecimiento y aparición de
enfermedades.
. En los ambientes naturales o en los embalses es posible la presencia de
diversos predadores que ocasionen roturas en las mallas, produciendo
pérdidas económicas.
. Evitar la instalación de las jaulas en ambientes con presencia de plantas
acuáticas flotantes o inmersas, puesto que son indicadores biológicos de
ambientes degradados por diversos orígenes de contaminación, por
cercanía de cultivos que aportan abonos y aguas negras.
Para una buena elección del lugar se deben tener en cuenta, por lo menos, los
siguientes parámetros:

Calidad del agua

Es uno de los principales aspectos a tenerse en cuenta para la viabilidad técnica,
puesto que el proyecto dependerá directamente de la calidad del agua disponible y
de la velocidad del intercambio del agua entre la jaula y el agua que la rodea de
acuerdo con Mercado y Siegert (1995); por consiguiente deben tenerse en
cuenta, como mínimo los siguientes parámetros:

. La transparencia del agua; es una de las condiciones que favorecen más
al cultivo de peces en jaulas flotantes y por otra parte es un indicador del
grado de enriquecimiento por nutrientes y de la productividad del
fitoplancton (población de algas microscópicas).
. La temperatura del agua; determina el nivel productivo del cultivo, ya que
la temperatura corporal de los peces que rige el metabolismo de los
alimentos, el crecimiento y la inmunidad, está en función de las variaciones
del régimen climático (Kinkelin y Ghittino, 1985).
. El Oxígeno Disuelto (OD): es el elemento que limita la producción y por
ende la densidad de siembra de los peces en las diversas explotaciones
acuícolas. Teniendo en cuenta que las especies tienen diferentes
exigencias, las necesidades varían de acuerdo con el rendimiento esperado

de las explotaciones (Beverigde, 1982). Los bajos niveles de OD producen
detención del crecimiento, aumento del factor de conversión de alimento e
incremento de la sensibilidad a las enfermedades.

. La turbidez: representada por la presencia de materias en suspensión,
consistentes en partículas minerales u orgánicas, finamente divididas, que
disminuyen la luminosidad dentro del cuerpo de agua, limitando la
fotosíntesis, proceso responsable de la presencia en un 90 % del OD en el
agua. Los desechos y las heces hacen parte de estos materiales que
deben ser evacuados constantemente por el flujo de agua.
. El Amoniaco (NH3): es uno de los productos del metabolismo del pez
excretado en un alto porcentaje por las branquias (85%) y proveniente de la
descomposición bacteriana de la materia orgánica al igual que los nitritos
(NO2), quienes además son el resultado de la actividad del ecosistema
(oxidación bacteriana). Estos factores son de gran importancia en el cultivo
en jaulas flotantes, ya que por sus altas densidades se puede presentar
toxicidad a concentraciones de amonio de 0.07 mg/l en exposición continua
induciendo patologías branquiales y a concentraciones mayores afectan el
sistema nervioso central, elevan la frecuencia cardiaca y respiratoria y
ocasionan mortalidad en el término de 2 a 3 horas. En el caso de los
nitritos, exposiciones permanentes a 0.1 mg/l inducen a lesiones
branquiales, alteración de la química sanguínea y la dificultad respiratoria
(Kinkelin y Ghittino, 1985).
Por tanto, la incidencia negativa de estos factores de la calidad del agua genera
estrés, que reduce la resistencia inmunitaria y alteraciones branquiales, que
facilitan la acción de enfermedades, que en diversos grados retrasan el
crecimiento, reducen la rentabilidad e incrementan las mortalidades (Kinkelin y
Ghittino, 1985).

Batimetría y tipo de fondos.

Es necesario conocer el tipo de fondo, la morfología y la profundidad para una
adecuada elección del sitio, el diseño y montaje de las jaulas.

Vientos, corrientes y mareas.

Se recomienda contar con registros históricos de los parámetros que caracterizan
los vientos, las corrientes y las mareas. El análisis de todos los factores anteriores
en su conjunto darán la pauta para definir correctamente la localización de la
granja y la ubicación de las jaulas, de tal manera que se garantice seguridad,
protección, flujo adecuado dua libre de contaminantes y correcto aporte de
nutrientes.


Acceso para el manejo.

Es esencial el fácil acceso a las jaulas para el manejo rutinario de alimentación,
limpieza, siembra, cosecha, etc.

Infraestructura

La infraestructura varía según las necesidades del piscicultor y las
características del cuerpo de agua:

. Jaulas flotantes y jaulas fijas;
. De superficie o sumergidas;
.. Individuales o modulares.
Por ejemplo, para lugares con aguas poco profundas de menos de 2 metros de
profundidad se recomiendan jaulas fijas. En sitios donde la brisa y la corriente
superficial son muy fuertes se deben instalar jaulas sumergidas.

Tipos de jaulas

Una jaula es “una estructura cerrada con mallas por los lados y en el fondo”,
cuya función fundamental es la de retener los peces, permitiendo el
intercambio de agua, entre la jaula y el ambiente que la rodea. En algunos
casos se cubren con malla en la parte superior para evitar predadores, escape
de los peces o protección de los rayos solares (Mercado y Siegert, 1995).

Se recomienda el uso de mallas o redes sin nudos, para evitar lesiones en los
peces por rozamientos. Esto previene la predisposición a enfermedades.

Aspectos a tener en cuenta para el tipo de jaula adecuada:

El diseño y la construcción de la jaula.
1) Ojo de la malla.
2) Forma de la Jaula
3) Tamaño de la jaula


4) El flujo del volumen de agua a través de la jaula.

5) Velocidad de la corriente.

6) Ubicación de la jaula con respecto al entorno.

7) Posición de la jaula con respecto a otras.

Jaulas fijas

Son las más adecuadas para trabajar en aguas someras y tranquilas. Carecen de
movilidad y de flotabilidad y están fijas al fondo.

Son variados los tipos de materiales utilizados que forman la infraestructura y no
son muy conocidas el conjunto de variables técnicas que permiten construir
diseños económicos y eficientes.

Jaulas flotantes

Condición que permite su flotabilidad y movilidad, la cual se consigue mediante
flotadores que pueden ser canecas, bloques de icopor de alta densidad, cuyo
número y tamaño varía de acuerdo con el tamaño y peso de las jaulas. Este
sistema es el apropiado para instalarse en cuerpos de aguas profundas (bahías,
estuarios, embalses, canales) o en el mar. Estas pueden ser individuales o
modulares, las individuales son de material rígido o flexible, sin armazón o con ella
(el armazón es la estructura utilizada para conservar la forma de la jaula, que
puede ser PVC, madera, aluminio, etc.). Las modulares son un grupo de jaulas
sostenidas a plataformas o muelles flotantes (Mercado y Siegert, 1995).

Componentes de una jaula flotante

. Infraestructura de soporte de la malla:
Puede construirse por diversos materiales que brindan mayor o menor seguridad,
tales como el hierro en ángulos o en varillas, previamente tratado con pintura
anticorrosiva, ángulos de aluminio, PVC y guadua (Bambusa sp.)

El tipo de material define además el tamaño de la jaulas: pueden ser construidas
en hierro en ángulos con dimensiones de 6 x 6 x 1 m (36 m3), en donde se han
presentado limitaciones para el desarrollo de los peces por deficiencia en la
distribución del oxígeno disuelto, presencia de zonas anóxicas, dando como
resultado menor homogenización de tallas para la comercialización.

Para el caso del uso de la guadua es conocida su resistencia en especial bajo
condiciones de cubierta, y su baja duración a la intemperie y en contacto con la


humedad. Por lo anterior es un material que no ofrece suficiente seguridad y se
presenta mayor riesgo de fuga de los ejemplares en cultivo.

El PVC es de mayor costo, cuestionado por sus componentes contaminantes de
las aguas y de uso restringido en algunos países. Es considerado como un
material de baja durabilidad a las condiciones ambientales, en especial a los rayos
ultravioleta; sin embargo, existen proyectos que le han dado más de cinco años de
uso sin inconveniente alguno.

. Infraestructura de flotación:
Con frecuencia se usan garrafas o canecas plásticas, de tapa pequeña,
proveniente de empresas que importan insumos químicos, por lo tanto se requiere
su adquisición previamente lavadas para evitar contaminación por agentes tóxicos
y de metales pesados y otros productos que puedan afectar a las personas, a la
fauna y a la calidad de las aguas. Los tubos de PVC también son utilizados como
soporte y flotación.

También se utiliza el icopor (espuma de poliuretano de alta densidad), en bloques
como soporte de las estructuras flotantes (casa de manejo, bodega de alimento,
pasarelas o muelles).

Los muelles o pasarelas son un elemento que facilita las labores de manejo, tales
como la alimentación, siembra de alevinos, cosecha, pero presenta el
inconveniente de interrumpir el flujo de agua y aumentar los costos. Por estas
razones es más frecuente el uso de canoas o pequeños botes para efectuar la
alimentación, con esta práctica se mejora ampliamente la supervivencia y la
homogeneidad de los peces en la cosecha.

. Encierro en malla:
La malla permite el encierro de los peces y su uso se efectúa de acuerdo con la
etapa de vida de los peces. Se recomienda lo siguiente:

ETAPA TAMAÑO DE OJO
Alevinaje ½ pulgada
Juveniles 1 pulgada
Engorde 1 y ½ pulgada

Con el fin de lograr una completa extensión de la malla, se recomienda la
instalación de un marco interno, para facilitar el flujo de agua. La profundidad
requerida es de un metro promedio (1 m), sobresaliendo del nivel del agua 30 cm.,
de acuerdo con la Resolución No. 461 (INPA, 1995)


Una vez establecido el cultivo se requiere efectuar limpiezas periódicas de las
mallas de acuerdo con el taponamiento de los ojos realizado por colonias de algas
verdes y sedimento.

Se recomienda extender sobre la jaula flotante una sección de malla sombra, para
evitar la influencia de los rayos ultravioleta y la acción de aves depredadoras.

. Alimentador
En jaulas flotantes de tamaño pequeño los intercambios de agua se dan a mayor
velocidad, por lo cual se necesita el uso del alimentador flotante, que puede
consistir en un anillo de malla antipájaro, o en una sección abierta de una caneca
plástica que se encuentre aproximadamente a 20 cm, tanto por encima como por
debajo del nivel del agua, estructura que se ubica en el centro de la jaula. Su
instalación evita la pérdida de alimento y facilita el acceso de los peces confinados
y debe cubrir un 20 % del área superficial de la jaula.

Los diseños usados preliminarmente y de los cuales algunos están aún en uso, se
tratan de jaulas denominadas grandes (6 m x 6 m x 1 m) de un volumen de 36 m3
y en algunos casos hasta de 72 m3, debido a su tamaño presentan resistencia al
flujo de agua y mayores posibilidades de volcamiento por acción de las corrientes
y el viento. Este tipo de jaula se ha ido sustituyendo por las denominadas Jaulas
de Bajo Volumen Alta Densidad (BVAD), de pequeña dimensión de 1 a 4 m3, las
cuales ofrecen menor resistencia al flujo de agua, obteniéndose mayores
recambios, favoreciendo la población de peces confinados (Schmitthou, 1993).

Con el fin de evitar mayores costos de infraestructura de soporte y flotación, es
importante ubicarlas en conjuntos de tres en línea o idear otras estrategias con las
cuales se mantengan las óptimas condiciones de flujo de agua y reduzcan los
costos de la infraestructura de flotación, además de qué brinde una presentación
más estética al proyecto.

Jaulón de estructura modular

Para incrementar la producción en cultivos superintensivos en las jaulas flotantes,
recientemente en el embalse de Betania se incorporó el jaulón de estructura
modular, proveniente de los cultivos de salmón en Chile. Por su alto costo de
instalación y exigentes condiciones medioambientales está destinado para la
producción industrial de la tilapia roja.

Esta jaula de gran volumen (314 m3) está constituida por la unión en forma circular
de 12 unidades de estructura metálica de 6 m x 0.8 m x 0.30 m cada una,
soportado cada uno por bloques de icopor de alta densidad, formando de igual
forma un pasadizo para las labores de pesca, alimentación y control.


Esta jaula está constituida por dos mallas, una externa para evitar la fuga de los
peces con un ojo de malla de 1” y una profundidad de 2.5 m, la cual se cuelga del
exterior de la estructura modular y otra interior con un ojo de malla de 1.5” y con
una profundidad de 2 m, soportada desde el interior de la misma estructura
modular, separada por una distancia entre 0.8 y 1 m de la malla exterior.

La unión entre las estructuras modulares se efectúa con varillas metálicas con
bujes que permiten cierta elasticidad de la estructura completa y de esta manera
resisten la acción de la corriente de agua y de los fuertes vientos. Por otra parte,
una extensión de la malla interior y de las varillas hacia arriba del pasadizo permite
la conformación de una baranda o pasamano, que otorga seguridad para las
labores.

El diámetro de la estructura modular, arreglada en forma circular es de 20 m, y en
su interior se ubican aireadores preferiblemente de paletas como elemento de
seguridad para mantener la concentración del oxígeno disuelto en el agua.

Los primeros resultados del proceso de adaptación de este sistema en el cultivo
de tilapia roja, con la siembra se alevinos de 30 g, se obtuvo un peso promedio de
400 g en 160 días de cultivo, con una densidad cercana a 250 ejemplares / m3, se
obtiene una biomasa cercana a 38 toneladas y con un consumo de 47 toneladas
de alimento balanceado.

Este sistema de cultivo reduce la ocupación de área, la fuga de peces por su doble
malla, proporciona mayor estabilidad y requiere ser ubicado en aguas profundas,
evitando la competencia del espacio litoral requerido para la pesca artesanal,
reduciendo los conflictos por la ocupación de ensenadas.

Calidad de semilla

Si bien el cultivo de tilapia ha sido exitoso en jaulas flotantes, se debe tener
cuidado en la calidad de semilla a utilizar. El producto debe tener una presentación
atractiva, como color llamativo y ausencia de manchas, excelente sabor y buena
conformación corporal con cabeza pequeña, pedúnculo caudal corto y dar buena
porción de filete.

La mayoría de los proyectos tienen su propia producción de alevinos, donde se
realiza selección por tamaño y color de los ejemplares que se van a sembrar.
Estos deben estar en un rango de peso entre 15 – 25 g, así se disminuye el riesgo
de mortalidad por enfermedades y se garantiza mayor resistencia a las
condiciones medioambientales. Es recomendable tener en cuenta que el plantel
de reproductores sea de buena procedencia, con alta heredabilidad de caracteres
deseables como animales sin manchas, color intenso en tonalidades de rojo y una
buena conformación corporal; de igual forma es necesario realizar renovación


periódica de los reproductores, bien sea por edad o por tamaño, para evitar
problemas de consanguinidad.

Fases de Manejo

Mediante el uso de la tecnología de cultivo denominada Bajo Volumen Alta
Densidad (BVAD) según Schmitthou (1993), la implementación de los cultivos en
jaulas flotantes permite reducir el área de los proyectos, evitando la subutilización
de infraestructura y la competencia con otros usos de los embalses, tales como la
pesca artesanal, el transporte fluvial, actividades náuticas y el óptimo
aprovechamiento de las condiciones de calidad del agua y en especial del oxígeno
disuelto (OD).

El cultivo bajo esta modalidad generalmente se presenta en las siguientes tres
fases de manejo:

ETAPA PESO INICIAL DENSIDAD DE
SIEMBRA
PESO FINAL
ALEVINAJE 15 a 20 g 400 peces/m3 150 g
JUVENIL 150 g 350 peces/m3 250 g
ENGORDE 250 g 300 peces/m3 400 g

Con el fin de homogenizar el tamaño de los animales de cada jaula se aconseja
clasificarlos por talla, sin embargo, no se deben realizar más de dos selecciones
por ciclo de cultivo debido a que los peces se estresan por la manipulación,
predisponiéndose a la disminución del peso y al aumento de la mortalidad por
enfermedades.

Los animales deben ser muestreados quincenalmente o por lo menos una vez al
mes y así establecer el peso promedio para ajustar la tasa de alimentación de
acuerdo a la biomasa y de acuerdo a lo establecido en la tabla de alimentación del
alimento balanceado que se esté utilizando. Un aspecto que se debe tener en
cuenta es que el medio ambiente en donde se tiene el cultivo es variable, por lo
tanto habrá días de muy baja temperatura o con turbidez excesiva, donde el
animal baja su apetito y no comerá toda la ración que se ha calculado, de acuerdo
con esto no se debe mecanizar a tal punto la rutina alimenticia pues se podrán
ocasionar pérdidas de alimento y por lo tanto disminución de la rentabilidad del
proyecto. Por esto es muy importante un manejo táctico de acuerdo a las
circunstancias.


El tiempo para alcanzar la talla comercial es variable dependiendo del tamaño de
siembra de los alevinos, el peso comercial deseado, tipo de alimento, etc.

En la producción final se obtienen diversos rangos de tallas, denominadas
cabezas, colas y población intermedia, productos tales como mojarrín, media, tres
cuartos, libra, especial, superespecial, que se comercializan por rangos de precio
según los pesos.

IMPACTO AMBIENTAL

Para la implementación de los cultivos intensivos de peces en jaulas flotantes se
requiere un amplio conocimiento de los ecosistemas estratégicos en donde van a
ser implementados, teniendo en cuenta los criterios de la convención RAMSAR
sobre la protección de humedales (Ramsar, 1999) y de las posibles repercusiones
sobre el medio ambiente y las características socioeconómicas regionales. De
cualquier manera la Corporación Autónoma Regional de la jurisdicción del
proyecto pesquero, otorgará o negará la Licencia Ambiental, según de cumplan o
no con los requerimientos de la Ley 99 de 1993 y sus Decretos reglamentarios.

Según la composición de las sales minerales y la cantidad de nutrientes
disueltos, se tienen aguas ricas en nutrientes denominadas (eutróficas), aguas
pobres (oligotróficas) y moderadas (mesotróficas) (Roldán, 1992). Considerándose
de mejor calidad para cultivos de peces en jaulas flotantes, las oligotróficas, que
se caracterizan por mayor transparencia del agua y además se asientan en menor
densidad las poblaciones planctónicas (Beverigde, 1982).

El fósforo, es el elemento más importante en el metabolismo biológico de los
peces y en comparación con los demás nutrientes es el menor abundante y el
factor más limitante de la productividad primaria (fotosíntesis) (Roldán, 1992). El
fósforo hace parte de las moléculas de ATP portador de energía y de los ácidos
nucleicos ADN y ARN. Su principal fuente proviene del arrastre de suelo por las
lluvias de acuerdo con la geomorfología del terreno y el aportado en grados
contaminantes por los centros urbanos, la industria y la agricultura.

En forma de fosfato es rápidamente asimilado por el fitoplancton, en el proceso
fotosintético y reciclado a través de los componentes del zooplancton a la columna
de agua.

El nitrógeno en forma de nitratos (NO3) es utilizable por las algas y las plantas
para la producción de proteínas y a través de los procesos metabólicos, los
organismos lo devuelven al agua en forma de heces, orina y por la
descomposición de la materia orgánica.


El equilibrio biológico generado principalmente por la actividad de los ciclos del
fósforo y del nitrógeno, en el cual se desarrollan las poblaciones animales,
vegetales y de bacterias, puede alterarse cuando por el exceso de sus
concentraciones acelera la degradación del ecosistema acuático, reduciendo
drásticamente la concentración de oxígeno disuelto (OD) en el agua.

El cultivo de peces en jaulas flotantes incrementa las concentraciones de fósforo y
de nitrógeno en el ecosistema acuático, por medio de los desechos de los
alimentos metabolizados (Schmitthou, 1993), hasta determinado límite beneficia a
la productividad natural, y de acuerdo con el nivel trófico del cuerpo de agua se
pueden convertir en contaminantes, causando severos impactos en el hábitat. Por
tanto, el límite para un ambiente oligotrófico es mayor que para un ambiente
eutrófico (Schmitou, 1993).

Un ambiente acuático en condiciones eutróficas produce una reducción de la
diversidad de las especies nativas, altera el equilibrio entre las especies y se
desestabilizan las relaciones físicas, químicas y biológicas del ecosistema
(Schmitou, 1993).

Ventajas y limitaciones del cultivo en jaulas

Ventajas

. Baja inversión de capital en infraestructura cuando se emplea tecnología
sencilla, debido a que se colocan en cuerpos de agua ya existentes y su
manejo no es complejo.
. Facilidad de movimiento y traslado de las estructuras flotantes.
. Intensificación del sistema productivo, es decir, aumento de las
densidades de siembra, mejora de las tasas de crecimiento y reducción del
período de cría de los peces si se optimiza la alimentación.
. Empleo de altas densidades de siembra dada la permanente circulación del
agua y además los excrementos de los peces y los productos tóxicos se
remueven fácilmente.
. Los peces no pueden reproducirse por la alta densidad a la que se
encuentran y por la ausencia de sustrato adecuado para tal fin.
. Utilización óptima de alimentos artificiales y aumento en la eficiencia de la
conversión alimenticia por el consumo permanente del alimento natural, en
el caso de las especies filtradoras.

. Facilidad en el control de competidores y predadores, permitiendo la
observación y monitoreo permanente de los peces.
. Utilización como alternativa de producción para las comunidades de
pescadores artesanales, en razón a la disminución del recurso en las
ciénagas y embalses que habitan, puesto que se intensifica la producción
de peces (ton/ha/año), en volúmenes pequeños y relativamente a bajo
costo.
Limitantes

. Solo pueden utilizarse en zonas protegidas donde la superficie del agua no
esté muy agitada, pero a su vez debe existir un adecuado intercambio de
agua en las jaulas, que garantice la eliminación de los metabolitos y
mantenga a un nivel aceptable el oxígeno disuelto (OD) dentro de la jaula.
. Exigencia rigurosa en la práctica de limpieza de las mallas ya que muchos
organismos como algas se fijan sobre ellas, para evitar su fácil obstrucción.
Algunos productores aplican productos a las mallas para evitar la fijación.
. Se deben emplear alimentos concentrados, peletizados y flotantes, cuyo
costo generalmente es más elevado.
. El tratamiento de las enfermedades y parásitos se hace más difícil, dada la
imposibilidad de efectuar tratamientos en un medio acuático en permanente
recambio.
. Por seguridad deben instalarse mallas protectoras perimetrales cuando la
presencia de predadores así lo exijan.
. Los riesgos de hurto se aumentan, si no se dispone de vigilancia
permanente.
. Pueden existir interferencias por parte de la población natural de peces,
debido a la penetración de éstos en las jaulas y a la competencia por
espacio y alimento.
. La malla debe tener un diámetro que impida la entrada permanente de otras
poblaciones de peces, en especial las Sardinas (Astianax spp.) que
compiten por el espacio y el alimento.
. El tiempo de vida útil de la infraestructura en contacto permanente con el
agua (flotación y malla) es menor; y de acuerdo con el manejo otorgado,
especialmente de la malla, puede ser de 3 a 5 años.

Tabla No.9 Tasa de alimentación de acuerdo con el peso esperado

Fase Alevinaje Juvenil Engorde

Tiempo (días) 0 30 60 90 120 150 180 210
Peso Esperado (g) 25 60 120 190 270 365 475 600
Incremento día (g) 1.2 2.0 2.3 2.7 3.2 3.7 4.2
% Alimentación 4.5% 4.0% 3.6% 3.0% 2.6% 2.2% 2.0%
Mortalidad % 5.0 3.0
Factor de Conversión Alimenticia = 2.0 : 1

Tabla No. 10 Valores de importancia para preservar los ambientes acuáticos.

Componente Unidad Kinkelin Ramírez y Viña (1998)

Et al. – 1985 ------------------------------------------


Tipo de aguas

Oxígeno mg / L >70 >80 80 - 10 <10 DBO mg / L <3 Fosfatos mg / L <0.3 5 - 30 Fósforo Total mg / L <0.027 0.05 >0.05
Amoniaco mg / L <0.025 0 - 0.3 0.3 –2 2 –15 Nitritos mg / L <0.01 0 - 1 1 - 5 5–50 Nitratos mg / L 0 - 0.5 0.5 - 5 5 –15 Alcalinidad Total mg / L >25
Transparencia m >1.6 1.6 --- 0.8 <0.8 Material en mg / L <75 suspensión Dureza mg / L >20
Densidad Cel / ml 10 --- 100 100-10000
Plancton


Piscicultura en corrales

Son encierros que se construyen en madera, metal o material sintético que se
clava en el fondo del lago y las redes se amarran de polo a polo para formar un
cercado. La red sobresale ampliamente del nivel del agua para evitar la fuga de
los peces. Las redes se anclan dentro del lago mediante pesas de manera que los
peces no puedan escaparse por debajo.

Los corrales generalmente se instalan en bahías poco profundas (1 – 2 m) al
abrigo de los vientos dominantes. El corral puede compararse con el área de un
estanque tradicional, pero dentro de un cuerpo de agua mucho más grande.

Sus ventajas son:

. No se requiere alimento extra ya que se dispone de abundante alimento
natural. En caso contrario se suministra alimento suplementario, utilizando
anillos para garantizar que este no salga del corral y flote siempre dentro de
su área.
. No es necesario fertilizar el estanque.
. Las labores de mantenimiento son mínimas.
. Requieren mínimas operaciones de manejo.
. Este sistema generalmente es de tipo semiintensivo
La principal desventaja del sistema:

. Altos costos de construcción ya que las redes deben ser de nylon o
plástico para que no se pudra y la madera utilizada debe inmunizarse o
utilizar hierro o material sintético, como se anotó.
Piscicultura en arrozales

Aprovechando los cultivos de arroz sobre áreas inundadas, su fertilización y
manejo, desde épocas muy antiguas se vienen realizando cultivos de peces en
dichos terrenos.

Se trata de cavar surcos profundos a todo lo largo de los diques del campo de
arroz, seguidamente se llenan de agua y se siembra. Luego de alcanzar una altura
de 5 cm el cultivo de arroz, se siembran peces que demanden poco oxígeno y que


no sean herbívoros. Luego de cosechar el arroz los peces se capturan con redes
de mano y se venden. Esta práctica es utilizada aún en algunos países orientales.

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Biología Tropical e Recursos Naturaisd, Programa de Biología de Agua Doce e
Pesca Interior. Convenio UA/INPA, Manaus, Brasil, 76 p.
WATTEM, 1994. Aireación y oxigenación. 173-205 p. In Timmons, M.B y T.M
Losordo (Ed.) Aquaculture water reuse system: Engineering desing and
management. ELSEVIER.
WEDLER, E. 1998.Introducción en la acuicultura con énfasis en los neotrópicos
Primera edición, Santa Marta. 388 p.


UNIDAD DIDACTICA 3

ESPECIES PISCÍCOLAS DE IMPORTANCIA ECONÓMICA EN
COLOMBIA

El cultivo de la Cachama Blanca
(Piaractus brachypomus)


F 36 - Reproductor de Cachama Blanca

Introducción

Pertenecientes a la familia Charasidae, poseemos en Colombia con dos especies
de peces nativas: Piaractus brachypomus (Cuvier, 1818) o cachama blanca y
Colossoma macropomum (Cuvier, 1818) o cachama negra o cherna. Originarias
de las cuencas de los ríos Orinoco y del Amazonas, se encuentran en aguas con
temperaturas de 23°C y 30°C; en ambiente natural son omnívoras, con tendencias
a frugívoras – herbívoras y buenas consumidoras de semillas (Arias y Vásquez
Torres, 1988).

Para su reproducción dependen de los estímulos externos y en la naturaleza
desovan sólo una vez por año en la época de lluvias. Las larvas y alevinos
aprovechan para su desarrollo la productividad natural que se encuentra en todas
las áreas recién inundadas; posteriormente los peces jóvenes se encuentran en


las corrientes secundarias y los adultos, con tres y cuatro años de edad, en los
grandes ríos especialmente en las épocas de “subienda”, en la cual migran
masivamente para realizar la reproducción. Luego de 25 años de haberse
iniciado en Colombia la investigación en reproducción y cultivo de la cachama
(Merino, 1983), en el año 2000 ésta especie se cultiva en prácticamente todos los
departamentos del país, excepto en San Andrés (González, 2000), con un
volumen de producción superior a las 12000 toneladas por año, siendo la segunda
especie cultivada al alcanzar el 31.3 % de la producción nacional dulceacuícola
(3942,4 Ton) y el 26.3% de la producción nacional total acuícola (46902.7 Ton)
(INPA, 1999).

Su gran difusión se basa en la poca exigencia de la especie en cuanto a la
aplicación de tecnología, la facilidad de cultivo, resistencia a bajas
concentraciones de oxígeno, a enfermedades y parásitos, simplicidad de manejo,
lo cual permite que los piscicultores la cultiven, ya sea para subsistencia, para
comercio local o para mercadeo en volumen.

Características de las especies

Descripción de las especies

REGION
ANATOMICA/
EDAD
CACHAMA BLANCA CACHAMA NEGRA
Dorso y flancos Coloración grisácea con
reflejos azulosos
Coloración oscura
Abdomen blanquecino con ligeras
manchas anaranjadas
Blanquecino con algunas
manchas irregulares en el
vientre y en la aleta caudal
Hueso opercular
y cabeza
Más angostos Más anchos
Aleta Adiposa Carnosa Radiada
Juveniles Suelen tener un color más
claro con tonalidades rojo
intenso en la parte anterior
del abdomen y en las aletas
anal y caudal.
Coloración oscura, no tan
intensa como en el adulto y una
tenue coloración naranja en la
parte anterior del abdomen.
Capacidad de
filtración
Baja debida al poco número
de branquiespinas (37 en el
primer arco branquial).
Mayor, debido a una cantidad
superior de branquiespinas en
el primer arco branquial (84 y
107).
Longitud máxima 85 cm. 90 cm.
Peso máximo 20 Kg. 30 Kg o más.


F 37-Reproductor de Cachama negra

Reproducción

Hacia la década de los 80, la principal limitante en la cachamicultura era la poca
disponibilidad de semilla para su explotación, esta sólo se lograba durante dos o
tres meses al año y en cantidades reducidas se conseguían estos alevinos
(Merino, 1984). El desarrollo de la producción de alevinos como una industria
especializada dentro del sector conllevó a alcanzar una tecnología que
actualmente permite disponer de millones de alevinos durante todos los meses
del año.

Los alevinos se producen principalmente en el área de los Llanos Orientales de
Colombia, en la zona del Pie de Monte Llanero, municipios de Villavicencio,
Cumaral, Restrepo, Acacías, Guamal y Castilla La Nueva, en el departamento del
Meta; pero también se producen en Montería (Departamento de Córdoba), y en
Florencia (Departamento del Caquetá) y en diferentes estaciones de los
departamentos de Antioquia, Huila, Santander, Valle y Casanare, en cantidades
menores y por temporadas. Por preferencia de los consumidores y aceptación del
mercado a nivel nacional se ha desarrollado más el trabajo con la cachama blanca
(Piaractus brachypomus), mientras que la cherna (Colossoma macropomum) se
consume puntualmente en regiones como Córdoba, Sucre, Santander, Amazonas
y Putumayo.

Manejo de los reproductores en cautiverio

En un comienzo, los reproductores se obtenían principalmente del medio natural,
pero ahora la mayoría de las fincas productoras de alevinos levantan sus propios
pies de cría.


Para llegar a ser ejemplares adultos aptos para reproducción, los machos de las
cachamas blancas tardan 3 años y las hembras 4 años, con pesos de 3 y 4 kilos
en adelante (Carolsfeld, 1989).

Normalmente los ejemplares se mantienen en estanques de tierra a densidades
bajas (Valencia y Puentes, 1989), 7 a 12.5 m2/Kg de reproductor, alimentados con
concentrado comercial con contenido proteínico entre 25 % y 32 %. La tasa de
alimentación varía entre el 1.5 % y el 2.5 % de la biomasa/día.

El manejo de padrotes dentro de una Estación se realiza por lotes (Pessoa y
Núñez, 1988), los cuales se deben agrupar de acuerdo con el estado de
maduración: desovados, en maduración y maduros; además de este manejo
operacional se deben hacer revisiones periódicas del estado de sanidad de los
animales, para prevenir infestaciones graves por parásitos, y cuando sea
necesario realizar los tratamientos y traslados adecuados.

Las principales enfermedades reportadas en planteles de reproductores, son
parásitos típicos de la fauna acuática tales como el Mixosporídeo (Henneguya
spp), cuya presencia ha sido confirmada en branquias y riñón pero aún falta definir
cómo afectan la capacidad reproductiva de la Cachama además de su control y
erradicación (Eslava, P. R.); también se han reportado otros protozoarios parásitos
como Costia, Trichodina, Piscinoodinium, tremátodos como actylogyrus, gusanos
intestinales (Nemátoda), cuyo control es relativamente sencillo y ya conocido; otro
parásito, legado de la importación de carpas al país, especialmente de Hungría, es
la presencia del crustáceo conocido como gusano ancla Lernea spp, pero los
ataques de este parásito en las cachamas no han sido reportados con el
dramatismo ni la magnitud que tienen en Europa; sin embargo, en los padrotes de
cachama, la Lernea afecta negativamente su capacidad reproductiva por lo que
es conveniente su control mediante método manual (desprendimiento del
parásito), previniendo una infestación fuerte, especialmente en los arcos
branquiales.

Selección de reproductores

Los lotes de reproductores deben ser monitoreados para establecer el estado de
madurez gonadal tanto de hembras como de machos.

Las hembras se revisan por sondeo (canulación o cateterización) o por extracción
lateral con una jeringa se obtiene una muestra de huevos (Harvey y Hoar, 1979),
con posterior aclaración con líquido de Serra. Los machos se chequean por
presión abdominal.


F 38 y 39- Pesca de reproductores en el estanque


F 40 y 41 - Sexaje y selección de los reproductores


F 42 y 43 - Comparación macho hembra


Las hembras se seleccionan para la inducción hormonal, de acuerdo a las
siguientes características principales:

. abdomen abultado; y,
. papila genital protuberante y enrojecida;
y los machos obtención de semen mediante un leve masaje abdominal.

En los huevos se determina aspecto general, color, tamaño, posición y forma del
núcleo. En los machos el aspecto del semen, densidad y en ocasiones conteo y
motilidad; de esta forma se conoce el grado de maduración de los productos
gonadales. En esta etapa algunos productores utilizan dosis bajas de 0.5 mg/Kg
de Extracto Pituitario de Carpa (EPC) colocado periódicamente, para estimular la
gametogénesis y llevar a los animales a un estado más avanzado de maduración.

Inducción hormonal - Incubación

La técnica de inducción hormonal se ha estandarizado con la utilización del EPC,
el cual se encuentra en presentaciones como pulverizada, liofilizada o entera y se
puede adquirir en empresas especializadas, existiendo varias marcas disponibles
en el mercado.

El material homoplástico, ósea la hipófisis cruda de la misma especie (Vinatea,
1989), dejó de usarse por ser de complicada consecución y manejo (Juárez,
1989). Otros materiales como la hormona liberadora de la hormona luteinizante
Lh-Rh (Méndez y Rodríguez, 1989) y la gonadotropina coriónica humana GCH
(Valencia et al., 1985) son usados ocasionalmente; una tercera categoría de
materiales como son los antiestrógenos, dopaminas, gonadotropinas de
mamíferos, esteroides, progestinas y corticoesteroides se mantienen dentro de
niveles aún experimentales.

El protocolo básico con EPC consiste en una dosis inicial de 0.5 mg/Kg a la hora 0
y una dosis final de 5 mg/Kg a las 8 – 12 horas siguientes. Se pueden aplicar una

o más dosis previas de 0.25 mg/Kg (Da Silva, 1989 y González, 1989),
dependiendo del estado de maduración de los huevos observados en el proceso
de selección mediante aclaración con líquido de Serra.
El desove ocurre entre 8 – 9 horas (230 – 240 horas-grado) después de la última
dosis; para cachama blanca se ha generalizado el desove semi-natural, es decir,
se realiza en piletas (normalmente circulares) en donde la hembra y el macho se
cortejan y aparean solos; si se presenta taponamiento del oviducto en la hembra o
falta de estímulo en el macho para realizar el cortejo se recomienda realizar como
medida de emergencia el desove en seco, por extrusión.


Se tienen dos formas de manejar los huevos en este momento:

. La primera utilizando colectores (trampas) de los cuales se sacan los
huevos con tamices, se mide la cantidad por volumetría y se reparten
homogéneamente en las incubadoras de tipo cónica de flujo vertical.
. La segunda forma de manejo es conectar la salida de la pileta directamente
a las incubadoras y los huevos se reparten al cálculo, valorando
posteriormente la cantidad de huevos por conteo de alícuotas de cada
incubadora. Esta segunda forma tiene la ventaja que no hay manipulación
ni posibilidad de maltrato de los huevos.
Para la incubación se utilizan incubadoras tipo cónicas de flujo vertical
(Woynarovich, 1986) de diferentes tamaños: desde 25 hasta 800 litros de
capacidad, prefiriéndose las de fibra de vidrio. Dependiendo del flujo de agua, en
las incubadoras se pueden tener cargas superiores a 2500 huevos por litro de
agua, pero el promedio se encuentra alrededor de 1200-1500.

La duración de una incubación normal, dependiendo de la temperatura, es de 13 a
18 horas, al cabo de las cuales eclosionan larvas de aproximadamente 5 mm de
longitud, que completan su desarrollo (aletas, pigmentación, tracto digestivo,
vejiga gaseosa) en los próximos 4 a 6 días.

Larvicultura


F 44 y 45 - Incubadoras Artificiales

La permanencia de las larvas en la incubadora varía de acuerdo con la técnica y el
manejo particular de los productores en cada granja; algunos siembran en


estanques de tierra el primero o segundo día de nacidas; otros siembran en
estanques el tercer día y otros al cuarto o quinto día.

También hay quienes trasladan las larvas a piletas y allí las mantienen para
alimentarlas en los días 5, 6 y 7, luego las siembran en los estanques. En piletas,
la alimentación de las larvas se hace generalmente con Artemia salina o plancton.

La preparación de estanques se inicia con una limpieza, seguida de un
encalamiento con cal dolomita (50-100 g/m2) y abonamiento con material orgánico
en similar proporción (50-100 g/m2); el abono más usado, por su fácil consecución,
es la gallinaza, pero también se puede usar estiércol de vacunos o de porcinos el
cual puede ser fresco, fermentado o producto de biodigestores (Díaz y López,
1993). El uso de abonos inorgánicos es restringido por manejo, costo y eficiencia;
se puede emplear DAP, triple 15 ó urea.

La labor durante los días posteriores a la siembra consiste en mantener un
excelente nivel de alimento planctónico, ya que con buen alimento los alevinos
alcanzan talla de despacho (2cm) a los 15 días de nacidos.

El principal predador de larvas de cachama es la larva de libélula (odonata); por tal
razón debe supervisarse bien el estanque antes de la siembra y en caso de
detectarse se recomienda aplicar un insecticida órganofosforado, preferiblemente
el tiguvón a razón de 0.12 ppm entre 3 y 5 días antes de la siembra y abonar
nuevamente el estanque.

Enfermedades

En la etapa de incubación se ha observado, sobre el corión de los huevos, el
protozoo Epistylis; también el hongo Saprolegnia y naturalmente bacteriosis; en la
etapa larval pueden ser atacados por diferentes bacterias (Aeromonas y
Pseudomonas) y hongos (Saprolegnia). Tratamientos suaves y prolongados con
verde de malaquita (0.05 – 0.1 ppm) son efectivos, pero difíciles de aplicar en
sistemas abiertos, aunque este producto está seriamente cuestionado por sus
efectos sobre la salud pública.

En los alevinos se presentan bacteriosis (Aeromonas, Pseudomonas,
Myxobacterias), ataques de protozoos como Costia, Ichthyophthirius,
Trichod¬gual¬¬aiscinoodinium ( Rey, 1995); ocasionalmente se encuentra
Hexamita en el sistema digestivo, tremátodos monogenésicos como Dactylogyrus
y Gyrodactkylus y tremátodos digenésicos (por lo menos de dos especies) se
presentan por temporadas.

Para el control de los ectoparásitos se ha generalizado el uso del verde
d¬gual¬¬aita (0.1 ppm) y el sulfato de cobre (0.5 ppm.); para la Hexamita se
utiliza el metronidazol, incorporado al alimento concentrado; para controlar los


tremátodos monogenésicos se utilizan baños con formol (25 ppm); los tremátodos
digenésicos no se pueden eliminar directamente y por lo tanto se recomienda
interrumpir su ciclo de vida eliminado del estanque los vectores (caracoles/aves);
en ocasiones los productores sacrifican lotes enteros infectados con esas
metacercarias para evitar su difusión.

Engorde

Dadas las ventajas en el cultivo de cachama como son su rusticidad, resistente a
las enfermedades y tolerancia a bajos niveles de oxígeno; adicionalmente
presenta buen crecimiento y se obtienen tallas uniformes, buena conversión
alimenticia y crecimiento; no se reproduce naturalmente en cautiverio, su manejo
es sencillo y tiene buena aceptación en el mercado.

Las características físicas y químicas básicas para el cultivo de cachama son:
temperatura del agua entre 23 y 30 oC; p.H de 5.5 a 8; dureza del agua desde 25
mg/l; oxígeno disuelto mínimo 3 mg/l (Díaz y López, 1993).

Crecimiento

Los pesos comerciales en la cachama varían desde los 350 g hasta los 500 g; es
decir, un máximo periodo de cultivo de seis meses incluyendo la preparación y
limpieza de los estanques, sembrando los alevinos de un tamaño aproximado de 3
cm.

En cultivos con densidades bajas (2 peces/m2), excelentes condiciones medio-
ambientales y de manejo, la tasa de crecimiento se incrementa, registrándose
lotes con promedio de 480 gramos (eviscerado) en 130 días.

Para el monitoreo de los peces bajo cultivo, se realizan muestreos con una red
sin nudos, del 3 al 10% de la población; a intervalos de 15 a 20 días; de esta
forma se calcula la tasa de crecimiento, la tasa de alimentación y se verifica el
estado de salud del lote, permitiendo de esta manera hacer los ajustes o tomar las
medidas correctivas a tiempo.

Alimentación

Se recomienda utilizar el alimento concentrado extrudizado; pues, se han obtenido
mejores resultados con respecto al peletizado. El suministro de este alimento ha
reportado mejoras en la conversión alimenticia, disminución en los residuos
nitrogenados y, en general, mejor aprovechamiento.


Tabla No. 11 Porcentaje promedio de proteína requerido en la dieta de acuerdo al peso

PESO PROMEDIO PORCENTAJE DE PROTEINA EN LA
DIETA
Hasta los 20-25 g 40-45%
Hasta los 70-75 g 35-38%
Hasta los 190-200 g 28-32
Hasta finalizar el cultivo 24%

La frecuencia y número de raciones alimenticias a suministrar más recomendadas
son tres veces por día durante el primer mes, dos veces por día durante el
segundo y en adelante se suministra en una o dos dosis por día. Con este régimen
en el consumo de alimento concentrado se ha obtenido una conversión
alimenticia total de 1.59: 1 para peces enteros (sin eviscerar).

Procesamiento

El proceso básico consta de selección, sacrificio, eviscerado y lavado; el empaque
se hace a granel y, si la distancia lo requiere, se utiliza hielo para conservar baja la
temperatura.

Tabla No.12 Paralelo comparativo entre Cachama Blanca y Cachama Negra
(Bello y Rivas, 1992)

Aspecto Cachama Blanca Cachama Negra
Pérdida de peso en
comercialización
.. Cabeza: 12.5%
. Branquias, cola y
aletas: 9.6%
.. Cabeza: 23.69%
.. Branquias, cola y
aletas: 9.6%
. Piel y huesos:
25.32%
.. Vísceras: 10.6%
Rendimiento en canal 43.2% 37.91%
Análisis bromatológico: .. Proteínas: 16.6%
.. Grasas: 3.3%
. Cenizas : 2 %
.. Proteínas: 17.77%
.. Grasas: 2.95%
Cenizas : 1.1 %

Manejo para la prevención de enfermedades en el cultivo

Los cultivos de cachama tienen como característica común una muy baja
incidencia de enfermedades y parásitos; la sobrevivencia promedio está por
encimas del 96% y no son raros los casos del 100%.


Dentro de los factores predisponentes para la presentación de enfermedades, se
puede afirmar que el mal manejo del cultivo es, por regla general, el causante de
la presencia de anomalías; aspectos como la limpieza de los estanque,
procedimientos adecuados para la siembra de alevinos y recambio de aguas son
fundamentales para el buen desarrollo de los peces.

Deben atenderse con cautela los siguientes aspectos:

. La correcta siembra de los alevinos en el estanque.
. Correcta limpieza de los estanques; los estanques sucios o con exceso de
materia orgánica, tienen que ver con la presencia de Dactylogyrus o de
Piscinoodinium, infestando peces de 100 a 300 gramos y causando
mortalidades; este mismo caso es válido para bacterias, cuya presencias en
el agua es normal e inocua, pero en condiciones adversas al pez (alta carga
de materia orgánica, bajas de oxígeno) aumentan su cantidad,
incrementando su patogenicidad y ocasionando mortalidades. La alta carga
de materia orgánica también provoca caídas de oxígeno de carácter grave.
. Encalar el estanque con cal viva antes de la siembra de alevinos, en una
proporción de 100-150 g/m2 para realizar la desinfección; se debe aplicar
con el estanque seco, esparcida por toda el área y luego proceder a llenar
lentamente el estanque (3 – 5 días). El estanque lleno puede ser usado en
7 días sin peligro para los nuevos peces.
. Atender las bajas de oxígeno en el agua del cultivo, especialmente en la
temporada de verano, en la cual las temperaturas se elevan disminuyendo
el oxígeno disuelto, hay producción excesiva de fitoplancton por la alta
radiación solar y que a su vez consume oxígeno en las horas de la noche,
afectándose el Oxígeno Disuelto. Se puede generalizar que una caída de
oxígeno temporal y mediana, retrasa el crecimiento en cinco días; una
caída de oxígeno temporal fuerte, lo retrasa 20 días; si la deficiencia es
crónica los peces dejan de alimentarse y de crecer, mientras persista el
problema.
Tipos de cultivo

Cultivos pequeños

En Colombia, la mayoría de los cultivos de cachama son realizados por
piscicultores a pequeña escala.


Los estanques son en tierra, con tamaños entre 100 m2 y 1000 m2, con entrada y
salida de agua para recambio permanente; los productores utilizan alimento
concentrado comercial, y la mayoría de veces abonan con gallinaza, porquinaza y
complementan la alimentación con productos y subproductos de la misma finca
como frutas (papaya, guayaba, aguacate, plátano, mortiño), maíz cocinado, sorgo,
ramio, bore, yuca rayada y palmiste.

Es común que el cultivo se realice en una sola etapa, es decir, los alevinos son
sembrados en un estanque y allí son mantenidos durante todo el tiempo de cultivo.

La tendencia general es a usar una densidad permanente de 4 animales/m2 y que
llevan el engorde a cinco y seis meses. Este tipo de cultivo se realiza desde las
tierras bajas y cálidas hasta alturas de 1300 msnm en donde, para lograr los 500
gramos de peso final, la duración se extiende a veces a 8 meses por influencias
de la baja temperatura.

Algunos pequeños piscicultores realizan policultivo con tilapia y/o con bocachico
y/o carpas rojas. En el policultivo hay que mantener una relación de dominancia de
una de las especies, la cachama debe sembrarse en proporción numérica de 80%
(o mayor) y la tilapia roja con un 20% (o menor); el bocachico y la carpa se usan
como acompañantes a muy baja densidad (un pez por 20 ó más metros
cuadrados).

La mayor ventaja de estos cultivos pequeños es su gran rentabilidad. La
infraestructura necesaria no es grande; no se requiere de una gran cantidad de
agua para el recambio diario y la producción medida en Toneladas/Hectárea/año,
es excelente (40 a 50). Por vincular directamente la mano de obra familiar, los
costos se reducen considerablemente. Normalmente el mercadeo se efectúa en la
misma finca y en la zona (en la vereda). Estas ventajas comparativas con otros
sistemas productivos, han fomentado el desarrollo de la cachamicultura a pequeña
escala en todo el país, hasta donde las condiciones medio ambientales lo
permiten.

Las principales desventajas de estos pequeños cultivos son que los costos por
alimentación con alimento concentrado son proporcionalmente mayores, la oferta
de producto es muy estacional lo que afecta el mercado y que los cultivadores
tienen muy baja habilidad comercial.

Cultivos medianos

Corresponde a aquellos piscicultores que poseen media o más hectáreas de
espejo de agua y producciones anuales superiores a 10 toneladas y que en
términos generales tienen las siguientes características comunes:


. Estanques en tierra de 1000 a 3000 m2, (excepcionalmente hay de 5000 a
20000 m2) con recambio permanente de agua;
. Cuentan con estanques de pre-engorde, realizando el cultivo en dos
etapas: la primera o etapa de pre-engorde, con densidades de 10-15 peces
por m2 y la segunda o etapa de engorde, con densidades de 2-3 animales
2

por m.

. La alimentación es exclusivamente con alimento balanceado comercial y
tanto la producción de peces como la oferta de pescado es continua
(semanal, quincenal o mensual).
. Presentan excelente rentabilidad, pero menor que la de los cultivos
pequeños, pues necesitan de apoyos administrativos, financieros y
logísticos, que disminuyen las ganancias.
. Normalmente comercializan sus productos a nivel regional o
departamental. A ciertos niveles la capacidad de negociación empieza a
limitarse y quedan a merced de los intermediarios, ya sea por falta de
medios de transporte adecuados, de infraestructura tecnológica, redes de
frío, etc.
Cultivos no tradicionales

Con este nombre se han considerado los cultivos a muy baja densidad y los
cultivos intensivos, ambas son formas eficientes, rentables y aplicables a nuestro
medio, pero su diseño y aplicación está de acuerdo con la zona del país, la
topografía y desde luego con la disponibilidad de recursos.

. Cultivos extensivos: basados en la productividad primaria del estanque
mediante abonamiento (animal o vegetal), así como una alimentación con
base en productos o subproductos de la misma finca, utilizando bajas
densidades de siembra y cultivo (menores a 1 pez/m2).
Desde hace años han sido realizados diferentes estudios con productos vegetales
básicos, como la alimentación con maíz, Zea mays, estudiada por Da Silva et al.
(1984), con densidades de 0.5 peces/m2, suministrado al 3% de biomasa/día, en la
que la cachama presentó conversiones de 3.4: 1 y producciones de 4.234
Kg/ha/año. También se utiliza el maíz cocinado, mejorando su digestibilidad y
rendimiento; de igual forma el suministro de hojas de bore (Alocassia sp). De igual
forma se demostró que la alimentación de cachama con torta de la palma
Orbignya martiana, suministrada al 3% de biomasa/día, presentó conversiones de

4.9: 1 y producciones de 3371 Kg/ha/año.

También se han realizado estudios con otros productos como son el helecho
acuático Azolla filiculoides (Sanabria, 1994), la torta de soya Glycine max (López,
1994), harina de arroz y torta de palmiste (Quintero y Cortés, 1991), harina de
maíz, sorgo y soya (Torres y Uribe, 1995), en los que se demuestra la gran
variedad de productos y subproductos utilizables en la alimentación de cachamas.

. Cultivos intensivos: se realiza a altas densidades (6 y 15 peces/m2) y a
muy altas densidades (superiores a 20 peces/m2 y 250 – 300 m3). Se puede
aplicar en lagunas, ciénagas y embalses, desarrollado en jaulas, jaulones
o en estanques donde se realice un alto recambio de aguas.
Investigaciones básicas como las de Saint-Paúl (1983) para Colossoma
macropomum, quien registra que el consumo de oxígeno por hora se incrementa
linealmente con respecto al peso del pez; así mismo, midió que el metabolismo del
pez, y por lo tanto el consumo de oxígeno, aumenta con la temperatura y
determinó las ecuaciones para este consumo, como son:

A 25 oC Consumo de oxígeno (mg O2/hora) = 1.01 x Peso 0.64

A 30 oC Consumo de oxígeno (mg O2/hora) = 1.55 x Peso 0.64

Urán et al. (1994a) determinaron el mismo parámetro para Piaractus
brachypomus:

A 22.5 oC Consumo de oxígeno (mg O 2/hora) = 461.3 x Peso 0.258

Urán et al. (1994b), en ensayos realizados con Piaractus brachypomus en
tanques, con 50 peces/m3, un recambio permanente del 100 % por hora, a
temperaturas de 25.3 °C, y alimento del 43% de proteína, produjeron resultados
muy significativos como son un crecimiento de 1.86 g/día, con conversión
alimenticia de 1.57: 1, con carga final de 15.7 Kg/m3.

Estos y otros estudios (Mora y Salaya, 1994 y Pérez y Martino, 1989) indican que
para altas densidades es más resistente al confinamiento la cachama blanca
(Piaractus brachypomus).

Comercialización

Los consumidores prefieren el pescado con un tamaño entre 250 y 500 gramos; la
mayor comercialización se realiza con el pescado eviscerado, fresco, empacado a
granel.

Los pequeños productores venden en la misma finca (inclusive con vísceras)
algunos lo hacen directamente al consumidor, permitiendo mayores márgenes de
utilidad.


Los medianos productores venden el producto a minoristas en las plazas de
mercado, e inclusive a intermediarios que lo transportan fuera de la región; en este
caso se requiere de congelación previa.

En los últimos años se ha abierto un buen mercado para ejemplares entre 200 a
300 gramos, que son utilizados en restaurantes populares, casinos de empresas y
también comprados por buena cantidad de amas de casa en plazas de mercado.

Actualmente se está realizando un procesamiento que consiste en la
descamación de los peces y un mejoramiento en la presentación, colocándolo en
bandejas de icopor con protección de película plástica. De esta forma se ha
iniciado un comercio especialmente en cadenas de supermercados.

La evolución histórica de la producción de cachama en Colombia ha tenido un
gran desarrollo entre los peces de cultivo de aguas dulces, pues pasó de cero
toneladas en 1982 a 700 toneladas en 1988 y en 1998 alcanzó la cifra de 12335
toneladas (INPA, 1999).

Tabla No. 13 Datos de crecimiento y peso y su relación con la tasa alimenticia diaria, en
un cultivo típico de cachama

Día de cultivo
Peso promedio de los
peces (g)
Tasa alimenticia diaria
(%)
1 2 10.0
7 7 8.93
14 14 7.68
21 20 6.67
28 26 5.50
35 33 4.87
42 40 4.63
49 48 4.40
56 55 4.17
63 67 3.95
70 91 3.79
77 115 3.63
84 139 3.46
91 163 3.30
98 190 3.14
105 218 2.97
112 246 2.81
119 274 2.65
126 305 2.48


133 337 2.32
140 368 2.16
147 400 1.99
154 433 1.88
161 468 1.83
168 503 1.79
175 538 1.74

Tabla No.14 Contenido Proteínico del alimento de acuerdo con el tiempo de cultivo.

Día de Cultivo Contenido Proteínico cercano a (%)
1 a 20 45
21 a 63 38
64 a 98 32
98 en adelante 24

Tabla 15 Pérdidas por evisceración según el peso de sacrificio.

Peso del Pescado ( g ) Pérdida por evisceración ( % )
200 13
250 12
300 – 375 10
380 – 450 9
475 – 500 8
600 7

Tabla 16 Estructura de costos para un pequeño productor.

DETALLE PORCENTAJE ( % )
Personal 0.00
Alevinos 8.24
Alimento Peces 78.91
Drogas 0–66
Abonos 3.95
Fletes insumos 1.10
Congelación 0.00
Varios - Imprevistos 3.84


Subtotal 96.70
Administración 0.00
Otros 0.00
Subtotal 0.00
Acarreo producto 3.30
Comunicaciones 0.00
Varios 0.00
Subtotal 3.30
TOTAL EGRESOS 100.0

EL CULTIVO DE LA TRUCHA ARCOIRIS (Onchorhync–us mykiss)
Introducción


F 46 - Ejemplar adulto de trucha Arco Iris

Características y descripción de la especie

La trucha arcoiris, (Onchorhynchus mykiss Richardson, 1836) es un salmónido de
cuerpo alargado, fusiforme y cabeza relativamente pequeña que termina en una
boca grande puntiaguda, hendida hacia el nivel de los ojos y con una fila de
dientes muy firmes en cada una de las mandíbulas que le permite aprisionar las
presas capturadas.


Hacía la mitad del cuerpo se encuentra una primera aleta dorsal formada
únicamente por radios blandos. Posteriormente a ésta aparece una pequeña
aleta, de función desconocida y carácter adiposo. Opuesta a ésta y ventralmente
se halla la aleta anal. Estas aletas tienen función de dirección actuando como
timón en el desplazamiento.

Las aletas pares son pectorales, ubicadas en la parte más anterior con una
función estabilizadora y las pélvicas o ventrales, que actúan como remos y
ubicadas en la sección media posterior del pez. El cuerpo remata posteriormente
en una aleta caudal homocerca de función propulsora.

El nombre genérico Oncorhynchus significa nariz ganchuda, característica que se
acentúa más en los machos en la época de reproducción, en los que se desarrolla
en la mandíbula inferior el abultamiento o gancho (prognatismo).

El nombre común de arcoiris está dado por la presencia de numerosos puntos
negros y una banda iridiscente en los flancos del pez. Esta coloración cambia
ligeramente en las épocas de madurez, siendo notorio el oscurecimiento que se
presenta en los machos.

Clasificación Taxonómica

Phylum : Cordata
Subphylum : Vertebrata
Clase : Osteichthyes
Subclase : Actinopterygii
Superorden
Orden
:
:
Teleosteica
Clupeiformes
Familia : Salmonidae
Subfamilia : Salmoninae
Género : Oncorhynchus
Especie : Onchorhynchus mykiss
Nombre común : Trucha Arcoiris

Producción de semilla

Los cultivadores tienen las opciones de abastecimiento de ovas y alevinos como
semilla nacional o importada. La nacional es aquella que se produce en el país a
partir de reproductores mantenidos en cautiverio, sobre los cuales se adelantan
procedimientos de manejo, selección y desove, además de fertilización e
incubación del material obtenido.


La mayoría de la producción de carne de trucha en el país depende de ovas
importadas. Su aceptación radica principalmente en la garantía de poblaciones
cercanas al 100% de hembras y por la certificación de ausencia de enfermedades.

Infraestructura

. Estanques para reproductores.
Pueden ser unidades con las mismas características de construcción empleadas
para el engorde de truchas. Las densidades de mantenimiento de reproductores
son inferiores a los 10 Kg/m3, donde se mantienen separadas las hembras de los
machos; si se tiene espacio disponible las hembras deben distribuirse de acuerdo
a su estado de madurez sexual.

. Sala de incubación.
Es un recinto cerrado protegido de la luz solar, cuyo tamaño depende de la
cantidad de semilla a producir, dentro de este se encuentran las incubadoras y los
canales para recibir las ovas embrionarias y/o larvas recién eclosionadas. Se
recomienda que el agua a utilizar sea previamente filtrada.

. Filtro.
Se utiliza el filtro de grava a presión, con el fin de retener partículas en suspensión
presentes en el agua, las cuales pueden causar grandes bajas en los lotes, puesto
que los sólidos se depositan sobre las ovas ocasionando la muerte a los
embriones por asfixia y favorecen además el desarrollo de hongos.

. Incubadoras.
Entre los sistemas de incubación hay dos tipos, los de flujo horizontal y los de flujo
vertical. El más utilizado corresponde a la incubadora vertical de bandejas
superpuestas (de 4 hasta 16) y las canaletas horizontales en las que las ovas se
ubican sobre canastillas. El uso de botellas de incubación también es común
aunque requiere garantizar un flujo estable de agua. Variaciones bruscas causan
golpes a las ovas en los primeros estadios de desarrollo (ova verde), lo puede
generar importantes pérdidas. En la etapa de ova embrionaria el riesgo se reduce,
pues en este estado de desarrollo la resistencia al manejo es superior.

Las de flujo horizontal básicamente son canales en donde van instalados
bastidores en madera o plástico Con varillas en aluminio, vidrio, plástico o fibra de
3 a 5 mm. de diámetro con una separación entre varillas de 3 mm, que van a
sostener las ovas. Los bastidores son colocados superficialmente (5 a 10 cm de
profundidad), de tal forma que una película de agua los bañe continuamente. El


agua penetra por uno de los extremos fluyendo a lo largo del canal y se evacua
por el lado opuesto. El caudal debe encontrarse entre 10 y 20 litros por minuto.

Las principales ventajas de este sistema están por su facilidad de manejo y
reducido costo. Las dimensiones de estos canales pueden encontrarse dentro de
los siguientes rangos:

Longitud: 2.0 a 5.0 m.
Ancho: 0.3 a 0.8 m.
Profundidad : 0.2 a 0.4 m.

Deben colocarse a una altura del suelo de 1.0 a 1.2 m para facilitar las labores de
manejo.

En el sistema de flujo vertical, existen dos tipos: las de flujo vertical ascendente y
las de flujo vertical descendente.

Las primeras se conocen también como botellas de incubación en donde el agua
penetra por la parte inferior manteniendo las ovas en suspensión y en constante
movimiento. Las segundas constan de un soporte en aluminio que sostiene de 4 a
8 bandejas en fibra superpuestas. En este sistema el agua penetra por la parte
superior pasando de bastidor a bastidor. Las ventajas de este sistema son: menor
espacio, menor caudal e incuban mayor cantidad de huevos.

. Canales de reabsorción de vesícula vitelina y alevinaje.
La etapa de reabsorción del saco vitelino se puede considerar como una
continuación de la incubación, por lo menos en los primeros días siguientes a la
eclosión. A las larvas recién nacidas se les debe mantener igualmente en recintos
protegidos de la luz. En las incubadoras verticales el diseño de las bandejas
permite que las larvas puedan permanecer allí por algunos días después de haber
nacido. Se debe tener precaución con las posibles fugas que se dan cuando las
tapas no presentan un buen ajuste.

En los sistemas horizontales las larvas caen directamente del bastidor al canal, en
donde se llevará a cabo la reabsorción. En este caso la permanencia de las larvas
en el fondo exige que se establezca un control de sedimentos que ingresan.

Estos canales son similares a los utilizados en el sistema de incubación de flujo
horizontal. Los materiales en que se construyen van desde la madera hasta la
fibra de vidrio. Últimamente se ha generalizado el uso de canaletas de asbesto –
cemento.


Reproducción

Reproducción natural.

Los peces de la familia salmonidae son de carácter reofílico con respecto a la
reproducción, lo que significa que remontan corrientes para finalizar su ciclo
reproductivo con cortejo y la emisión simultánea de los productos sexuales.

Cuando el pez se encuentra en las últimas etapas de madurez permanece cerca
de la desembocadura del curso de agua que va a remontar, que por lo general es
el mismo en el cual nació. Luego inicia la subienda y en el trayecto completa su
madurez. La hembra busca en los remansos un lugar que presente un substrato
apropiado (grava fina, corriente suave) y una vez definido el sitio, por medio de
fuertes coletazos, forma una o varías concavidades en el suelo y luego se inicia el
cortejo con el macho finalizando con la emisión simultánea de sus productos
sexuales y la fertilización. Las ovas permanecen en ese substrato hasta la
eclosión y reabsorción del saco vitelino. Luego los alevinos inician el trayecto
corriente abajo.

Reproducción artificial.

Implica adelantar todas las etapas que conciernen a los procesos de obtención de
ovas, desde el mantenimiento y manejo del plantel de reproductores hasta el
levante final de los alevinos logrados después de la incubación del material. La
reproducción de semilla es una especialidad en la cría de truchas y un proceso
exigente que requiere rigurosas condiciones de sitio, calidad y cantidad de agua y
labores de manejo.

Selección y manejo de reproductores.

En Colombia la producción de ovas es relativamente constante a lo largo del año,
con picos en las épocas que corresponden a los meses de menor temperatura en
el hemisferio norte, entre los meses de noviembre a marzo. La revisión de la
madurez de los reproductores es entonces un procedimiento permanente en las
fincas de producción. Las hembras desovadas deberán ser retiradas del grupo
principal, al igual que aquellas cuyas características indiquen la proximidad de la
ovulación. Aun cuando esta circunstancia requiere de instalaciones mayores para
el manejo de lotes parciales, se facilita y mejora el control sobre los mismos.

La maduración de las hembras, en las condiciones relativamente constantes del
trópico, se inicia a partir del decimoctavo mes de vida llegando a su madurez total
alrededor del segundo año.


Las características de una hembra madura son:

• Abdomen abultado y flácido.
• Poro genital prominente y rojizo.
Las hembras deben ser revisadas permanentemente, la frecuencia de está
revisión depende de la temperatura del agua como del número de animales
disponibles, a temperaturas más bajas el tiempo entre una revisión y la siguiente
puede ser mayor, debido a que la ovulación y la subsecuente maduración toma
más días y de esta manera se reduce el riesgo de perder puestas por
sobremaduración y se evita una manipulación excesiva. Cuando el número de
padrotes es alto, las revisiones deben ser más frecuentes pues mayor la
probabilidad de encontrar hembras ovulando. Los porcentajes de fertilización
máximos para una hembra se dan unos días después de que ha ocurrido la
ovulación. A unos 10°C los huevos sobremaduran en aproximadamente 8 días, lo
que reduce la fertilización.

Por las condiciones tropicales del país el desove ocurre cada seis u ocho meses.
La fecundidad de la especie es de 1500 a 2000 huevos por kilogramo de peso/
desove, lo que permite calcular el número de ejemplares necesarios para una
determinada producción. Si bien se han registrado casos de desove cada seis
meses, es decir dos veces al año para una misma hembra, en las condiciones
normales de manejo de la reproducción se puede considerar que el periodo entre
desoves es cada ocho meses y generalmente el primer desove no se utiliza.

La vida útil de una hembra reproductora se estima en unos cuatro años contados
desde que alcanza su primera madurez. Los machos son más precoces y logran
la madurez alrededor de su primer año de vida, son utilizados como reproductores
hasta que alcanzan los 5 años, debido a que con la edad se da cierta retención del
esperma en el momento del ordeño.

El macho maduro se caracteriza por:

. Presentar un color de piel más oscuro y brillante.
. La extremidad de su maxilar inferior se acentúa hacia arriba tomando la
forma de gancho, siendo mas notorio en los adultos.
. La cabeza vista de perfil es más alargada.
. Haciendo una leve presión en el abdomen hay expulsión de semen.

Debido a que estos maduran quincenal o mensualmente no es necesario
mantener una gran cantidad. Se recomienda un macho por cada tres hembras.

Las hembras deben mantenerse separadas de los machos, e igualmente por
grupos dependiendo de su estado de madurez, el que se verifica semanalmente
mediante una suave presión sobre el abdomen que ocasiona la salida de los
huevos. Los que están muy maduros o pasados se distinguen en el momento de
la extracción por ir acompañados de mucho fluido ovárico y se observan puntos
blanquecinos opacos, estos huevos no deben ser utilizados.

El grado óptimo de madurez en los machos se distingue por las siguientes
características:

. Calidad del semen que debe ser blanco y cremoso.
. Papila genital, aunque menor que la de la hembra, también se enrojece y se
proyecta.
. Coloración externa del cuerpo que se acentúa en esta época.
Metodología del desove

Una vez los reproductores están maduros y listos para la extracción de sus
productos especiales para su manejo, se deben tener listos los elementos a utilizar
en el desove (baldes, vasijas, plumas, etc.) debidamente desinfectados.
Inicialmente se depositan las hembras en bañeras plásticas con agua a la que
previamente se le agrega anestésico (MS 222, a una concentración de 75 ppm); al
cabo de 2 minutos el pez comienza a perder el equilibrio, y es el momento cuando
el operario retira la hembra del agua que contienen el tranquilizante y se introduce
en agua fresca, se lava bien y se seca suavemente, con el poro genital en
dirección al recipiente, sujetando con la mano izquierda la región caudal, de forma
que la hembra permanece inclinada con la cabeza hacia arriba. Con el pulgar y el
índice de la mano izquierda la región caudal, de forma que la ligera presión en la
cavidad abdominal desde la parte anterior del tronco hacia el orificio genital; en los
ejemplares completamente maduros los productos sexuales deberán fluir
libremente.

El diámetro de las ovas de trucha oscila entre los 3 y los 6 mm, y existe relación
entre el tamaño de la hembra con el de la ova que produce. A veces los huevos
pueden salir acompañados con un poco de sangre, si esto sucede significa que las
presiones han sido demasiado fuertes y hay ruptura de algún vaso sanguíneo.
Normalmente estas pequeñas hemorragias no tienen importancia.


Una vez conseguidos los huevos de 4 a 5 hembras, se extrae el semen de los
machos realizando la misma metodología descrita hasta que una película blanca
los cubra completamente, indicando que la cantidad añadida es suficiente.

Fecundación artificial

Existen dos métodos utilizados en la recolección de los huevos:

• El método húmedo.
• El método seco
El método húmedo consiste en la recolección de los huevos en una vasija con
agua a la cual posteriormente se le añade el semen. Si este proceso se efectúa
con rapidez, se obtienen altos porcentajes de fecundación. Si se realiza
lentamente, el porcentaje de fecundación puede ser bajo, debido a que la
motilidad del espermatozoide en medio acuoso es de 30 a 90 segundos, por otro
lado el huevo absorbe agua hidratándose y el micrópilo se cierra impidiendo la
entrada del esperma. Por estas razones es mas utilizado el método seco, con el
cual se permite llegar a una fecundación prácticamente total de los huevos. En
este caso los huevos son recogidos en un recipiente completamente seco.

Estos procesos deben efectuarse en un lugar protegido, sin incidencia de luz solar
directa.

Fertilización

La fertilización ocurre cuando el espermatozoide penetra en el óvulo por el
micrópilo. Una vez extraídos los productos sexuales, tanto de la hembra como del
macho, se mezclan homogéneamente con una pluma durante un minuto, luego se
adiciona agua de tal manera que la totalidad de los huevos queden cubiertos y se
continua con la mezcla, por un minuto, se añade agua para retirar restos
espermáticos y materia fecal, hasta que quede el agua completamente limpia y
dejando el doble de agua que ocupa el volumen de los huevos, deben permanecer
en reposo por un término de 60 minutos, tiempo en el cual ocurre la hidratación y
endurecimiento de la membrana externa; luego se desinfectan con un producto a
base de yodo.

Después de realizado un desove, el volumen obtenido debe ser cuantificado tanto
para ajustar la cantidad a ubicar en cada unidad de incubación, como para lograr
un estimado del número de larvas y alevinos a obtener después del proceso.

Las ovas son contadas antes de iniciar el proceso de incubación; este
procedimiento puede ser efectuado por volumetría, que consiste en determinar el


volumen de agua que desplaza un número conocido de ovas, a partir del cual se
puede calcular el número real de huevos con el que cuenta, aplicando la siguiente

fórmula:
No. de Ovas =
N x Vt
Vn
En donde:

N : Número de ovas de la muestra
Vn : Volumen de agua desplazado por N
Vt : Volumen de agua desplazado por la totalidad de las ovas
Otro método de conteo utilizado es el que se realiza mediante el cálculo del peso
de las ovas (método gravimétrico). Es un procedimiento similar al anterior con la
diferencia de que la muestra es pesada y también el número total de ovas. La
fórmula es la siguiente.

N x Wt
No. Ovas = --------------------
Wn

Donde:

N = Número de ovas de la muestra
Wt = Peso total de las ovas
Wn = Peso de la muestra N

Como desventaja de este método está la pérdida de ovas por manipulación.

Un método más práctico consiste en la medida de un pequeño recipiente con el
que se determina el número aproximado de ovas que puede contener. Todos
estos métodos son aproximados y debe tenerse en cuenta que existe un
porcentaje de error.

El sistema más preciso y rápido es aquel en que se emplean contadores
automáticos que presentan una celda fotoeléctrica y tiene una capacidad de
conteo de 1000 a 1500 ovas por minuto. Es el adecuado para grandes
productores, no se recomienda para pequeños productores por su elevado costo.


Pruebas de fertilización

No todas las ovas obtenidas son finalmente fertilizadas, aun cuando los
procedimientos de manejo hayan sido realizados eficientemente. Esto se debe a
varios factores, entre los cuales especial importancia tiene el que las hembras son
trabajadas en diferentes días después de la ovulación, lo cual significa que existe
un variable potencial entre las mismas para alcanzar elevados porcentajes de
fertilización. La determinación del número real de ovas con el que se cuenta es
fundamental para lograr una adecuada planificación de la producción.

La prueba de fertilización se realiza, entre seis y ocho días de incubación
dependiendo de la temperatura. Para el efecto se retira una muestra
correspondiente al 1 ó 2% de las ovas presentes y se sumerge en una solución de
metanol: ácido acético: agua (proporción 1:1:1). Trascurrido uno o dos minutos
aparece en las ovas fertilizadas una línea blanca que corresponde al cordón
neural del embrión en formación; los huevos no fertilizados se muestran
traslúcidos.

El número de ovas fertilizadas se encuentra por las siguientes formulas:

Número de ovas con embrión normal
Factor Fertilización (FF) = ---------------------------------------------------
Número de ovas de la muestra

El resultado de ésta relación es un factor que varía entre 0 y 1, entre más alto sea
el valor nos indica mayor número de ovas fertilizadas.

Número real de ovas fértiles = FF X Número total de ovas en incubación

El producto entre el factor fertilización (FF) y el número total de ovas en incubación
muestra el número real de ovas fertilizadas en el desove.

Lotes con un bajo valor de fertilización deben evaluarse permanentemente y en
algunos casos su eliminación puede ser conveniente debido a que en este tipo de
ovas originan pérdidas significativas en las etapas posteriores del cultivo.

Los registros siguientes ala incubación corresponden a los datos sobre la
mortalidad, la cual debe ser retirada periódicamente. Al final de la fase y
disponiendo tanto del número real inicial (ovas fertilizadas) como del número de
larvas obtenidas, se calcula un índice de Eficiencia con la fórmula siguiente:


Número de larvas obtenidas

Índice de eficiencia =

Número real de ovas fértiles

El registro constante de estos parámetros (Factor de Fertilización, Índice de
Eficiencia) permite establecer el rango normal de trabajo en cada sitio y,
consecuentemente, facilita la rápida detección de problemas asociados al manejo
de la producción, además del control a la operación del centro. Adicionalmente
favorece la evaluación y comparación interna en programas de selección, grupos
de reproductores, padrotes individuales, ciclos anuales o con otras granjas de
producción.

Incubación

Es el l período durante el cual el pez se desarrolla dentro del huevo y desde este
momento hasta el nacimiento de la larva, se distinguen dos fases bien definidas:

• La primera denominada ova verde comprende desde la fecundación hasta la
aparición de los ojos.
• La segunda denominada ova embrionada va desde la aparición de los ojos
hasta el momento de la eclosión.
La duración de este período se expresa en grados día. Lo que indica el número de
días que tarda el proceso de incubación de los huevos a la temperatura de un
grado centígrado. Para la trucha arcoiris está definido en un rango de 290 a 330
grados/día.

La eclosión dura alrededor de 50 grados/día, esto quiere decir que las primeras
larvas nacen a los 290 grado/día y las últimas a los 330, aproximadamente. Los
mejores resultados en el proceso de incubación se obtienen con una temperatura
del agua entre los 9 y 12 grados centígrados, el PH, entre 7 – 8.5 y el oxígeno
disuelto en 7 ppm.

Selección de ovas

Una práctica que mejora la calidad, especialmente cuando no se dispone de lotes
homogéneos de reproductores, corresponde a la separación de los lotes de ovas
en grupos de acuerdo con su diámetro. Se ha establecido que este manejo mejora
la calidad de los alevinos.


Para llevar a cabo ésta selección se pasan las ovas a través de clasificadores con
perforaciones de diferente diámetro. La ventaja de dividir los lotes en subgrupos
estriba en que se incrementa la homogeneidad de los alevinos. Esta clasificación
se puede efectuar tanto en ova verde, inmediatamente después de la fertilización,
y antes de que las ovas ingresen a incubación, obteniéndose mejores resultados
en ova embrionada.

La relación entre el tamaño de la ova y la talla de la larva es directa; es decir, las
ovas de mayor diámetro dan origen a larvas de mayor tamaño y viceversa. Esto no
significa que las larvas menores, por esta razón, tengan un menor potencial de
rendimiento en cultivo. Cuando tal separación no se efectúa, las diferencias
iniciales tienden a acentuarse, dando origen con el tiempo a una mayor proporción
de anima“es pe”ueños, precisamente los que en cultivo se califican como "colas".

Desarrollo del embrión

Desde el momento del desove de la hembra, el huevo presenta las siguientes
características estructurales:

La mayor parte del huevo está constituido por un líquido amarillento y viscoso
denominado vitelo, sales neutras y corpúsculos oleaginosos. Este se encuentra
protegido por una membrana protoplasmática. Denominada membrana vitelina
que se ensancha en la parte cercana al micrópilo, formando el disco germinal,
donde se encuentra el núcleo al que se fusionará el espermatozoide. Protegiendo
el huevo se encuentra una cáscara porosa, con una abertura llamada micrópilo por
donde penetra el espermatozoide. Entre la cáscara y la membrana vitelina se
encuentra el espacio perivitelino.

Durante todo el proceso el embrión se alimenta del vitelo, por lo que es importante
manipular lo menos posible las ovas, puesto que si la membrana vitelina se rompe
las sales salen al espacio perivitelino y muere el embrión; por lo tanto las ovas
sólo deben manipularse entre las 48 horas siguientes a la fecundación y a partir de
la fase de ova embrionada. A veces existen huevos no fecundados cuyo aspecto
exterior da la apariencia de un huevo normal fecundado, por lo que es necesario
en la etapa de ova embrionada efectuar un chequeo que a su vez ayuda a eliminar
los embriones débiles o defectuosos. El chequeo consiste en succionar los huevos
con la ayuda de una manguera desde la incubadora y lanzarlos a un balde con
agua a una altura que oscila entre 20 ó 30 centímetros. Los huevos que tomen
una coloración blanquecina después de efectuar este proceso deben ser retirados.


Eclosión

Cuando el nacimiento está próximo el huevo se vuelve ligeramente ovalado, su
membrana exterior pierde consistencia y luego por acción de una enzima
proteolítica (diataza) se disuelve, ayudando al nacimiento de la larva.

Larvas (alevinos con saco o versícula vitelina).

Este periodo comprende desde la eclosión hasta la reabsorción del saco vitelino.
Los peces recién eclosionados presentan una gran bolsa en forma ovalada en su
región ventral, la cual contiene un material de reserva que es utilizado en la
finalización de su desarrollo. Su talla inicial es de 15 milímetros aproximadamente
y cuando termina esta fase su talla será de 20 milímetros.

Al igual que las ovas deben ser mantenidas en completa oscuridad y no se deben
perturbar en lo posible. Es muy importante extraer los huevos cuya eclosión no se
efectuó, igualmente se deben retirar diariamente las larvas muertas con el fin de
evitar contaminación por bacterias y hongos.

La duración del proceso de la reabsorción de la vesícula depende de la
temperatura y por lo general tiene una duración de 1 a 2 semanas (180 a 200
grados/día), hasta que los alevinos empiecen a nadar y consumir alimento. El
inicio de la alimentación es un momento clave para el futuro desarrollo de los
peces. Un criterio práctico es el de suministrar el alimento cuando
aproximadamente un 10% de la población empieza a nadar. Mientras más veces
al día se alimente los resultados obtenidos en supervivencia, crecimiento y
homogeneidad serán mejores. Si es posible, en estas primeras semanas de vida
un suministro de comida cada 15 a 20 minutos es ideal; al menos se debe
asegurar entre 13 y 16 comidas diarias.

En caso de que el criadero no cuente con canaletas para mantener las larvas,
estas pueden depositarse en canastillas cuya estructura sea de madera o fibra ,
forradas con angeo plástico tipo mosquitero con tapa, las cuales se instalan en los
canales de alevinaje, separadas del fondo unos 10 a 15 centímetros, con el fin de
evitar que los materiales en suspensión, que provienen del agua que alimenta el
canal, afecten los pequeños peces.

Semilla importada

Se refiere a la utilización de ovas adquiridas en centros extranjeros especializados
en el manejo, producción y sistemas de distribución de ovas. Para este tipo de
semilla, los productores adquieren directamente las ovas y finalizan con la
incubación y las demás fases de reabsorción y alevinaje, lo cual es posible


siempre y cuando se cuente con las necesarias condiciones de calidad de agua, y
los demás parámetros ya descritos.

Cuando estas condiciones no se dan, los alevinos provenientes de ovas
importadas son adquiridos para continuar con ellos las fases restantes de la
producción de carne. En algunos casos, si las características del sitio lo permiten,
ciertos productores adquieren larvas en estado avanzado de reabsorción de saco
vitelino, con lo que se reducen los costos.

De cualquier manera, la utilización de ovas importadas requiere adelantar la fase
final del proceso de incubación, desde ova embrionada hasta eclosión, además de
la reabsorción de saco vitelino, para lo cual se necesita disponer de infraestructura
apropiada. Estas ovas son transportadas en empaques térmicos, en los que se
mantienen a una temperatura de 1 a 3 °C y permanentemente húmedas. Las ovas
se ubican en las canastillas superpuestas, colocando abundante hielo en la
primera y en la última. Con un empaque adecuadamente realizado, el transporte
en esta fase puede durar hasta 72 horas.

Finalizado el transporte se debe proceder con la aclimatación de las ovas de forma
que se logre aumentar la temperatura de manera suave y constante hasta
alcanzar la del agua en las incubadoras. La aclimatación se puede realizar
ubicando las ovas directamente en agua que ha sido enfriada hasta la temperatura
del empaque y el incremento se hace mediante la adición paulatina de agua a
mayor temperatura.

En otro procedimiento, las ovas se dejan en las bandejas de empaque y se bañan
constantemente (cada 10-15 minutos) con agua a una temperatura uno o dos
grados superiores. El incremento debe ser monitoreado permanentemente con un
termómetro, con un ascenso de temperatura entre 2 y 4 oC por hora, hasta llegar
al punto en el que se encuentra el agua en las incubadoras. El tiempo total de
aclimatación puede estar entre las 2 y las 4 horas.

Finalizado el procedimiento se debe contar el número de ovas y proceder a su
colocación en el sistema de incubación bien sea en incubadoras verticales de flujo
descendente o en canastillas (tipo californiano) ubicadas en canales horizontales.
El flujo aproximado en incubación es de 1.5 - 2.5 litros por minuto por cada 1.000
ovas.


Control sanitario en ovas y larvas.

Las canaletas, bastidores, baldes y demás elementos a utilizar deben estar
previamente desinfectados, con un producto a base de yodo a una concentración
de 250 ppm.

Las ovas verdes una vez hidratadas y con cáscara endurecida pueden ser
sometidas a un baño corto en una solución de yodo a una concentración de 50
ppm.

Los huevos muertos o no fecundados son rápidamente atacados por hongos,
generalmente de los Saprolegnia y Achyla, por lo que se recomienda la utilización
de verde de malaquita libre de zinc en solución, cuya concentración final sea de 2
ppm. Para los sistemas de flujo horizontal se adiciona en la cabecera del canal,
realizando una disminución en el nivel del agua de tal forma que la droga actúe
durante 30 minutos. En el caso de las incubadoras de flujo vertical se puede
aplicar por goteo (una gota por segundo) en la entrada del agua de la primera
bandeja de incubación durante una hora cada dos días. Una vez ocurra el
embrionamiento se reduce a 15 ó 30 minutos y se suspende 3 a 5 días antes de la
eclosión.

En la etapa de reabsorción la mortalidad es mínima si el manejo y situación
sanitaria son correctas; esto se logra substrayendo las ovas muertas, las cáscaras
y los alevinos que van muriendo, pues son focos de infección. Cuando se inicia el
suministro de alimento es necesario retirar diariamente por sifoneo el concentrado
que no fue consumido.

Es normal observar peces con diferentes anomalías como alevinos siameses, con
problemas de columna (enrollados), con dos cabezas, entre otros, que no causan
ningún problema y por lo general mueren en un corto tiempo.

La enfermedad más común para esta etapa es la del “saco azul”, que se
caracteriza por un aumento en el tamaño del saco vitelino y se torna de una
coloración azul. Parece que esta situación se presenta por una acumulación de
desechos metabólicos, la cual se puede subsanar aumentando el flujo de agua.

La “enfermedad de las burbujas” es poco común pero se puede presentar por una
sobresaturación de oxígeno y otros gases en el agua que se acumulan en el saco
vitelino, deformándolo y en otros casos puede presentarse bajo la piel. La solución
es obligar a que el agua de la fuente transite por un recorrido largo con el fin de
liberar los gases.


Alevinaje

Una vez las larvas han reabsorbido su vesícula vitelina, nadan libremente y
reciben el alimento sin ninguna dificultad y a partir de este momento se denominan
alevinos, hasta que alcanzan una talla aproximada de 8 cm, momento en el cual
se llaman dedinos o juveniles y se comienza con la etapa de engorde.

La fase de alevinaje es uno de los períodos más críticos, donde se deben tener
muchos cuidados en el manejo, pues de esto depende el éxito o fracaso de un
criadero de trucha especialmente en tallas entre 2.5 - 3.5 cm.

Infraestructura

Algunos productores de semilla utilizan los mismos canales donde se encuentran
las larvas para el levante de los alevinos hasta una talla de 5 cm, trasladándolos
luego a canales externos. Cuando no se cuenta con esta infraestructura, las
pequeñas truchas son transportadas a estanques en el exterior de forma
rectangular o circular y construidos en cemento, fibra, madera o material
galvanizado; este último debe ser recubierto con una pintura a base de caucho,
con el fin de evitar la formación de óxido de zinc que es altamente tóxico.

Como los alevinos son muy sensibles a los rayos solares directos, los canales
deben estar en un lugar protegido.

Las piletas de forma rectangular son muy similares a las utilizadas en el
mantenimiento de las larvas, la principal diferencia se encuentra en el tamaño.
Deben presentar la entrada y salida del agua opuestas y las paredes y fondos
deben ser lo más lisos posibles (cemento esmaltado o porcelanizado), con el fin
de evitar el maltrato de los peces debido al roce y acumulaciones de material que
pueden afectar la calidad del agua y obstaculizar el flujo. Igualmente deben ser
pintados de un color claro para facilitar la observación permanente de los
animales.

El suministro de agua puede ser por tubería, manguera o por canal, pero siempre
se debe contar con un registro para el control del caudal. La salida o desagüe
puede diseñarse por rebosamiento o por vertedero y el más utilizado por lo
práctico es el sistema en tubo que permite mantener el nivel del agua, pero el
diámetro de este debe ser superior al del tubo de entrada.

Muchos productores utilizan estanques circulares para alevinos de tallas
superiores a los 5 cm, que por presentar una corriente tangencial hace que los
peces permanezcan nadando contra la corriente sin encontrar obstáculo alguno,
fortaleciendo su musculatura y por ende su crecimiento es más vigoroso. Así
mismo se distribuyen uniformemente por todo el espacio disponible permitiendo


tener mayor densidad por unidad de área en comparación con los tanques
rectangulares.

Este sistema presenta un desagüe central y su fondo debe estar inclinado en
todas sus direcciones hacia este y con una pendiente del 5 al 10%. Esto
representa la ventaja de permitir una autolimpieza del material sedimentado. Al
igual que los anteriores su interior debe ser completamente liso. La salida del agua
y el control del nivel se realizan desde afuera, por un tubo acodado que se
comunica con el tubo central de desagüe. La entrada del agua debe efectuarse
desde un tubo perforado colocado perpendicularmente al tanque; de esta manera
el agua es expulsada a presión por los orificios originando una corriente circular.

Las dimensiones de los tanques son variables dependiendo del número y tamaño
de las truchas, encontrándose desde 2 hasta 15 metros de diámetro con una
profundidad de 50 a 80 cm.

El buen desarrollo de los alevinos se ve influenciado por varios factores, entre los
cuales vale la pena mencionar:

• Cantidad y la calidad del agua.
• Densidad
• Manejo
• Alimentación
La cantidad de agua que debe ingresar al estanque está condicionada al número
de alevinos que se requiera mantener. Como orientación, las tablas expuestas a
continuación, indican las necesidades de caudal y espacio para un número
determinado de peces de acuerdo a la talla y temperatura del agua.

De la calidad del agua depende el desarrollo de los animales, esta debe
encontrarse sin ningún tipo de contaminación, poco sedimento y con parámetros
físico-químicos estables. Uno de los factores de mayor influencia es la
temperatura, que es ideal cuanto más próximo se encuentre al rango óptimo.

Tabla No. 17 Relación respecto a la densidad en estanques rectangulares y circulares.

Longitud de los dedinos Número por m2 en estanque
Circulares Rectangulares
6 cm 2100 1000
7 cm 1500 750


8 cm 1200 600
9 cm 1000 500
10 cm 850 400

Fuente BIOTER S.A., 1972

No es suficiente una buena calidad y cantidad de agua para obtener excelentes
truchas. El factor más importante tiene que ver con el manejo de los alevinos: las
constantes labores de limpieza, una adecuada alimentación, la selección por tallas
y la adición de medicamentos preventivos y/o curativos que harán de los
pequeños peces unos excelentes adultos.

Tabla No 18. Caudal mínimo en litros/minuto para 10000 alevinos según temperatura del
agua.

Longitud de los Alevinos (cm) Temperatura del agua (°C)

5 7 10 12 15

3.0 5 6 7 8 10
3.5 7 8 10 12 15
4.0 10 11.5 14 16 20
4.5 14 16.5 20 24 30
5.0 18 21 26 30 40
Fuente: Martín, 1976

Tabla No. 19 Necesidades de espacio para levante de los alevinos de trucha

Longitud de los Alevinos (cm) Alevinos por m2

Ejemplares/m2 Kilogramos/ m2

1.5 10000/30000 1/3
2 10000/30000 1/3
3 10000 3.8
4 3000/5000 2.4/4
5 2500 3.5
6 1000 4
Fuente: Martín, 1976


Tabla No. 20. Influencia de la temperatura del agua en el crecimiento de los alevinos de
trucha arcoiris.

Temperatura del agua (°C) Talla (cm) al cabo de:
60 días 90 días 120 días 150 días

5 2.5 3.0 3.5-4 5.0
7 3.0 3.5 4.5 5.5
10 3-3.5 4-5 5-7 6-9
12 4.0 6.0 8.0 10.0
15 5.0 7.0 9.0 11.0
Fuente: Martín, 1976

Dentro de un lote de alevinos, incluso procediendo de los mismos reproductores y
mantenidos en iguales condiciones, siempre existirá diferencia en el crecimiento
entre unos y otros, la que se hace más notoria a partir de los 3 cm y puede
persistir durante toda la vida. Se pueden presentar, entonces, ejemplares m”s
desarrollados que otros a los cuales se les denomina "cabezas" ” que
corresponden por lo general a un 25 % del“lote;”un "centro" que viene a ser un 50
% y los más pequeños o "colas" que constituyen el otro 25 %. Por lo general las
cabezas son hembras y las colas son machos.

En esta etapa se puede presentar canibalismo, por esta razón se debe efectuar o
selección por tallas, buscando que no existan diferencias en tamaño superiores al
30 %. De esta manera se controlará la predación.

Tabla No. 21. Tamaño máximo y mínimo de las truchas en un mismo estanque

Talla mínima (cm) 2 2.5 4 5 6.5 8 9 10 12 13 14
Talla máxima (cm) 3 4 6 8 10 12 14 16 18 20 22
Fuente: Martín, 1976

Existen diferentes aparatos de clasificación, desde equipos altamente
especializados hasta los más sencillos que están formados por una serie de
varillas fijas a un bastidor, la luz entre varilla y el tamaño del pez que pasa por
entre ellas, se indica en la siguiente tabla.


Tabla No. 22 Relación entre la separación de las varillas con respecto a la longitud del
pez.

Separación de las varillas delLongitud mínima de las truchas que
clasificador (mm) pasan entre ellas (cm)
3 3
4 4
6 6
8 8

Fuente: Martín, 1976

Se recomienda la manipulación de los peces en la mañana, en ayunas con el fin
de evitar problemas por el incremento de la temperatura del agua y los estanques

o canales estar previamente preparados y desinfectados.
Con los equipos y peces listos, se coloca en el estanque el seleccionador de
acuerdo a la talla promedio de las truchas a clasificar; los animales se transportan
en una caneca al sitio y se hacen pasar por las varillas. Aquellos que no puedan
pasar son retirados a un tanque aparte; de ser necesario se pueden realizar
simultáneamente las actividades de medición, pesaje y conteos.

A los alevinos se les debe suministrar un alimento balanceado con un alto valor de
proteína (45-50%). En cualquier caso, los gránulos deben tener un tamaño
apropiado para la boca del pez, por lo que si se hace necesario hay que moler el
pellet, tamizarlo y dar la harina resultante.

Una vez se establece la cantidad de alimento diario a suministrar éste debe
repartirse en 8 a 10 dosis diarias, que se esparcen a lo largo de todo el estanque
para que la totalidad de los peces puedan tener acceso a la cantidad apropiada.

Transporte de ovas y alevinos

Prácticamente todas las granjas deben transportar o trasladar ovas o alevinos. Es
una actividad bastante sencilla donde la mortalidad es muy baja si se efectúa con
las técnicas y cuidados apropiados.

. Transporte de ovas
Estas se pueden transportar cuando se han hidratado y su cáscara se ha
endurecido. En este estadio no existe problema alguno en su manipulación
durante las primeras 48 horas, –or lo que fácilmente soportan viajes relativamente
cortos de 4 - 5 horas; para tal efecto se utilizan recipientes (cantinas) que se llenan


con 1/3 de agua y el resto de huevos. La temperatura conviene mantenerla lo más
bajo posible para disminuir el rnetabolismo del embrión.

Cuando se observan los ojos (ova embrionada) se pueden efectuar transportes
más largos/ incluso de 3 a 4 días. Para este caso se utilizan recipientes como
cajas de icopor (neveras) o cajas de cartón parafinado, herméticamente cerradas.
En el interior se instalan, superpuestas, pequeñas bandejas o canastillas en
madera y con malla plástica o icopor con el fondo perforado. Cada una de estas se
recubre con gasa estéril previamente humedecida y sobre ella irán las ovas. En la
bandeja superior se coloca hielo picado con lo que se mantiene la humedad de los
huevos y se reduce la temperatura; para evitar exceso de humedad, en la
canastilla inferior se instalará espuma o cualquier material absorbente. Para que
no se inicie la eclosión durante el transporte, las ovas deben transportarse cuando
lleven acumulados unos 200 grados/día.

Es importante que antes de depositar las ovas en las incubadoras, éstas sean
aclimatadas mediante la adición de pequeños volúmenes del agua, en donde
serán ubicadas definitivamente.

. Transporte de alevinos
Por lo general se realizan en bolsas plásticas de un calibre de 2.5 -3.0 de fondo
circular o cuadra–o. Las dimensiones más comunes son las siguientes: altura 0.80

-0.90 m., largo 0.30 - 0.35 m., ancho 0.20 - 0.25 m.
Cuando las truchas están contadas se procede a colocarlas dentro de las bolsas
que contienen 1/3 de agua. Posteriormente, se inyecta oxígeno hasta que se
ocupen las 2/3 partes restantes. Se cierran herméticamente, sellándolas con
bandas de caucho, de tal forma que no se dé la posibilidad de escape del oxígeno
inyectado.
La cantidad de peces que se pueden transportar por bolsa depende del tamaño
dos animales y el tiempo del recorrido.

F-



F 47- Pequeños estanques de producción artesanal de trucha.
Tabla No. 23. Transporte de truchas


Especietamaño
Truchas
Volumen
bolsa (l)
50
Cantidad
de agua (L)
15
Temperatura del agua
(°C)
10
No. de
peces y/o
peso (g)
500
Duración
transporte(horas)
15
4-6 800-12000g
Truchas 50 10 10 100 12
9-12
Truchas 50 15 10
1500g
100 12
12-15 2500g

Fuente: Vollman-Schipper, 1978

Cuando el recorrido es largo o necesario atravesar por zonas cálidas se adiciona
hielo alrededor o en el interior de las bolsas. Con el fin de evitar rupturas o
pinchazos se recomienda colocarlas dentro de cajas plásticas, icopor o cartón.
Una vez finalizado el transporte y si se tiene el lugar preparado para recibir las
truchas se introducen las bolsas en el agua durante 10 a 15 minutos de tal forma
que se equilibren las temperaturas; luego se abren y se permite que entre agua
del estanque y que los alevinos salgan por su propia cuenta.


F 48 y 49 - Transporte y siembra de alevinos de trucha

Existen otros tipos de recipientes, como los tanques transportadores que son
construidos en metal o en fibra de vidrio los cuales llevan acoplados diferentes


sistemas de aireación u oxigenación. Se utilizan especialmente para el transporte
de peces de una talla superior a los 8 cm y/o para programas de repoblación.

Engorde

Cuando los alevinos adquieren una longitud entre los 5-8 cm. que en peso
corresponde a un intervalo aproximado de 1.5 a 6.5 g, se inicia el proceso de
engorde o ceba, que finaliza con el sacrificio cuando alcanzan la talla comercial
exigida por el mercado.

La duración de ésta etapa está condicionada a las calidades del agua, en especial
a la temperatura y al tipo de manejo que se mantenga durante el proceso.

Infraestructura

. Estanques
La forma, tamaño y distribución de los estanques depende del caudal disponible y
la topografía del terreno. Estos deben mantener una corriente uniforme del agua a
todo lo largo y especialmente hacia el fondo con el fin de arrastrar los sedimentos
hasta la salida para su evacuación. Los estanques construidos en tierra presentan
menor capacidad de carga en comparación con los de cemento, debido
principalmente a la retención de materia orgánica que en su degradación
disminuye los niveles de oxígeno disuelto, reduciendo su disponibilidad para las
truchas en cultivo.

En cuanto a la forma, pueden ser rectangulares o circulares, en los primeros su
longitud debe ser aproximadamente 10 veces su ancho; sus características
estructurales son muy similares a las utilizadas en el levante de larvas y alevinos.
Se recomienda que la conducción del agua se haga por gravedad a partir del
canal de distribución y que la entrada al estanque sea en forma de cascada,
buscando abarcar la mayor parte del ancho del estanque, para obtener una mayor
uniformidad y disminución de espacios muertos, que corresponden a las zonas
donde apenas hay corriente y la renovación es escasa, lo cual ocurre
especialmente en las esquinas. Pueden darse otras modificaciones al diseño de la
entrada y salida del agua, con las que se evitan los problemas descritos y a su
vez se aumenta la velocidad para favorecer un mejor rendimiento.

La salida del agua debe ser de tal manera que se permita renovar especialmente
la del fondo, que es la de menor calidad. Para lograr esto se puede utilizar un
desagüe de doble compuerta o un codo en balancín. Con el primer sistema la
regulación del nivel se efectúa mediante el manejo de compuertas que constan de
varias tablas de madera que permiten disminuir el volumen del agua hasta lograr
un vaciado total del estanque. Con el segundo la inclinación del tubo acodado
regula el nivel; aquí es importante construir un rebosadero en la parte superior de


la pared o del dique del tanque para evacuar las aguas sobrantes en caso que se
presente una obstrucción en la rejilla.

Cuando la cantidad de agua no es suficiente, los estanques se pueden colocar en
serie de tal forma que el rebosadero del anterior sea el punto de entrada de agua
para el siguiente; se recomienda establecer entre los dos estanques una diferencia
de altura de tal manera que se presente una caída para facilitar una
reoxigenación. El inconveniente de este sistema es el manejo de la sanidad de los
estanques por compartir las aguas.

Con un caudal de agua abundante el sistema de disposición más utilizado es el
denominado en paralelo, en donde los estanques se encuentran unidos o
comparten sus paredes laterales. En este caso cada uno recibe su caudal
independientemente.

Los tanques rectangulares pueden ser en tierra, revestidos en material plástico,
cemento y concreto. Los primeros son excavaciones sobre el terreno que
encierran un volumen dado de agua. El terreno debe presentar de un 20 a un 40%
de arcilla con el fin de evitar filtraciones. La ventaja principal de este tipo de
estanque está dada por su reducido costo, sin embargo en estos la capacidad de
carga es menor, además presentan corta vida útil, especialmente por la acción
erosiva del agua que deteriora el fondo y los taludes, lo que a largo plazo aumenta
los costos de mantenimiento y finalmente, se dificulta las labores de manejo en su
interior. Para subsanar estas desventajas se utilizan recubrimientos en plástico,
cemento o el material conocido como geomembrana que ha dado excelentes
resultados. En este tipo de estanques es conveniente empradizar los taludes para
evitar la erosión.

La mayoría de ¡as piscifactorías utilizan estanques de concreto y aunque resultan
más costosos ofrecen las siguientes ventajas:

. Pueden ser construidos en cualquier terreno.
. Su vida útil es larga y gastos de mantenimiento bajos.
. Presentan mejores condiciones sanitarias.
. Facilitan las actividades de manejo.
. Tienen una mayor capacidad de carga.
Estos pueden ir enterrados, semienterrados y superficiales. Los últimos tienen
menor costo en su construcción. Los estanques circulares son similares a los
descritos para la fase de alevinaje.


Jaulas flotantes


F 50-Panorámica cultivo de truchas jaulas flotantes Lago de Tota (Boyacá Colombia)

Cuando se tiene acceso a un lago, laguna, embalse o a un gran cuerpo de agua
que presente las características apropiadas para el cultivo de truchas se puede
instalar un sistema de producción en balsas o jaulas flotantes.

Se trata de recintos encerrados por redes que mantienen un volumen de agua, y
donde se mantienen los peces en el mismo medio en que viven, permitiendo un
cultivo intensivo. Aquí el agua es renovada continuamente a través de las mallas y
de esta forma se aporta oxígeno permanentemente. La temperatura es
relativamente constante y se impide la entrada de predadores.

La estructura básica de un sistema de este tipo ya fue revisada en el capítulo
correspondiente a jaulas flotantes.

Como en este sistema se adelanta el proceso completo de levante y engorde es
necesario contar con jaulas que tengan redes de diferentes ojos de malla que
sean los adecuados para cada fase de cultivo y que permita la salida de los
residuos y desechos provenientes de la alimentación y excretas. El material más
empleado es el nylon multifilamento y el plástico rígido, dependiendo de las
necesidades o capacidades del piscicultor. Se recomienda realizar antes de [a
instalación un tratamiento con pintura asfáltica o algún producto que evite la
excesiva fijación de algas, lo que permite una vida útil más larga y que las labores
de limpieza sean menos exigentes. Las redes deben ser de un color oscuro, y en
lo posible sin nudos, lo que evita la adherencia de algas y que el pez se lastime
por rozamiento.


El tamaño de la jaula puede ser variable y debe estar acorde con las producciones
deseadas. Son comunes, las jaulas con una superficie que puede variar entre los
15 y 30 m2, con una altura comprendida entre los 2 y 4 metros. El ojo de malla se
encuentra de acuerdo con la talla de los animales que se cultivan en las diferentes
etapas y a su crecimiento, tal como se indica en la tabla No. 23.

Las redes deben llevar algunas pesas en sus aristas, con el fin de evitar que por
acción de las corrientes se replieguen y se pierda volumen efectivo.

Todo el conjunto de Jaulas debe quedar fuertemente anclado por medio de
cuerdas resistentes (manilas de nylon de más de una pulgada).

Tabla No.24 Relación entre el tamaño de la trucha y el ojo de la luz de la malla.

Tamaño de la trucha (cm) Luz de la malla
Pasan (mm.) No pasan (mm.)
Menores 3.5 4 Menor 4
Mayores de 3.5 y menor de 6 6 4
Mayores de 6.0 y menor de 10 9 6
Mayores de 10 y menor de 16 15 9

Fuente: García-Badell, 1985

El conjunto de jaulas se ubica de forma perpendicular a la corriente predominante
en el cuerpo de agua y en un lugar protegido de fuertes vientos y oleajes. La
profundidad desde el fondo de la red hasta el fondo del lago será el doble de la
altura de la malla.

Manejo de estanques

Al igual que la producción de semilla, el proceso de engorde requiere un factor
específico, especialmente un rango ideal de temperatura con el que se logren los
mejores resultados. Así, este parámetro debe encontrar entre los 13 y 17 oC–,
siendo el óptimo entre 15 – 16ºC en promedio y con una variación muy estrecha
respecto a estos valores. El oxígeno deberá ser superior a 7 ppm y no debe tener
un valor inferior a 5.5 ppm en la descarga.

El caudal de ingreso tiene especial importancia debido a que la cantidad de agua
que entre al estanque influirá en el nivel de oxigeno disponible para las truchas y
por consiguiente en su densidad.

De cualquier manera el flujo al interior del estanque estará limitado también por la
velocidad que adquiere el agua dentro de la unidad. Una corriente excesiva
genera un ejercicio constante de natación, con los consecuentes gastos


energéticos que pueden reducir las tasas de crecimiento esperado. Por el
contrario, un flujo demasiado reducido puede resultar peligroso para los peces
tanto por la insuficiencia en oxigeno disponible como por una deficiente remoción
de los productos de desecho metabólico. Una velocidad máxima del agua del
orden de 2 a 3 cm/seg se considera aceptable.

Tabla No. 25 Caudal necesario para 10000 truchas según la temperatura del agua.

Longitud de las Caudal mín. necesario en litros/minuto para 10.000
truchas (cm) truchas según la temperatura del agua ºC

5 7 10 12 15 17

6 25 30 35 40 45 55

8 60 70 80 90 100 125

10 105 120 140 165 195 235

12 170 190 215 265 315 380

14 265 300 335 415 485 575

16 390 425 465 580 700 840

18 565 620 680 800 930 1140

20 780 865 950 1150 1340 1600

22 1030 1150 1280 1450 1680 2000

24 1320 1440 1575 1740 1970 2300

26 1675 1765 1900 2075 2300 2625

Fuente: Martín, 1976

Para efectos de cálculo se estima que por cada tonelada año que se espera
producir se requieren entre 2 y 3 litros por segundo. Este valor es una
aproximación de referencia cuya exactitud estará relacionada con la calidad del
agua, niveles de oxígeno y del número de veces que se reutilice. Entre la salida de
un tanque y el ingreso al siguiente la diferencia de altura debe tener un mínimo de
unos 50 cm., entendiendo que mientras más elevada sea esta se tendrá
igualmente un mayor aporte de oxígeno.

En flujo de entrada debe ser calculado tomando como criterio básico el que la
renovación total del agua en cada tanque se haga como mínimo una vez por hora;
un mayor recambio (1.5 veces /hora o más) permitirá mantener cargas superiores.

Aguas con p.H ligeramente ácido (alrededor de 6.5 a 7) pueden ser utilizadas
sucesivamente hasta unas 6 veces.

Otro factor a tener en cuenta es la densidad o cantidad de peces por volumen que
es posible mantener adecuadamente, dependiendo del tipo de estanque y tamaño
de los peces, siempre y cuando la cantidad y calidad del agua sean óptimas. En
términos generales, la cantidad de peces que se puede mantener se basa en el
oxígeno presente, en el caudal de ingreso y en la tasa de renovación del agua.


Los estanques se deben limpiar periódicamente para evacuar los sedimentos,
detritos, peces muertos y restos de alimento que se depositan en el fondo; de no
hacerse periódicamente este proceso se estará propiciando un ambiente favorable
para la aparición de enfermedades.

Es importante realizar análisis físico-químicos constantemente; la toma de datos
de temperatura y oxígeno disuelto debe efectuarse diariamente y en lo posible dos
veces (mañana y tarde), el p.H mensualmente y otros parámetros como dureza,
alcalinidad, se harán por lo menos dos veces al año; variables como amonio,
nitritos, nitratos, etc. deberán monitorearse con cierta frecuencia debido a que en
los cultivos intensivos existe la tendencia a incrementarse el amonio.

Alimentación

En su estado natural la trucha es un pez carnívoro que consume crustáceos,
moluscos, insectos y pequeños peces; es decir, su dieta está compuesta
principalmente por proteínas, grasas, carbohidratos, sales minerales y vitaminas.
El alimento es capturado con ayuda de la vista y el olfato. La coloración de su
carne está ligada a los carotenos que presentan los organismos que consume.

Actualmente la industria de alimentos concentrados produce dietas debidamente
balanceadas, para satisfacer sus requerimientos nutricionales y de esta manera
obtener un buen desarrollo y crecimiento.

El alimento debe presentar la siguiente composición básica:

COMPONENTE PORCENTAJE
Proteína 40 - 50 %
Cenizas 10%
Humedad 12%
Fibra 3%
Grasa 7 - 18%

Al igual que durante la etapa de alevinaje, el alimento a suministrar diariamente
está condicionado a la talla del pez y a la temperatura del agua. Las casas
productoras de concentrados comerciales hacen las recomendaciones pertinentes.

Una vez determinada la cantidad de comida a suministrar diariamente se debe
tener en cuenta que mientras más dosis se ofrezcan los resultados serán mejores.

El número mínimo sugerido es el siguiente:


Tamaño de l–s peces (cm.) Número comidas diarias
2.5 – 5 8 - 10
5 – 10 4 - 6
10 – 15 3–- 4
15 en adelante 1 - 2

El alimento debe ser suministrado diariamente al voleo, a lo largo de todo el
recinto, con lo que se asegura que la mayoría o la totalidad de los gránulos sean
consumidos.

Existen autoalimentadores que presentan la ventaja de reducir la mano de obra
que se dedica a esta actividad.

Con el fin de ajustar las tablas se deben efectuar mediciones y pesajes mensuales
de los peces y llevar un registro para conocer el índice de conversión que ofrece el
alimento utilizado. Con éste se determina la relación que existe entre la cantidad
de alimento que se suministra y el incremento en el peso de los animales, de
acuerdo con la siguiente fórmula:

Peso del alimento consumido
Índice de conversión = ------------------------------------------------------
Incremento de peso en las truchas


Selección

La clasificación de los peces es un procedimiento de manejo que debe ser
considerado como necesario y periódico especialmente en aquellos sistemas de
tipo intensivo. La selección genera homogeneidad de tallas cada lote y además
da mayor eficiencia en la utilización del alimento.

En aquellos lotes en los que las diferencias de tamaño son apreciables, por lo
general los peces de mayor talla tienen mayor oportunidad de alimentarse
apropiadamente, generándose diferencias de tamaño.


Sobre el número de veces que es necesario aplicar el procedimiento en un ciclo
de cultivo existen opiniones diversas, desde la periodicidad mensual hasta las
consideraciones de que la selección no es un proceso del todo indispensable. No
obstante, la experiencia muestra la necesidad de entre tres y cinco clasificaciones
dentro del ciclo de producción. Debe tenerse en cuenta que se trata de un manejo
en el cual los peces se someten a unas fuertes condiciones de estrés, con
posibilidades de perdidas.

Por lo menos en alevinos se ha demostrado que una separación temprana permite
que los individuos menores, lleguen – manifestar tasa– de desarrollo que igualan a
las de los peces - del mismo lote - de mayor tamaño.

Sacrificio

La aceptación del pescado en el mercado depende en gran parte de los métodos
utilizados en el sacrificio. Es conveniente evitar señales de golpes, pérdidas de
escamas, deterioro en las aletas, etc. Entre más rápida y efectiva sea la muerte
del pez menores traumatismos presentará.

Entre los métodos de sacrificio más comunes se encuentran la muerte por asfixia

o el golpe en la base del cráneo. Aunque estos pueden ocasionar deterioros a
nivel externo afectando la calidad y presentación del producto.
La aplicación de corriente eléctrica en el agua es uno de los métodos más
efectivos que se utilizan en truchicultura de alta producción. Consiste en introducir
dos electrodos dentro del estanque y generar una corriente de 0.8 amperios/m2,
con lo que se obtiene la insensibilidad y muerte del animal.

Otro método eficiente es trasladar los peces a un pequeño estanque que contiene
agua, sal y hielo y dejarlos hasta que la temperatura se reduzca a 2ºC.; así se
provoca la insensibilización de la trucha y posteriormente se realiza el proceso de
evisceración.

Una vez se encuentren insensibilizados los peces, se procede a un primer lavado,
con lo que se retira el mucus; posteriormente se evisceran y se realiza un segundo
lavado. Según las exigencias del mercado, el producto tendrá las siguientes
presentaciones comerciales: deshuesado, entero, filete, y diferentes cortes como
la mariposa y el kipper.

El proceso de sacrificio debe efectuarse en un lugar adecuado con las mejores
condiciones sanitarias y donde se encuentren los elementos necesarios como
mesas, lavaderos, balanzas, cuchillos, guantes y un sistema de refrigeración y/o
congelación.


La sala de evisceración deberá ser construida alejada de los estanques y tener
especial cuidado en la disposición final de los desechos líquidos y sólidos
provenientes del proceso.

El Cultivo de Tilapia Roja (Oreochromis spp.) y Plateada (Oreochromis
niloticus)

Introducción

. Popularmente conocidas en Colombia como mojarra roja y mojarra
plateada.
. Pertenecen a la familia de los Cichlidae.
. Poseen cuerpo oblongo, con lateas dorsales largas que tienen entre 23 a
31 espinas y rayos (Hepher y Pruginin, 1988).
. Son originarias de África.
. La mojarra roja actualmente es una de las especies de peces de cultivo
más importantes en América Latina (Costa-Pierce y Doyle, 1997).
. Son peces de aguas cálidas tropicales con temperaturas entre 25 y 30 oC
Aspectos reproductivos

. Son muy prolíficas debido a que se pueden reproducir a edad temprana (3
a 6 meses) lo que implica condiciones de manejo adecuadas (Hepher y
Pruginin, 1988).
. Se ha estimado que una hembra de 200 g de peso vivo puede producir
aproximadamente 0.5 larvas viables por gramo de peso (Popma y Green,
1990).
. Son especies incubadoras bucales, es decir, que las hembras guardan sus
huevos fertilizados en su cavidad bucal y ésta característica hace que la
sobrevivencia de las larvas sea mayor, entre 85 y 90º%.
. El peso ideal de los reproductores en donde se alcanza el mayor pico de
producción se encuentra entre los 160 y 300 g (Espejo, 2001); a partir de
esta talla la motilidad espermática en el macho se ve fuertemente afectada
y en las hembras se presenta taponamiento del oviducto, lo que hace que
no puedan llevar a cabo su función de ovoposición.
. Reproductores con peso superior a los 300 g presentan inconvenientes de
manejo y de fisiología reproductiva, son más delicados para las faenas de
traslado, pesaje, muestreos y para el manejo en general.

. Debe existir un plantel permanente de reposición de reproductores
correspondiente al 25% del total de peces que se esté trabajando en
reproducción, en una talla de 150 a 200 g; este grupo debe alimentarse con
una ración que garantice un nivel superior al 30% de proteína con base en
un 2% de la biomasa de peces en el estanque.
Producción y selección de reproductores

. Los reproductores deben obtenerse de animales que no fueron sometidos a
reversión sexual y sobre estos se evalúan parámetros y se estima su
potencial como futuros reproductores mediante el registro de crecimiento,
conversión de alimento y sobrevivencia. Estos peces separados recibirán
una alimentación que mantenga la relación energía – proteína no inferior a
9.
Tabla No. 26 Niveles de proteína sugeridos para levante de reproductores

Peso–promedio (g) Porcentaje de Proteína
1 - 10 38
10 - 50 32
50 - 150 28
150 - 200 25

. Se sugiere una densidad de 2 animales por m2. Con base en la información
consignada en los registros, se seleccionarán los de mejores rendimientos
en los parámetros zootécnicos.
. Debe evitarse la mezcla con otras líneas de peces u otros orígenes y
oportunamente deben separarse por sexo una vez lo permita la
diferenciación de sus papilas.
Producción de alevinos

. Es relativamente fácil la producción comercial de alevinos de tilapia por las
razones ya expuestas.
. Con alevinos de 15 g de este peso se puede garantizar una buena
supervivencia en las siguientes etapas, se obtiene el tamaño adecuado
para diferenciar el sexo y además es posible revisar la eficiencia del
proceso de reversión sexual.

. Fácil reversión sexual, entendida como el proceso de producción de
poblaciones de un solo sexo (machos) por medio del uso de hormonas,
para continuar con la etapa de pre-engorde.
. Los reproductores deben estar en estanques en tierra de máximo 1.5 m de
profundidad y estanques con áreas de inferiores a 500 m2.
F 51 - Nidos de tilapias en estanques en tierra

. La densidad recomendada para reproductores es de 3 a 5 animales por m2, en
una relación de 3 hembras por cada macho.
. Comienzan a reproducirse a los 4 meses de edad y tienen alrededor de 5 a 8
reproducciones en el año. Los mejores resultados se obtiene con
reproductores cuyo peso es superior a los 120 g; sin embargo esto depende de
la temperatura y la densidad de siembra. Lo ideal es que exista homogeneidad
en el peso de machos y hembras.
. Se considera una mortalidad normal en reproductores del 10 al 15% dada la
permanente manipulación de los ejemplares.
. Previo a la siembra de los reproductores para el inicio de cada ciclo, el
estanque debe prepararse y desinfectarse con cal viva, posteriormente se debe
fertilizar con abono orgánico, químico o una mezcla de los dos.

. En tilapia la cantidad de alevinos efectivos por hembra varía según el tamaño
de estas, pero se mantiene en un rango de 30 a 50 individuos por postura. Sin
embargo, la literatura reporte producciones más altas y algunos técnicos
aplican la fórmula citada por Jensen (1979), la cual dice que: “la longitud de la
hembra al cuadrado es igual al número de alevinos que es capaz de producir”.
Al respecto existen muchas posiciones, algunas controversiales.
. Después de 10 días de sembrados los reproductores en los estanques, se
pueden colectar las larvas en las orillas por cuanto toman de allí gran cantidad
de alimento como fitoplancton y zooplancton.
. El número total de larvas cosechadas aumenta al incrementar la frecuencia de
recolección, si se siembran 5000 reproductores/ha, y se recolecta cada 7 días
la cosecha será de 104100 (más o menos 17644), pero si la cosecha se lleva a
cabo cada 25 días la recolección es de 49000 (más o menos 9037) (Green et
al, 2000).
. Las larvas de beben ser pasadas por tamices para lograr que solo las de
menos de 10 mm sean las que pasen por la malla y las que logren pasar son
sometidas al tratamiento de reversión sexual con la hormona andrógena,
debido a que hasta este tamaño los peces están indiferenciados sexualmente y
por consiguiente el andrógeno podrá actuar sobre las células sexuales
induciendo a éstas a la masculinización.
F 52- Conteo de alevinos mediante volumetría F 53- Inyección de oxígeno para transporte de
Alevinos.

. En la producción de alevinos de tilapia se busca obtener una población
monosexo machos, ya que los machos son los que presentan mayor
crecimiento, mejor conformación corporal y mayor rendimiento en canal.

F 54 – Protección con mallas antidepredadores

Obtención de poblaciones monosexo

Se puede lograr mediante los siguientes métodos:

¾ Sexaje manual

Solo se puede lograr en animales con talla superior a los 10 cm de longitud
cuando se ha logrado el desarrollo de características externas en sus órganos. Se
basa en la diferenciación de sus papilas genitales, las cuales se resaltan mediante
la aplicación de colorantes sobre ellas (azul de metileno, verde de malaquita o
tinta china), aplicados con un hisopo de algodón. La efectividad del método
depende de la destreza del operario.

¾ Hibridación

Consiste en el cruce de dos especies diferentes afines etológica y genéticamente,
con el fin de obtener individuos monosexo y un mejoramiento en sus
características fenotípicas. Para esto se requiere contar con cepas absolutamente
puras de las dos especies seleccionadas.

El cruce más usado en tilapicultura es el de machos de Oreochromis aureus por
hembras de Oreochromis niloticus, que garantiza una descendencia 100% de
machos de excelentes condiciones y características, resistente a bajas
temperaturas, buen rendimiento en filete y acelerado crecimiento (Buddle, 1984).


Tabla No. 27 Composición genética de algunas especies del género Oreochromis

Especie Hembras Machos
Oreochromis mossambicus XX XY
Oreochromis niloticus XX XY Hembras
Homogaméticas
Oreochromis aureus WZ ZZ
Oreochromis urolepis hornorum WZ ZZ Machos
Homogaméticas

Para la determinación del número de reproductores a utilizar para conseguir la
cantidad de alevinos híbridos necesarios es importante saber que en este proceso
la producción de alevinos disminuye en por lo menos un 50% comparándolo con
un cruce intraespecífico (entre miembros de la misma especie).

Al mantener los reproductores es importante contar como mínimo con dos líneas
genéticas, con el fin de tener siempre buena calidad y cantidad de reproducciones,
ya que al tener sólo una, los sucesivos cruces entre hermanos terminarán por
separar los parentales y se perderán las características adquiridas durante los
cruces iniciales.

En un comienzo se creyó que los primeros ejemplares de tilapia roja aparecieron
debido al cruce de animales albinos de Oreochromis mossambicus por
Oreochromis niloticus; sin embargo, esto no se confirmó hasta que estudios
hechos en la universidad de Sterling y Swansea, determinaron que se trataba de
mutantes de color, principalmente de O. niloticus y O. mossambicus en
poblaciones naturales puras (Tave, 1991).

En la actualidad se utilizan reproductores híbridos rojos (dihíbridos, trihíbridos o
tetrahíbridos) de las especies ya citadas, donde cada una de ellas aporta una
característica deseable para el individuo.

Es recomendable cubrir con malla los estanques para evitar que las aves
predadoras puedan eventualmente mezclar grupos de peces reproductores, al
soltarlos luego de su captura sobre otros estanques.

A finales de la década del noventa se introdujo al país la línea denominada Stirling
que consiste en la especie O. niloticus, pero es de color rojo.


¾ Reversión sexual

. Consiste en la utilización de hormonas masculinas (17 alfa metil
testosterona) durante el primer mes de vida del animal, una vez
reabsorbido el saco vitelino.
. La cantidad de hormona a utilizar varía de acuerdo con el
tratamiento, para su incorporación al alimento concentrado
pulverizado de alto valor proteico (45%) esta se disuelve en etanol al
95% y se mezcla en una proporción de 1 litro de solución por cada
Kg de concentrado.
. La mezcla de hormona-etanol-concentrado se seca en un horno a 60
oC durante una hora o se seca a la sombra. Algunos autores
aconsejan por cada kilogramo de alimento, adicionar los siguientes
ingredientes: complejo vitamínico 15 ml; aceite de hígado de bacalao
30 ml; aceite de cocina 30 ml y terramicina 1,4 g.
. El alimento preparado con la hormona se suministra a las larvas por
lo menos 12 veces al día y sobre la base del 10% de la biomasa,
este tratamiento se debe llevar a cabo en estanques de tierra
pequeños, no más de 400 m2 o en jaulas pequeñas de ojo de malla
mosquitero que se ubican en un estanque a poca profundidad, no
superior a 40 cm, o en canaletas de 2 m de largo por 40 cm de
ancho.
. El tratamiento de reversión debe durar entre 21 y 28 días. En este
período es frecuente observar la presencia de afecciones por el
protozoario Trichodina, que producen no solo epizootias entre los
peces de agua dulce sino que son los más frecuentes en los peces
de aguas marinas (Roberts, 1981).
Reversión sexual en jaulas

. Se usa angeo plástico o de PVC de 1 mm de ojo rígido, que no permita
deformaciones ni ampliaciones del ojo de malla con la limpieza.
. El tamaño de la jaula recomendado debe ser hasta de 3 m2 de área por 1
m de profundidad, con una estructura flotante que puede ser de tubos de
PVC de 1.5 pulgadas, que le sirve además de marco.
. Deben situarse en un estanque no muy abonado que presente un recambio
constante de agua del fondo, con el fin de que exista una corriente de agua

que oxigene permanentemente las jaulas; estas deben quedar ancladas y
estar cubiertas para evitar la predación por aves.

. Las mallas deben limpiarse periódicamente de las algas que se fijan con el
fin de mantener abierto el ojo de estas, permitiendo una libre circulación del
agua.
. Se pueden trabajar densidades de 500 a 3000 alevinos por m3 o más.
. La cantidad de hormona a utilizar puede ser de 60 mg/kg de alimento,
lográndose un porcentaje de reversión del 80 al 95%, dependiendo de los
cuidados en la preparación del alimento, el suministro y el acceso a otras
fuentes de alimento como los de origen natural.
Reversión sexual en estanques de cemento

. La reversión es más eficiente debido a que existe más control sobre la
población.
. Se presenta un mayor riesgo de mortalidades masivas por infestación de
hongos, bacterias y ciliados. Por esto debe hacerse limpieza diaria, el retiro
de restos de comida y si es posible el traslado periódico de la población a
otro estanque limpio y desinfectado. Las mortalidades comienzan a
presentarse entre el día 12 y 14 del tratamiento, especialmente en
estanques que no fueron desinfectados previamente.
. Se pueden trabajar densidades de siembra entre 500 y 2000 alevinos por
3

m.
. Se recomienda trabajar con una dosis hormonal de 30 a 45 mg/kg de
alimento, con lo cual se logra un porcentaje de reversión del 93 al 97%.
Reversión sexual en canaletas

. Es un sistema eficiente pero de menor capacidad que el anterior. Se puede
trabajar con densidades de 500 a 3700 alevinos por m3.
. Se pueden lograr conversiones del 95 al 97% con alimento preparado en
una proporción de 30 a 45 mg/Kg de hormona.
. Su desventaja está representada en los altos costos de la infraestructura
física requerida.

La Reversión Sexual de Tilapia en Estanques en Tierra

. Alcanza una alta supervivencia.
. Demanda poca de mano de obra y bajo costo de instalación.
. Las densidades de siembra son menores que en los sistemas anteriores.
(200 a 500 alevinos por m2).
. Se obtienen menores porcentajes de reversión en razón a que las larvas
consumen alimento del medio natural por lo que es necesario aumentar la
cantidad y la frecuencia de suministro de alimento.
. La reversión puede estar entre el 75 y el 95%, según el manejo. Se utilizan
dosis más altas de hormona, del orden de 60 a 100 mg/kg, para compensar
los problemas antes mencionados.
El éxito de los tratamientos de reversión sexual está condicionado a los siguientes
factores:

. El tiempo de ingestión de la hormona (21 a 30 días).
. La talla inicial del tratamiento (9 a 11 mm).
. Adecuado suministro de alimento en cuanto a la calidad, cantidad y
frecuencia (mientras mayor sean l–s veces de suministro mejor).
F 55 - Hapas para reversión sexual F 56 -Suministro de alimento para reversión
Sexual.


Consiste en el suministro de alimento preparado con hormonas masculinas a las
larvas de tilapia antes de la diferenciación de las células gonadales primarias en
tejido ovárico. El suministro de hormonas puede ser suspendido cuando los testes
se han desarrollado lo suficiente para mantener niveles normales de hormona
endógena.

La reversión sexual puede practicarse en tilapia a escala comercial utilizando
hapas (jaulas de malla fina) colocadas en estanques con plancton natural
abundante, con excelentes resultados.

La técnica reproducción de larvas para reversión sexual está basada en las
siguientes consideraciones generales:

¾ Es indispensable iniciar la reversión sexual de tilapia antes que el tejido
gonadal de las hembras genotípicas jóvenes se haya diferenciado en
ovarios.

¾ La producción de larvas tiene que estar coordinada con la reversión sexual
en razón de que el tratamiento hormonal debe comenzar inmediatamente
después de la cosecha de larvas y la infraestructura no estará disponible
sino 25 a 30 días después.

Insumos requeridos

¾ Estanque de tierra de 500 a 2000 m2

¾ Fuente de agua con condiciones físico químicas apropiadas.

¾ Malla de nylon de ojo cuadrado (13 a 20 mm).

¾ Nasa manual de malla fina (1.6 mm o 1/16 de pulgada).

¾ Rejillas de malla fina para vaciamiento del estanque.

¾ Hapa o jaula para guardar temporalmente los reproductores, entre ciclos.
Capacidad de 100 Kg de peces por cada 3 ó 4 m2

¾ Reproductores: 70 a 100 kilogramos para producir 50.000 larvas por ciclo.
Relación de 1.5- 2 hembras por cada macho.

¾ Alimento suplementario: de 40 a 50 kilogramos para cada 100 kilogramos
de reproductores por ciclo.

¾ Clasificadora de peces por tamaños.


¾ Necesidad de mano de obra por ciclo.

Procedimiento:

o Verificar que la fuente de agua tenga una temperatura entre 22 y 32 °C y
una salinidad inferior a 10 partes por mil.
o Eliminar totalmente los peces antes de llenar el estanque. Esto se logra
secando el estanque, o bien aplicando rotenona o cloro granular del
utilizado para mantenimiento de piscinas, disuelto en agua. Aplicar 10 a 20
gramos por metro cúbico. Se puede repetir el tratamiento en caso de ser
necesario.
o Cubrir la fosa de cosecha con la malla de nylon de ojo grande. Llenar el
estanque con agua hasta una profundidad de 50 a 80 cm.
o De ser necesario, filtre el agua para evitar que entren peces no deseados.
o Sembrar todos los reproductores el mismo día, tan pronto como el estanque
se haya llenado. Para producir 50.000 larvas de tamaño apropiado para
reversión sexual, deben sembrarse entre 35 y 55 kilogramos de hembras
maduras y machos suficientes para que la relación entre sexos sea de 1
macho por cada 1.5 a 2 hembras. Para ajustar esta biomasa en forma
segura y eficiente, el área del estanque debe ser de 500 a 1000 m2.
o Manejar apropiadamente el periodo de desove y larvaje inicial. Se
recomienda dar alimento suplementario pero sin exceder la cantidad (1% de
la biomasa). Si el alimento es de calidad inferior resulta conveniente
aumentar la proporción a 2-3% de la biomasa.
o Vaciar el estanque entre 13 y 23 días después de haber sembrado los
reproductores, aunque el factor determinante es la temperatura del agua, se
sugiere lo siguiente:
TEMPERATURA PROMEDIO DURACIÓN DEL CICLO
Inferior a 25 °C 20 a 23 días
25 a 28 °C 19 a 21 días
Superior a 28 °C 14 a 18 días


Para la realización de la cosecha de larvas se deben tener en cuenta los
siguientes factores:

. El estanque debe vaciarse lentamente a fin de evitar la pérdida excesiva de
larvas que quedan en el fondo.

. La operación debe realizarse temprano en la mañana para evitar que el
calor creciente afecte la supervivencia de las larvas.

. Los niveles de oxígeno del agua deben estar por encima de 4 ppm.

. Durante en vaciamiento debe filtrarse el agua con una malla fina (angeo
mosquitero) para evitar la pérdida de larvas. Tenga en cuenta la siguiente
tabla:

DETALLE Área Estanque
500 m2
Área Estanque
2000 m2
Tamaño máximo ojo de malla 1.6 mm 1.6 mm
Área del filtro (m2) 0.5 - 0.8 1 - 1.5
Tiempo de vaciado (horas) 5 -10 10 -15

. Después de vaciar el estanque dejando agua únicamente en la fosa de
cosecha, se deben sacar los reproductores levantando la malla de ojo
grande del fondo de la fosa.

. Proceder seguidamente con el retiro de las larvas de la fosa de cosecha,
poco tiempo después de sacar los reproductores. La mayor parte de las
larvas ascienden pronto a la superficie si no son molestadas, momento en
que deben sacarse con una nasa manual de 40 a 100 cm de ancho,
fabricada con angeo mosquitero.

. Pasar rápidamente las larvas a agua limpia; no se deben dejar fuera del
agua por más de 20 a 30 segundos.

. Retirar las larvas que quedan pegadas al reverso de la nasa de malla,
colocando esta dentro de un balde, en vez de empujarlas con los dedos o
sacudir la nasa.

. No dejar las larvas en el balde colector durante más de 10 minutos antes de
transferirlas a agua limpia y bien oxigenada. Se ha establecido que dos
operarios pueden cosechar de 50.000 a 100.000 larvas en una hora.

. Clasificar las larvas de inmediato, a fin de desechar las mayores de 14 mm.
Un material apropiado para el clasificador es el angeo metálico de 3.2 mm


(1/8 de pulgada). Las larvas del tamaño indicado atraviesan la malla y
sirven para reversión sexual, mientras que las de mayor tamaño
permanecen en el clasificador y son desechadas.

. Bajo estas condiciones de manejo, el promedio de resultados por ciclo de
desove de 50 kilogramos de hembras (mas un macho por cada 1.5 a 2
hembras) en 500 a 1000 m2 de área de estanque es:

CANTIDAD TOTAL DE LARVAS
COSECHADAS 60.000 a 80.000
Larvas de tamaño requerido 14 mm o menos
Porcentaje del total 60 % al 100 %
Cantidad total 40.000 a 60.000
Mortalidad por manipulación o cosecha 5 al 15 %

Tipos de cultivo de Tilapia en Colombia

Cultivo en jaulas

. Utilizado en cultivos superintensivos manejando densidades de hasta 400
peces por m3 con peso final de 300 g.
. Se usan jaulas de diversos tamaños, cuyas medidas para el caso de las
jaulas pequeñas son de 1.5 m de ancho, 1.5 m de largo y 1 m de altura
para un volumen de 2,25 m3, en donde se siembran hasta 1000 peces de
15 g cada uno. Estas jaulas deben tener por lo menos cinco recambios de
agua por minuto, por eso la importancia de la ubicación estratégica de la
jaula para lograr este fin.
. La distancia mínima entre jaulas debe ser de 3 metros, para garantizar el
recambio dentro de la unidad de producción.
. El fondo de las jaulas debe estar a una buena distancia del fondo del
cuerpo de agua, con el fin de poder obtener una buena dispersión de los
desechos metabólicos y los desperdicios de alimento.
. Este sistema de explotación es usado en represas de generación eléctrica
o en reservas de agua para el riego agrícola y requiere un programa
permanente de limpieza de fondos (en los reservorios) y de recambios de
agua del fondo de los mismos, sólo así se podrá movilizar los metabolitos
producidos por los peces.

. En este modelo se adquieren mejores ganancias diarias, del orden de hasta
4 g diarios, esto debido fundamentalmente a que en el confinamiento del
pez el gasto energético y de proteínas se hace menor, lo que trae mayores
rendimientos zootécnicos.
Tabla No. 28 Parámetros de producción de Tilapia en jaulas
Piraquive y Vélez, 2000

Tiempo de cultivo 91 días
Número inicial de peces por jaula 650
Supervivencia 82 %
Peso inicial 60 g
Peso final 350 g
Ganancia de peso 290 g
Ganancia individual de peso 3.18 g/día
Biomasa inicial por jaula 39.12
Biomasa inicial Kg/m3 13.48
Biomasa final por jaula 187.45
Biomasa final Kg/m3 64.63
Aumento biomasa jaula (Kg) 148.33
Aumento biomasa Kg/m3 51.14
Consumo de alimento en Kg 327.15
Conversión alimenticia 2.21

¾ Producción en canales de cemento o en tierra

. Corresponde a canales a veces revestidas sus paredes en cemento para
evitar su deterioro por la acción de la corriente.
. La movilización del agua puede ser del orden de 8 a 12 m3 por segundo.
. Los estanques tienen áreas comprendidas entre 100 y 1000 m2.
. Los alevinos son sembrados de 50 g y allí se tienen hasta alcanzar el peso
comercial exigido.
. En la primera etapa los peces son sembrados a densidades de 300
alevinos por m2 y después de 4 ó 5 meses, cuando los animales han
alcanzado los 300 g, la densidad desciende a 100 peces por m2 (Berman,
1991).

F 57 y 58 Canaletas en cemento con tilapia roja


Tabla No.29 Parámetros de producción de tilapia en canales
Berman 1997


Fase Peso
g
Ganancia
g/día
Días
/
fase
Densidad
M2
Mortalidad
%
Proteína
%
ICA Alimento/
%Biomasa
Alevinaje 1-50 0.2-0.4 130 30-40 35 1.5 10-5
Engorde
1
50300
1.5-1.7 140 150-300 5-15 30 1.7 5-2
Engorde
2
300900
3.5-3.9 145 80-125 1-5 30 1.9 2-1

¾ Producción en estanques en tierra

Los taludes en tierra deben conservar una pendiente de 3:1, para garantizar que
las paredes del estanque no se deterioren cuando el macho realice el nido para la
ovoposición de la hembra.

171



F 59 y 60- Estanques en tierra

Modelos de piscicultura semi-intensiva

Se usa una densidad de siembra de 10 a 15 peces por m2, con un peso de
siembra de 5 a 10 g, con recambio permanente de agua entre 10 y 50 l/s.


F 61 y 62- Producción en jaulas flotantes

Parámetro Unidades
Densidad de siembra 12 peces/m2
Peso promedio de siembra 10 g
Mortalidad 20 %


Duración del ciclo 210 días
Peso promedio de cosecha 357 g
Ganancia promedio día 1.7 g
Conversión alimenticia 1.8

Tabla No. 30 Parámetros de producción de tilapia en estanques en tierra

FASES DEL CULTIVO DE TILAPIA

1. Levante
. Es el confinamiento de animales de 1 g o menos, a una densidad
máxima de 30 alevinos/m2 hasta alcanzar 15 g.
F 63 y 64 Estanques para reversión sexual

F 65 y 66 - Alevinos en levante


. Se requiere el abonamiento de las aguas para aumentar la producción
natural del estanque.
. La duración de esta fase varía entre 55 y 75 días, período requerido para
llegar a 20 g, dependiendo del manejo y la temperatura.
. En cultivos superintensivos el levante se hace a densidades de 50 a 100
peces por m2, según la disponibilidad de flujo de agua constante,
empezando con alevinos de 1 g hasta los 15 ó 20 g. En estas condiciones
de cultivo el levante puede durar 45 días y es necesario suministrarles
alimento de alto contenido proteico, con el fin de suplir la falta de alimento
del medio natural.
. Se puede presentar una mortalidad entre el 15 y 30%.
Rango de peso
g
Cantidad de alimento
Porcentaje de biomasa
1 - 10 8 %
10.1 - 15 5 %
15.1 - 20 4.5 %
20.1 - 30 4 %

Tabla No. 31 Cantidad de alimento a suministrar según el peso y biomasa

2. Pre-engorde
. Se realiza a una densidad de 12 alevinos/m2, antes de pasarlos a los
estanques de engorde.
. En esta etapa se levantan los animales de 20 g a 150 g de peso vivo con la
siguiente guía de alimentación:
Rango de peso
g
Cantidad de alimento
Porcentaje de biomasa
20 - 50 4 %
51 - 150 3.5 %

Tabla No.32 Cantidad de alimento a suministrar según el peso y biomasa

. En esta etapa la conversión puede llegar a 1.5:1;
. El tiempo de cultivo se prolonga a 3.5 meses, dependiendo de la
productividad del agua, la temperatura, el tipo y calidad del alimento.

. En cultivos superintensivos, el pre-engorde se realiza con 25-40 peces/m2 a
partir de los 12 g hasta los 120 g en un período de 4 meses,
aproximadamente.
. Finalmente, de los 120 g hasta los 300 g en 3.5 meses, a una densidad de
10 a 20 peces por m2. Aquí la conversión puede ascender hasta 1.8:1.
. En el levante y pre-engorde de los cultivos intensivos se puede alimentar 4
veces al día (6 A.M, 11 A.M, 2 P.M y 5 P.M) mientras que en los
superintensivos, la frecuencia puede ir hasta 6 a 8 veces al día.
3. Engorde
. Se trabajan densidades de 1.5 y 5 animales/m2, dependiendo de la
disponibilidad de agua para hacer recambios y el tipo de alimento.
. Se tienen conversiones de 1,4-2:1.
. La duración de la etapa va desde los 150 g de pre-engorde hasta el
tamaño final de 350 g para la venta, puede estar entre 2 y 3.5 meses.
Tabla No. 33 Cantidad de alimento a suministrar según el peso y biomasa

Rango de peso
g
Cantidad de alimento
Porcentaje de biomasa
150 - 280 3 %
280 - 350 2.8%
350 - 500 2.2
500 - 600 1.7
600 - 750 1.4

. Si las condiciones exigen dejar los animales en el estanque unos días antes
del sacrificio se les suministrará alimento a razón del 1% de la biomasa por
día para evitar la pérdida de peso.
. En los cultivos superintensivos la última etapa o de engorde consiste en
llevar los animales desde los 300 hasta los 500 g o más, según los
intereses del productor y la finalidad del cultivo, bien sea producción de
filetes, eviscerado, etc. Se pueden mantener a una densidad de 15 a 25
animales/m2. La conversión puede llegar a 1.8-2:1 o menos, dependiendo
de los factores ya descritos.

Policultivos

. Los mejores resultados de policultivo de mojarra roja se han logrado con
las siguientes especies: la cachama blanca (Piaractus brachypomus), la
carpa espejo (Cyprinus carpio) y el camarón de agua dulce (Macrobrachium
rosembergii); a densidades de cachama 0.5 peces/m2; mojarra 1/m2; carpa
1/15m2 y camarón 2/m2.
. Con buena productividad del agua se puede esperar a los seis meses de
cultivo una producción por encima de las 18 ton/ha/año, con conversiones
alimenticias del orden del 1,2:1 (Torres, 1989).
Manejo de estanques

. Luego de cada cosecha, los estanques deben ser desinfectados con cal
viva (CaO) al voleo, teniendo especial cuidado en aplicar sobre los charcos
presentes. Esta práctica es determinante, especialmente cuando por alguna
circunstancia hubo reproducción en ellos.
. Periódicamente se debe evaluar los parámetros físicoquímicos del agua.
. Por ningún motivo debe existir contaminación con pesticidas en el agua
utilizada.
. Procurar concentraciones de oxígeno disuelto superiores a 6 ppm,
especialmente durante la noche.
. Cuando la alcalinidad del agua de un estanque está por debajo de 20 ppm,
es necesario aplicar cal agrícola (CaCO3), en una proporción de 2000 a
3000 Kg/ha. Generalmente solo se necesita una aplicación al año para
aumentar la alcalinidad y la productividad de un estanque. La cal agrícola o
dolomítica se aplica con el estanque semihúmedo, posteriormente se deja
secar durante 3 ó 4 días y a continuación de puede llenar.
. El abonamiento asegura el incremento de la productividad natural del agua
(algas y animales microscópicos) y por lo tanto el crecimiento de lo peces
en sus primeras fases. Los abonos orgánicos se pueden emplear en las
siguientes dosis:
Tipo de Abono Dosis
Porquinaza 60g/m2/semana
Gallinaza 17g/m2/semana


Bovinaza 70g/m2/semana
Las dosis de abonos químicos recomendadas son:

Tipo de abono Dosis
10:30:10 1.5 – 2.25 g/m2/semana
Urea 1.5 – 2 g/m2/semana
Superfosfato 1.25 – 1.5 g/m2/semana
11:53:00 1.3 g/m2/semana
18:46:00 1.5 g/m2/semana

Para la aplicación de abonos es mejor diluirlos en agua, tanto orgánico s como
químicos y seguidamente regarlos por las orillas de los estanques, para su
incorporación.

Cosecha

. Para la cosecha total se debe bajar el nivel del agua del estanque a 1/3.
. Hacer dos o tres arrastres con la red para sacar la mayoría de la población.
. Seguidamente se desocupa totalmente el estanque para pescar el faltante.
. De esta forma se agiliza la cosecha y se permite recuperar la mayoría del
pescado sin barro y con menor estrés.
F 67 - Cosecha de Tilapia roja

Manejo poscosecha


F 68- Planta de tratamiento de aguas para el procesamiento postcosecha

. Luego de la captura de los peces debe evitarse golpear, maltratar, pisar o
dejar los animales en seco y menos en el sol, pues, los procesos de
descomposición inician por los sitios traumatizados.
. Deben mantenerse en agua de buena calidad y cantidad hasta su sacrificio
en un lugar limpio.
. El pescado se insensibiliza en agua con hielo y se procede a eviscerar
inmediatamente, eliminando branquias, vejiga natatoria, riñones y cualquier
residuo de sangre.
. Se puede comercializar entero, sin cabeza o en postas y debe mantenerse
en agua con hielo para bajarle la temperatura antes de enhielarlo o
refrigerarlo.
. Una relación de una parte de hielo por cada tres partes de pescado es
adecuada para mantener su buena calidad. Al almacenar el pescado en
cavas debemos colocar una capa de hielo en el fondo de 5 cm de espesor,
encima una capa de pescado, metiéndole hielo en el abdomen a los
pescados, evitando el contacto de uno con otro o con las paredes de la
cava; seguir alternando capas de hielo de 5 cm y cerrando lo mejor posible
para la conservación de la temperatura.

F 69- Llegada de peces a la planta de sacrificio F 70- Descamadora

. El uso del hielo tiene las ventajas de conservar la humedad del pescado,
es económico, fácil de transportar y solo se necesita una cava que puede
ser de icopor, fibra o lámina. El hielo debe usarse en trozos pequeños.
Nunca picar el hielo sobre el pescado.
. En la cava no se deben poner muchas capas de pescado porque el peso
puede dañar el producto del fondo.
. La cava debe tener un orificio de desagüe que permita la salida del agua
residual.
. El pescado se debe voltear cada dos o tres horas.
F 71 y 72-Cuartos fríos de conservación

179



F 73 y 74 Planta de sacrificio


F- 75 y 76 Selección y empaque

Salado

. Es una técnica muy antigua cuyo fundamento es la deshidratación del
pescado y el retardo de la acción y reproducción bacteriana.
. Se debe usar sal blanca de buena calidad, libre de impurezas. No usar
sales mineralizadas para nutrición animal.
. Al pescado hay que realizarle cortes transversales para garantizar la
penetración de la sal en la carne.
180



. Los filetes se deben sumergir en salmuera (1 lb. de sal / 15 L de agua/ 8
Kg de pescado) durante 15 a 30 minutos, agitando cada 5 minutos para
facilitar la eliminación de la sangre y la baba (desangrado).
. El salado se puede hacer en pila seca, en pila húmeda o en salmuera
concentrada.
. En el método de pila seca (más eficiente), se emplean 4 a 5 kilogramos de
sal por cada 10 kilogramos de pescado. En un recipiente plástico
colocamos una capa de sal sobre el fondo que lo cubra todo, sobre esta
capa se coloca el pescado con la piel hacia abajo, sobre este se aplica sal
hasta cubrirlo totalmente y así sucesivamente hasta llenar una pila de un
metro de altura. En la última capa la piel de pescado irá con la piel hacia
arriba. Finalmente se cubre toda la pila con sal más gruesa y una lona o
tela o material similar para evitar la contaminación. La parte central de la
pila debe quedar más elevada que sus lados para facilitar el escurrido del
agua que contiene el pescado por los drenajes del recipiente. Para mejorar
la salazón se puede dar vuelta a la pila cada 24 horas, invirtiendo las capas
del pescado y aplicando más sal si es necesario. También es recomendable
colocar peso sobre la pila para aumentar la presión y lograr la mayor
eliminación del agua. Este proceso dura entre 48 y 72 horas.
. Una vez terminado el salado se lava para eliminar impurezas, exceso de sal
y mejorar su presentación.
. Para el secado se debe proteger de las moscas mediante la utilización de
anjeos. El aire debe circular por encima y por debajo del pescado. En clima
cálido es preferible secar a la sombra para evitar el tostado de la parte más
externa. Evitar que el producto se humedezca por lluvias repentinas. Se
debe voltear el producto al menos cada dos horas durante los primeros dos
días. El pescado seco se debe envolver en papel grueso, cuidando que el
aire no entre en contacto con el producto.
Ahumado o Moqueado.

. Consiste en la conservación del pescado utilizando el humo.
. Se utilizan hornos de fácil construcción y muy eficientes funcionalmente.
. Se usan maderas de la región.
. Da un sabor característico al pescado haciéndolo atractivo a nivel
comercial.

EL CULTIVO DEL BOCACHICO (Prochilodus magdalenae)

El bocachico es un organismo de fácil manejo, se adapta al proceso de cultivo,
requiere de una infraestructura que no es muy costosa y se acopla perfectamente
al cultivo con otros peces.

Nombres comunes: bocachico, bocachica, chere, chico de boca, pescado blanco.

Características anatómicas

Pez de cuerpo alargado, grueso, boca muy pequeña en forma de embudo con
dientes débiles en los labios, ojos grandes, presentan escamas grandes y
ásperas, con una espina eréctil delante de la aleta dorsal.

El dorso es grisáceo, los labios plateados y el vientre rosado; la cola es oscura en
la mitad y rojiza en los extremos, los extremos de las aletas pectorales, pélvica y
anal también son rojizos; la aleta dorsal tiene pequeñas manchas. Puede alcanzar
una longitud de 40 cm.

Comportamiento natural

El bocachico migra en la época de “subienda”, desplazándose desde las ciénegas
localizadas en las zonas medias y bajas de la cuenca, hacia las partes altas del río
para reproducirse allí; durante esta migración las gónadas alcanzan la
maduración.

Este tipo de comportamiento es anual; aguas arriba al final de la temporada de
lluvias, aguas abajo al principio de las lluvias.

Alimentación

El bocachico es un pez micrófago que toma su alimento principalmente del fondo
de los estanques en donde consume diatomeas, otras microalgas y detritos. La
hora de alimentación mas frecuente ocurre en la mañana entre las 8 y 10 a.m.

Las postlarvas se alimentan principalmente de algas y microcrustáceos.

Reproducción natural

La madurez sexual se alcanza por los machos aproximadamente al año de edad
mientras las hembras maduran al año y medio.


El desove ocurre durante la época de “bajanza” en los meses de abril a junio,
siendo llamada “candelada” por los pescadores. Este fenómeno coincide con las
primeras lluvias cuando el río vuelve a crecer y retoma sus zonas de inundación.

Los huevos son semiflotantes, por lo tanto se dispersan en el agua y no existe
cuidado parental sobre ellos. Son redondeados, traslúcidos, con un diámetro
promedio de 0.77mm sin hidratar y de 1.5 a 2 mm una vez hidratados cuando
toman un color ámbar. El promedio de fecundidad es de aproximadamente

150.000 ovas por hembra.
En condiciones de cautiverio este pez no se reproduce, por lo tanto se requiere la
inducción hormonal para lograr su reproducción, inyectadas las hormonas a los
reproductores.

Manejo en cautiverio

La cría de esta especie da buenos resultados en monocultivo con rendimientos
hasta de 4.7 toneladas por hectárea por año en estanques con buena fertilización
y una densidad de 1 pez por metro cuadrado de estanque. En policultivo con
tilapia roja (Oreochromis spp), cachama blanca (Piaractus brachypomus) y
cachama negra (Colossoma macropomun) también se han obtenido buenos
resultados.

Reproductores

Hay tres formas de obtener los padrotes: por captura del medio natural, levantada
en el mismo criadero y obtenida de otros criaderos.

En el primer caso, la captura debe realizarse con personal calificado, evitando al
máximo el maltrato de los ejemplares transportándolos lo más rápido posible para
evitar el estrés. Una vez en el cultivo se someten a un tratamiento profiláctico con
sustancias yodadas y desinfectantes tópicos.

Si el reproductor se encuentra en estado de madurez sexual óptimo se puede
proceder a la inducción hormonal, aún cuando se corren varios riesgos de muerte
en dicho proceso.

Los estanques ideales para el mantenimiento de los reproductores deben tener
una profundidad media de 1.5 metros y un área mínima de 5.000 metros
cuadrados. Cuando los ejemplares provienen del río, el periodo de aclimatación
oscila entre 6 meses y 1 año.

Instalaciones

Sala de manejo


Es el lugar en el cual se llevan a cabo las diversas labores de manipulación de los
animales. Corresponde a piletas de forma circular con un diámetro mínimo de 4
metros y 1 metro de profundidad. Deben contar con paredes perfectamente lisas y
pintura especial para evitar el maltrato de los animales. También pueden ir
cubiertas de porcelana. Esta sala debe contar con techo y paredes aisladoras.

Sala de incubación

Es el lugar donde se lleva a cabo el proceso de desarrollo larval. Corresponde a
incubadoras de flujo ascendente, tipo woynarovich de 60 y 200 litros de capacidad,
cada una con un sistema que permita regular el flujo de agua. En la parte superior
de las incubadoras se coloca un filtro de malla para evitar el escape de huevos o
larvas.

Sala de larvicultura

Es el lugar destinado para el levante de larvas y postlarvas. Debe ser cubierto
para evitar la luz directa del sol sobre las piletas las cuales deben tener un
diámetro de 4 a 5 metros y una profundidad de 0.5 metros, con adecuados
sistemas de entrada y salida de agua, filtros para permitir el recambio de agua y
aireación.

Sala de producción de plancton y Artemia salina:

Es el lugar habilitado para la producción del fitoplancton y zooplancton para la
alimentación de las postlarvas; también debe contar con incubadoras de flujo
ascendente traslúcidas para realizar la incubación de la Artemia salina.

Proceso de reproducción

Como ya se anotó en condiciones de cautiverio el bocachico no se reproduce, por
lo tanto, se debe recurrir al proceso de reproducción inducida mediante la
inyección de hormonas a los reproductores.

Se han realizado diversos ensayos aplicando gonadotropina coriónica humana
(HCG) y extracto de pituitaria de carpa (Cyprinus carpio) (EPC) en forma
independiente o mezcladas y se han logrado buenos resultados en reproducción.

Selección de reproductores

Aunque el bocachico no presenta dimorfismo sexual, las hembras generalmente
son mas grandes que los machos y durante la época de reproducción presentan el
abdomen abultado, así como la papila genital enrojecida y en algunos casos
protuberante. El dimorfismo sexual sólo se observa claramente cuando los


animales están maduros o listos para su reproducción. Los machos son de menor
tamaño y su selección se hace de acuerdo a sus características externas y a un
chequeo consistente en realizar una leve presión abdominal para la emisión de
gotas de semen. Normalmente producen un sonido similar a un ronquido.

A las hembras aptas para la reproducción se les practica una biopsia ovárica la
cual consiste en la introducción de una cánula por el poro genital, succionando
una muestra de ovocitos la cual se preserva en una solución fijadora para su
análisis minucioso.

La solución fijadora se prepara de la siguiente forma:

¾ Agua destilada : 1 L

¾ Cloruro de Sodio : 6 g

¾ Formol al 40% : 1 ml

Una vez colocados los ovocitos en una caja de Petri con solución fijadora se
agrega solución de Serra durante unos 5 minutos y se observan al microscopio.
Esta solución se prepara de la siguiente manera:

¾ Etanol al 96% : 60 ml

¾ Formol al 40% : 30 ml

¾ Ácido acético glacial: 10 ml

Con la observación de los ovocitos se determina el porcentaje de maduración de
los mismos teniendo en cuenta los núcleos en migración o excéntricos. Un 40% o
más de núcleos en migración indican que la hembra está en condiciones de ser
inducida.

Proceso de inducción

Una vez seleccionados los padrotes se llevan a la sala de manejo en una relación
de 2 machos por cada hembra. El transporte debe realizarse lo más rápido
posible evitando al máximo el maltrato de los animales. Allí se pesan y se
identifican para la respectiva dosificación. A las hembras se les aplican dos dosis
así:

¾ Primera dosis : 2 UI de HCG por gramo de peso vivo.
¾ Segunda dosis : 3 UI de HCG por gramo de peso vivo, aplicada 12 a 14
horas luego de la primera dosis.

Para los machos según la calidad del semen se pueden seguir varios protocolos.
Igual a las hembras una sola dosis igual a la primera o sin ninguna aplicación
hormonal.


Una vez aplicada la segunda dosis los ejemplares se reúnen en piletas adaptadas
para este fin, tapadas con una tela oscura para evitar que los ejemplares salten y
se lastimen, igualmente para brindar un ambiente oscuro.

El silencio es indispensable durante la reproducción ya que cualquier ruido fuerte
puede inhibir el proceso de desove.

Luego de 8 a 12 horas de la segunda dosis, dependiendo de la temperatura del
agua, se lleva a cabo el desove seminatural. Este proceso es caracterizado
porque los machos emiten un fuerte sonido similar a un ronquido y luego proceden
a colocarse junto al opérculo de la hembra y mediante movimientos sincronizados
la hembra expulsa los huevos, mientras el macho los fertiliza inmediatamente.
Este proceso puede durar de algunos minutos hasta algunas horas.

Una vez los ejemplares han dejado de desovar se recogen los huevos fertilizados
en trampas diseñadas para este fin o se pescan con tela de angeo fina con
cuidado de no dañarlos.

Incubación

Este proceso dura de 12 a 18 horas dependiendo de la temperatura del agua.

En las incubadoras de 60 litros se ajusta el flujo del agua en 3 litros por minuto y
se agregan los huevos fertilizados. Una vez se observan las primeras larvas
eclosionadas se aumenta el flujo de agua para acelerar el proceso de eclosión de
todas las larvas. Cuando han eclosionado el 90% de las larvas se retira el filtro de
la incubadora y mediante una bajante son conducidas a las incubadoras de 200
litros.

Larvicultura

Las larvas son transportadas en tanques a la zona de larvicultura en donde se
colocan en piletas con buena aireación y baja densidad de larvas por metro
cuadrado para facilitar las prácticas de manejo. Una vez se inicia la reabsorción
del saco vitelino, alrededor del cuarto día, se debe iniciar la alimentación con
nauplios de Artemia salina. Este alimento debe ser suministrado a saciedad lo
que se puede confirmar al observar los nauplios de color naranja vivo dentro de la
cavidad abdominal de las larvas del bocachico.

Alevinaje

Simultáneamente al proceso de incubación se inicia la preparación de estanques
con cal viva y abonamiento para la producción de plancton para los alevinos.

A los 25 días de nacidas las larvas se transforman en alevinos.


Levante

El alimento concentrado debe ser suplementario, como el bocachico es un pez
limnófago no consume completamente los pellets del alimento, por lo tanto este
debe ser suministrado partido o en polvo para facilitar su consumo. No se
recomienda el concentrado extrudizado para el bocachico. Los mejores
rendimientos para el cultivo de bocachico se obtienen en cultivos mixtos con
cachama o mojarra roja o policultivo de las tres especies. La densidad de cada
especie depende de las condiciones del agua y las posibilidades de implementar
sistemas de aireación adicional. La alimentación en policultivo se debe hacer a
una tasa del 2 y el 3% de la biomasa del pez acompañante del bocachico. El
bocachico se alimenta y aprovecha los desechos de los demás peces que se
localizan en el fondo del estanque.

El Bagre Rayado ( Pseudoplatystoma fasciatum)

Nombres populares: bagre, bagre pintado, bagre tigre, bagre rayado, pintadillo,
pintadillo tigre.


F 75-Ejemplar adulto e bagre rayado


Características generales

. Es un silúrido de amplia distribución en la mayor parte de América tropical y
subtropical, estando presente en las grandes cuencas colombianas;
. Es una especie de alto valor comercial por la calidad de su carne,
. Alcanza tallas hasta de 126 cm de longitud estándar,
. Realiza migraciones y se reproduce en el canal principal del río.
. Su fecundidad relativa se estima en 66.000 huevos por Kg de peso vivo.
. Es un pez de piel desnuda, cuerpo fusiforme, cabeza deprimida con bordes
laterales casi rectos, una ranura o fontanela relativamente corta y
superficial en la parte dorsal de la cabeza que no alcanza la mitad de la
distancia entre el ojo y el borde posterior del opérculo, la fauce superior se
proyecta levemente sobre la inferior.
. Posee tres pares de barbillones, un par maxilar negro y dos pares
mentonianos blancos.
. Las aletas pectorales y la dorsal poseen una espina dura, punzante y
aserrada que contiene ictiotoxina.
. La aleta caudal es heterocerca y con puntos negros.
. Generalmente son grises en el dorso y blancos ventralmente, con bandas
transversales perpendiculares al cuerpo bien separadas entre sí.
Hábitos

. Es de hábitos nocturnos,
. Su dieta natural se compone en un 99% de peces y/o camarones vivos,
capturan peces con tallas que alcanzan hasta del 30% de su longitud
estándar. Los juveniles complementan su dieta con la captura de insectos
acuáticos.
. Boca amplia con grandes dientes filiformes, esófago amplio de paredes
gruesas y dilatables, estómago en forma de J con fundus grande con gran
capacidad de almacenamiento y es allí donde es macerado el alimento,
. El intestino es corto.

Reproducción y Manejo en cautiverio

. La madurez sexual se alcanza en hembras con talla superior a 83 cm y
machos con talla superior a 60 cm de longitud estándar, y pueden ser
usados como reproductores.
. Los reproductores pueden obtenerse por capturas del medio natural o
criados en cautiverio.
. Por su hábito carnívoro deben ser alimentados con peces vivos y/o
camarones, por lo cual se recomienda cultivarlos con peces de alto
rendimiento natural como la tilapia, la guarupaya, etc.
. Aceptan concentrados con niveles proteicos superiores al 38%.
F 76- Sujeción y extracción de huevos

. Por su hábito bentónico, los reproductores deben manejarse en estanques
con profundidad superior a 1.5 m y recambio permanente.
. La densidad de los reproductores recomendada es de 200 g de pez por m2.

. La selección de los reproductores se hace con base en sus características
externas como abdomen abultado y blando, papila agrandada y enrojecida
en hembras y liberación de semen por leve presión abdominal en machos.
Para la manipulación de los ejemplares se debe evitar el uso de mallas con
nudos.
. La selección debe apoyarse con una evaluación de los óvulos, mediante la
realización de una biopsia ovárica, la cual permite analizar maduración y
morfología.
. Para el proceso de reproducción se requiere una temperatura promedio de
27oC, piletas con paredes lisas y suministro de agua que genere corriente.
Inducción hormonal

. Para la inducción de la maduración final de los óvulos y el desove, se utiliza
más frecuentemente la hormona EPC (extracto de pituitaria de carpa), en
dosis que varía de 0.5 a 6 mg por kilogramo de peso vivo y se aplican con
intervalos de 12 horas, con aplicación intramuscular o intraperitoneal.
. A los machos se les aplica una dosis de 1 a 2 mg/Kg de biomasa con la
segunda dosis de la hembra.
. La ovulación debe ocurrir entre 180 y 220 grados hora (oH).
. Se recomienda el monitoreo riguroso de la hembra después de los 180 oH;
pues, al no se presentarse cortejo que indique el momento de ovulación,
existe el riesgo que se pierdan huevos porque el periodo de latencia de los
oocitos ovulados es muy corto y se disminuiría considerablemente la tasa
de fertilización.
F 77- Extracción de huevos de una hembra de bagre

. Es aconsejable anestesiar los reproductores con MS22 en dosis de 100
mg/L u otros anestésicos como la benzocaína o la quinaldina en dosis
apropiadas. Esto disminuye el estrés y el dolor causado durante la
manipulación.
F 78- Extracción de semen de un bagre

. La fertilización debe hacerse totalmente en seco Los huevos se mezclan
suavemente con el semen utilizando una pluma limpia y desinfectada.
Inmediatamente se adiciona un poco de agua para la activación del
esperma, pasados dos o tres minutos se hidratan con bastante agua y se
lavan para eliminar impurezas como restos de sangre o semen.
. Para evitar adherencias en los huevos, se recomienda un baño rápido con
leche antes de colocarlos en la incubadora.
La incubación

. En la incubación es importante el manejo adecuado de la densidad de
huevos por litro de agua, la cual debe ser baja para alcanzar mejores tasas
de eclosión. Densidades de 300 a 500 ml de huevos hidratados por
incubadora de 60 L, permiten obtener de 60000 a 100000 larvas después
de la eclosión.

. La eclosión ocurre entre 15 y 17 horas a 27oC.
. La larva se mantiene en oscuridad en las incubadoras hasta que adquiera
pigmentación, luego deben trasladarse a ambientes cerrados con total
oscuridad y sembrarlas en piletas rectangulares con recambio permanente
de agua.
. Se da inicio a la alimentación con nauplios recién eclosionados de Artemia
salina que deben ser suministrados los primeros tres días en la mañana y al
anochecer (7 A.M y 5 P.M) a una ración de 1 ml de quistes para cada
100.000 larvas.
. A partir del día 3 la artemia se puede enriquecer por lo menos durante 12
horas impregnándola con espirulina o vitamina C en cantidad proporcional a
la Artemia eclosionada.
. A partir de la segunda semana se deben suministrar tres veces por día. La
cantidad de artemia se va ajustando de acuerdo con la sobrevivencia y elcrecimiento asÍ: Semana 1: 1 ml, semana 2: 1.5 ml y semana 3: 2 ml,
semana 4: 2.5 ml, por cada 100.000 larvas de bagre.
. Luego de la tercera semana se complementa la dieta con el suministro de
plancton colectado de los estanques, el cual debe ser tamizado evitando los
copépodos ciclopoides que son predadores de larvas.
. La Artemia salina debe ser eclosionada entre 30 y 32% de salinidad y a
temperatura de 27oC, aireación elevada, luz permanente y a una densidad
de 2 a 2.5 g/L.
. La densidad de siembra de larvas no debe superar 200 por litro (ideal
menos de 100).
Primera etapa de alevinaje (con alimento vivo más ración en pasta)

Tamaño inicial de los alevinos 1 cm
Densidad 100 – 150 larvas por litro
Duración 4 semanas aproximadamente
Tamaño final de los alevinos 3 – 5 cm

Aspectos importantes

. En esta etapa se cambia gradualmente el suministro de alimento vivo por
alimento húmedo (corazón de res y/o de pollo o carne de peces) en forma

de pasta preparando así los peces para comenzar el entrenamiento
alimenticio a ración seca.

. La ración se hace impregnando el alimento húmedo con concentrado
comercial para peces cuyo contenido de proteína sea superior al 40% y
enriqueciéndolo con vitamina C hasta obtener una pasta casi líquida con
alta flotabilidad y que sea fácilmente capturada por los alevinos.
. La adaptación a ración seca debe hacerse en forma gradual,
incrementando semanalmente en 10% la proporción de concentrado seco y
disminuyendo en la misma proporción el alimento húmedo de 100% en la
semana 5 hasta 70% en la semana 8, para que el porcentaje de alevinos
entrenados a ingerir la ración sea mayor.
. La alimentación se realiza cuatro veces al día intercalando el alimento vivo
con la pasta preparada. En todo este proceso de adaptación la calidad del
agua debe ser monitoreada en forma permanente y realizar tratamientos
profilácticos para mantener en condiciones óptimas la sanidad de los
peces.
Segunda etapa de alevinaje (con ración de pelet húmedo)

Tamaño inicial de los alevinos 3- 5 cm
Densidad 2 alevinos por litro en tanques
circulares negros con una columna de
agua de 50 cm
Duración 7 semanas aproximadamente
Temperatura del agua 27 oC
Aireación y recambio Permanente, en ambientes cerrados y
oscuros para evitar canibalismo.
Tamaño final de los alevinos 3 – 5 cm

Tercera etapa de alevinaje (con ración de pelet seco)

Los bagres adaptados a consumir ración seca, pueden ser mantenidos en tanques
circulares de color negro y aún a oscuridad, con una densidad apropiada de 0.5
alevinos por litro y recambio de agua permanente hasta que alcancen una talla de
10 a 12 cm para luego ser engordados en estanques en tierra, con el
procedimiento normal para cultivo de peces de aguas cálidas. En esta etapa se
evalúa el resultado del entrenamiento a ración seca. Se recomienda en esta etapa
alimentarlos temprano en la mañana y durante las horas de la noche.


Engorde

Aspectos generales

. En el proceso de preparación de los estanque para la siembra se puede
obviar la fertilización dado que esta especie no es filtradora y la presencia
de plancton no es muy importante, excepto si se implementa en policultivo
con cachama o tilapia.
. El tiempo de cultivo del bagre rayado iniciando con ejemplares de 15
gramos varía con el peso requerido en el mercado y puede durar hasta 14
meses para obtener ejemplares de 3 Kg.
. El engorde puede realizarse en una sola fase directa o en tres etapas.
Cultivo de camarón de agua dulce ( Macrobrachium rosembergii)


Anatomía

El camarón es un artrópodo revestido por un exoesqueleto llamado caparazón,
constituido de quitina y carbonato de calcio. Su cuerpo tiene las siguientes partes:

. Cefalotórax con 13 segmentos,
. Abdomen con 6 segmentos; y,
. Telson.
A cada segmento le corresponde un par de apéndices o estructuras denominadas
anténula, antena, mandíbula, primera y segunda maxila, primero, segundo y tercer
maxilípedo, quela, patas caminadoras o pereiópodos y pleópodos o apéndices
natatorios. Estructuras que cumplen funciones bien distintas, unas como órganos


sensitivos, otras como aprehensoras, trituradoras de alimentos, locomoción,
actividades sexuales, defensa y órganos natatorios.


F 79- Camarón adulto


F 80 - 81 Larvas de camarón de agua dulce

Biología del Camarón de Agua Dulce

En su hábitat natural cuando llega la hora del desove, los camarones bajan con la
corriente de los ríos hasta las desembocaduras próximas al mar y allí nacen las
larvas, las cuales requieren de agua salada para sobrevivir (en un rango entre 12 y
17 partes por mil de salinidad); luego, cuando disminuye la corriente en los ríos,
las postlarvas y juveniles ascienden por el cauce de estos y penetran en el agua
dulce propiamente dicha para llegar a la madurez sexual.


. Hábitos alimenticios
Son omnívoros, comen frecuentemente y de manera voraz material animal y
vegetal (trozos de carne, vísceras de peces, pequeños moluscos y crustáceos;
insectos acuáticos y larvas de insectos; semillas, granos, pulpa de frutas).
Por otra parte, en cautiverio aceptan alimento balanceado para camarones, aves
y peces. Cuando no hay suficiente disponibilidad de alimento los camarones se
nutren de algas, así como de hojas y tallos tiernos de plantas acuáticas.
El estrés por falta de alimento predispone seriamente al canibalismo en machos.


. Muda y desarrollo
Corresponde a un proceso fisiológico necesario para el aumento de tamaño y
desarrollo del camarón; pues, cuando se ha acumulado la suficiente cantidad de
tejido para el crecimiento, un nuevo caparazón delgado, suave y elástico se
desarrolla gradualmente debajo de la cutícula vieja. Una vez que está
completamente desarrollado, el camarón busca un lugar protegido para mudar.
Esto se realiza en forma rápida y generalmente se completa en 5 minutos. El
nuevo exoesqueleto tarda de 3 a 6 horas en volverse lo suficientemente duro.
La frecuencia de la muda depende de la edad del ejemplar, de la cantidad y
calidad del alimento ingerido. Todas las hembras sexualmente maduras mudan
antes de que el apareamiento y desove tengan lugar.

. Reproducción
Dimorfismo sexual

Característica
anatómica
Machos Hembras
Tamaño Más grandes Menor tamaño
Segundo par de
extremidades o quelas
Muy largas y gruesas Cortas y delgadas
Cabeza Gran tamaño Menor tamaño
Abdomen Compacto Blando
Órganos genitales Localizados en la base de
la quinta extremidad
torácica
Localizados en la base de
la tercera extremidad
torácica
Cámara de incubación Ausente Localizada debajo del
abdomen formada por la
prolongación de la pleura
abdominal y los
pleópodos


Apareamiento y desove

El macho inicia el cortejo durante 10 a 30 minutos, rodeando a la hembra con sus
extremidades más largas y al mismo tiempo limpiándole la región ventral del tórax
con otros apéndices; seguidamente ocurre la cópula, que dura unos pocos
segundos. Durante el apareamiento el macho transfiere a la hembra una masa
gelatinosa blanca, que contiene los espermatozoides, la cual se adhiere a la
región ventral del tórax de la hembra. El desove comienza aproximadamente de 6
a 20 horas después del apareamiento. En el proceso de postura de huevos la
hembra se encorva hacia adelante lo suficiente para tener un íntimo contacto con
la porción ventral de la región torácica, los óvulos descienden de los ovarios y son
expulsados por los poros genitales que se encuentran en la base del tercer par de
pereiópodos a la cámara de incubación, ubicada entre el cuarto y primer par de
pleópodos. Los huevos se adhieren a las cerdas de éstos por medio de una
sustancia membranosa elástica, donde son mantenidos aireados por vigorosos
movimientos de los apéndices natatorios.

Incubación

Considérense los siguientes aspectos:

Número de huevos por postura 5000 a 100000
Número de desoves 3-4 veces/año/condiciones naturales
2 veces/5 meses/condiciones de
laboratorio
Coloración de los huevos Naranja brillante recién puestos
Gris aceituno cuando ha completado su
formación la larva.
Forma y diámetro del huevo Ligeramente ovalados, de 0.6 a 0.7 mm
de diámetro.
Duración de la incubación 18-20 días, dependiendo de la
temperatura.
Prácticas cotidianas de la hembra Diariamente realiza la limpieza de los
huevos con ayuda del primer par de
quelas y reacomoda las masas de
aquellos que se desprenden.

Desarrollo larval

Las larvas son estuarinas, en todos sus estadios son voraces, comen
continuamente el alimento disponible. Su alimento natural es el zooplancton y


pequeñas partículas de material vegetal y orgánico. En el laboratorio se alimentan
con nauplios de artemia y un flan de huevo, levadura, leche, pescado, etc.
Durante su desarrollo pasan por 11 estadios, después sufren una metamorfosis
pasando a postlarva, la cual presenta todas las características de un camarón
adulto. Del primero al quinto estadio, cada muda resulta en un nuevo estadio; del
sexto a postlarva, dos mudas entre dos estados morfológicamente consecutivos.
Las larvas son planctónicas y nadan activamente en forma invertida, con el telsón
hacia arriba y el cefalotórax hacia abajo; para desplazarse realizan movimiento en
espiral. Son atraídas por la luz, pero evitan la iluminación fuerte y brillante. Al
parecer las postlarvas se invierten y nadan en dirección contraria a la corriente
buscando el fondo.

Presentan 11 estados larvales llamados Zoea I al XI y postlarva.

Juveniles

Se diferencian de las postlarvas por su mayor tamaño y se considera que en un
periodo de 60 días los ejemplares ya se denominan juveniles.
Son transparentes, haciéndose difícil observarlos rápidamente, pero en la noche
su presencia es fácilmente detectada con la luz de una linterna. Su alimentación
se basa en el consumo de pequeños crustáceos, larvas de insectos y una gran
variedad de partículas de material orgánico (vegetal y animal). Se desarrollan de
una manera muy rápida mudando entre el 5 y 10 día.

En condiciones naturales permanecen en áreas de aguas salobres por 1 ó 2
semanas para migrar luego en contracorriente a aguas dulces.

Cría y cultivo

Ventajas

. Los adultos son relativamente fáciles de mantener en cautiverio,
. Se pueden reproducir en condiciones sencillas de laboratorio; y,
. Se adaptan fácilmente a amplios rangos de temperaturas.
De cosechas realizadas en el medio natural, se seleccionan machos y hembras
que tengan las mejores características morfológicas para formar el pie de cría, los
cuales se transportan en recipientes adecuados (tanques transportadores) que
contengan agua limpia hasta un nivel de un 50% de su capacidad, con aireación
permanente.

Para la reproducción tenga en cuenta lo siguiente:


Proporción de reproductores en el
estanque
1 macho por cada tres hembras.
Temperatura del agua 27 – 30 oC
Salinidad 0- 5%
Aireación Permanente
Medios de protección para la muda Pedazos de tubos de plástico, ladrillos
con huecos, tejas de barro, etc, con el
fin de proporcionar refugios y evitar
canibalismo.
Alimentación de reproductores Dos raciones diarias de carne de
calamar, espinacas, trocitos de
pescado, en proporción equivalente al
3% del peso de su cuerpo.
Renovación del pie de cría Las hembras deben reemplazarse
después de cada segundo desove y a
los machos cada 4 meses.
Manejo poscópula Se drena parcialmente el estanque para
que por medio de una red de mano se
recolecten las hembras grávidas
(portadoras de huevos) que se
depositan en tanques especiales de
desove.
Duración de la incubación 19 días en promedio
Salinidad del agua 5%
Al nacimiento de las larvas Retirar las hembras de los tanques de
eclosión.
Salinidad en zoeas Son altamente eurihalinas; es decir
toleran un amplio rango de salinidad.
13% de salinidad a la que se debe
llegar lentamente en un tiempo no
mayor de 2 horas.

Cría de larvas

Los tanques construidos en cemento, recubiertos con granito blanco, de forma
circular y fondo plano, de volúmenes no mayores a 1000 litros, son económicos y
eficientes. Deberán estar equipados con aireadores (piedras aireadoras),
colocadas a una distancia de 30 cm que permiten la oxigenación del agua
proveniente de un aireador o compresor; además de tubería plástica de llenado de
2 pulgadas y drenajes mediante un sifón de 3 pulgadas de diámetro, previa
utilización de un sistema de filtro para evitar el escape de las larvas.


Tipos de agua para larvicultura
¾ Agua de mar

Se toma directamente del mar, se almacena y se decanta en un tanque abierto
para ser utilizada al día siguiente, previo filtrado a través de un filtro biológico y/o
mallas de tela de fieltro de 1 micra para evitar el ingreso de organismos
planctónicos.

¾ Agua dulce

Se obtiene de ríos, arroyos, y/o lagos, también requiere de una filtración previa
mediante telas filtro de diferentes micras antes de su uso. El agua potable que
usualmente tiene cierta cantidad de cloro debe ser envejecida y aireada por 24 –
48 horas en recipientes abiertos.

¾ Agua salobre

Es aquella producto de la combinación a voluntad el agua de mar con agua dulce
al grado de salinidad requerido, teniendo como base la salinidad del agua de mar
(34%).

¾ Agua de mar artificial

Consiste en la adición de sales al agua dulce hasta obtener la salinidad requerida,
pero presenta el inconveniente de su alto costo en los cultivos de gran escala.

Tabla No.34 Preparación de mezclas de agua dulce y agua de mar

Porcentaje de agua
dulce
Porcentaje de agua de
mar
Porcentaje de salinidad
obtenido
0 100 34
50 50 17
100 0 0

Tabla No. 35 Preparación de agua de mar artificial – Fórmula sugerida

Ingrediente Cantidad
NaCl 10000 g
MgSO46H2O 3000 g
CaCl2 360 g
KCl 180 g


KBr 20 g
H3BO3 120 g
Agua 1000 Kg

Alimentación durante el estado larval

Se recomiendan partículas lo suficientemente ligeras para permanecer
suspendidas, o las que se hunden lentamente son las que más atraen a las zoeas.
El tamaño de las partículas del alimento suministrado debe ser similar al tamaño
de la región torácica del animal que va a ser alimentado. Se dan 4 raciones por día
y en cantidades de acuerdo al número de animales.

Alimento natural

El microcrustáceo artemia ha demostrado ser un alimento de alto valor nutricional.
Los nauplios son larvas de artemia que usadas a una concentración de 5 a 10 por
ml de agua se utilizan para la alimentación de las zoeas, por lo menos durante los
10 primeros días de desarrollo. Posteriormente la dosificación de artemia puede
ser disminuida y la cantidad de alimento preparado se incrementa gradualmente.

La artemia se puede obtener en el mercado como un producto enlatado por las
casas comerciales. Su presentación es en forma de quistes o huevos secos que al
contacto con el agua de mar y buena aireación nacen entre 24 y 36 horas,
dependiendo de la temperatura del agua.

Alimento suplementario

En lo posible este alimento debe ser de origen animal, ya que se garantiza un
mayor desarrollo y crecimiento. Podemos utilizar carne de pescado cocida, molida
y tamizada, huevo de gallina, gónadas de pescado, leche en polvo, levadura y
harina de soya. Estos deben ser mezclados y cocinados al baño maría para
obtener un flan, el cual es tamizado al tamaño deseado para ser dado en raciones
adecuadas a las larvas.

Tabla No. 36 Ejemplo 1 de dietas como alimento suplementario en la cría de larvas de
camarón de agua dulce

Ingrediente Cantidad
%
Análisis
Bromatológicode la dieta
Porcentaje
Harina de clamar 27.6 Proteína 54.9
Harina de camarón 27.6 Lípidos 19.7
Huevos de pescado 6.9 Carbohidratos 8
Huevos de gallina 6.9 Cenizas 7.7


Aceite de pescado 14
Vitaminas 1
Sales minerales 1
Alginato 15
Agua dulce 250 ml

Tabla No 37 Ejemplo 2 de dieta como alimento suplementario en la cría de larvas de
camarón de agua dulce

Ingrediente Cantidad Análisis
Bromatológicode la dieta
Porcentaje
Carne de pescado 200 g Proteína 30.5
Leche en polvo 30 g Lípidos 10.7
Yema de huevo 2 unidades Carbohidratos 52.5
Huevos de gallina 6 unidades Cenizas 4.8
Levadura 30 g
Harina de soya 30 g
Agua dulce 500 ml

Calidad de agua y su mantenimiento

Para la reproducción se requiere aguas de buena calidad, con las siguientes
características:

Parámetro Rango
Temperatura 26-32ºC
Salinidad 13%
Oxígeno disuelto (OD) 6 mg/l
p.H 7.5 -8.5
amoníaco y nitritos Niveles menores a 0.5 y 0.1 ppm,
respectivamente
Recambios diarios de agua 20 – 60%, dependiendo del estadío y
densidad de población
Remoción de sedimentos Por sifoneo se retiran los restos de
alimento no consumidos por las zoeas,
suspendiendo la aireación por unos
pocos minutos y devolviendo
posteriormente al tanque las larvas que
salgan durante esta operación.


Densidad de población

Estado larval Densidad recomendada
Zoeas I a IV 100 animales por litro
Zoeas VI -XI 40 ó 50 zoeas por litro

Si excedemos estos rangos, disminuye la supervivencia y aumenta el canibalismo.

Separación de postlarvas y aclimatación

La aparición de postlarvas es gradual; por tal razón de debe tener el cuenta el
siguiente procedimiento:

. Suspender la aireación del tanque por unos minutos, cuando se observa
una buena cantidad de postlarvas.
. Colectar las postlarvas que nadan activamente alrededor del tanque con
una nasa de mano y se llevan a un tanque circular, con un sistema de
corrientes generadas ya que en su estado natural migran en
contracorriente, buscando las orillas de ríos y arroyos.
. Iniciar proceso de aclimatación de las postlarvas al agua dulce en el nuevo
tanque, en un período de 48 horas (a veces menos tiempo); mediante la
adición gradual del agua dulce hasta llegar a cero en la salinidad.
. Las zoeas que forman grupos en la superficie también se capturan y
posteriormente se devuelven al tanque de larvicultura para la continuación
de su ciclo.
. Las postlarvas pueden ser alimentadas con concentrado para camarones,
carne de pescado molida, artemia y flan de huevo. En esta etapa se
pueden mantener hasta por 20 días a una densidad de 5000 postlarvas por
metro cuadrado.
Cosecha y transporte de postlarvas

Recomendaciones generales:

. La colecta de postlarvas se efectúa 3 horas antes del transporte,
preferiblemente en la madrugada para evitar el estrés por alta temperatura.
. Inicialmente se reduce el volumen del tanque y en la boca del drenaje se
coloca una caja de malla (cosechadora) a donde se reciben las postlarvas.

. Seguidamente se pescan con una nasa de mano y se colocan en tanques
de 80 a 100 litros para su conteo, que se realiza de la misma manera que
en conteo de larvas por alícuotas. Los tanques deben estar provistos de
buena aireación y alimento.
. El transporte se realiza en cajas de icopor que contienen bolsas dobles de
plástico de 12 litros de agua con oxígeno, a una densidad entre 1000 y
2000 postlarvas por litro, de acuerdo al tamaño de los ejemplares y el
tiempo de transporte; para distancias mayores se reduce la temperatura
hasta 21ºC, colocando hielo entre la bolsa y la caja de icopor.
Cultivo en estanques

Para el cultivo de camarones, se tienen en cuenta los mismos principios de la
piscicultura:

. El tamaño del estanque más conveniente para el cultivo de camarón de
agua dulce, varía entre 1000 y 5000 m2. Tamaños más grandes dificultan el
manejo del cultivo.
. La profundidad adecuada oscila entre 1.2 y 2 m.
. El fondo debe ser plano y bien compacto con una pendiente hacia el
drenaje del orden del 0.5%.
. Se recomienda sembrar vegetación rastrera en los diques para evitar la
erosión, además las plantas ayudan para el crecimiento de insectos que
sirven de alimento a los camarones y a la vez protege durante la muda a
juveniles y adultos; evitando que colonicen el estanque.
. Las estructuras de entrada y salida del agua deben ser preferiblemente en
concreto. Es necesario colocar mallas metálicas o plásticas de 1 mm de ojo
a la entrada y salida del agua, para controlar la presencia de predadores y
evitar la salida de los camarones del estanque.
. Los estanques se deben preparar de 10 a 15 días antes de la siembra,
drenando totalmente el agua y se deja secar al sol de 5 a 8 días. Se debe
adicionar cal viva para elevar el p.H y eliminar animales indeseables.
. Dos días antes de sembrar las postlarvas, el estanque se llena con agua
filtrada por una malla de 450 micras y se aplican los fertilizantes que
pueden ser de naturaleza orgánica o inorgánica. De esta forma se estimula
el desarrollo de la fauna béntica y el plancton que se constituyen en el
alimento natural para las postlarvas. Se puede usar gallinaza o porquinaza

a razón de 1000 a 2000 Kg /Ha. La fertilización química pude ser con urea
10 Kg/ha/semana y fósforo2.5 Kg/ha/semana.

. El control del nivel de agua debe realizarse cada dos días, para reposición
del agua perdida.
. El uso de la rotenona, saponina, barbasco, etc, da muy buen resultado
como control a los peces no deseados, sin afectar a los camarones (2 ppm
de rotenona al 5%).
Los parámetros físicoquímicos ideales del agua para el cultivo de camarones son:

Temperatura 26 – 32 oC
p.H 7 - 8
Oxígeno Disuelto 5 – 8 ppm
Transparencia 30 – 50 cm

Densidad de siembra

Sistema de producción Densidad
Monocultivo tipo anual Siembra de postlarvas 15-18/m2
Monocultivo de corta duración (4-6
meses)
7 a 10 camarones por m2
Policultivo con peces 3 a 5 camarones por m2

Alimentación

Aspecto Criterio
Concentrado comercial iniciación Proteína 35%
Concentrado comercial finalización Proteína 25%
Tamaño partícula de alimento . Harina o polvo : Desde la
siembra hasta el día 15
. 2 mm de diámetro: desde el día
15 hasta el final.
Tasa de alimentación diaria . Inicial: 10% de la biomasa
. Final: 2 % de la biomasa
Rutina de alimentación Suministrar a lo largo del estanque,
repartida en dos raciones, una en la
mañana y otra en la tarde.


Crecimiento y supervivencia

Se considera aceptable una tasa media de crecimiento en peso entre 0.17 a 0.35
g/día. El crecimiento en estos camarones es muy heterogéneo, con una gran
disparidad de tallas, más marcadas en los machos.

El promedio de supervivencia entre el período de siembra y cosecha es del 60%.

Cosecha y producción

La pesca debe hacerse en horas frescas (de noche o en la mañana). El producto
se debe lavar con agua limpia que contenga 5 ppm de cloro. El transporte a la
planta de proceso debe hacerse en neveras con hielo.

Tabla No. 38 Crecimiento promedio del Camarón de Agua Dulce

Tiempo en el estanque Longitud del extremo
del rostro al extremo
del telson (mm)
Peso promedio
g
Día 1 (muestreo) 55 2
1 mes 76 4.5
2 meses 110 10
3 meses 140 25
4 meses 180 60
5 meses 210 100
6 meses 225 125

En términos generales los rangos de producción normales oscilan entre 2000 y
4000 Kg/ha/año.

Sanidad

Agente etiológico Síntomas
Protozoarios de los géneros Epystilis, Atacan las superficies del cuerpo y las
Zoothamiun y Vorticella branquias, especialmente cuando
mudan de caparazón, afectándolos en
sus movimientos para desplazarse o
alimentarse. Esto impide el proceso
normal de la muda.
Los protozoarios son la causa más
común de las enfermedades en


camarones.
Bacterias del tipo quinolíticas Atacan el caparazón del animal
causándole agrietamiento y
produciendo la denominada “mancha
negra”.
Bacterias del tipo filamentoso Afectan el sistema respiratorio o
branquial del animal, limitando o
impidiendo la respiración.
Deficiencias de Oxígeno disuelto A nivel muscular se pueden observar
alteraciones de coloración blanquecina
y opaca; que inmoviliza parte del
abdomen y con complicaciones
consecuentes.
Hongos Aphanomyces y Fusarium Atacan frecuentemente estructuras
como la cola o el telson, patas
caminadoras y los pleópodos
impidiendo su movilidad y busca de
alimento.
Proliferan cuando son precarias las
condiciones de higiene en los tanques
de cría larval, causando altas
mortalidades.

El cultivo de peces ornamentales



Introducción

En Colombia tiene las siguientes características:

. Está en sus inicios con visión empresarial y conservacionista,
. Da la posibilidad de aprovechar pequeños espacios físicos,
. Requiere poca demanda de agua,
. Exige baja demanda de mano de obra,
. El producto final no es para el consumo humano sino como mascotas.
.. Oportunidad de exportación.
F 82-83 Acuarios usados en piscicultura ornamental

Los peces ornamentales son conocidos en todo el mundo y son muy apetecidos
por su gran variedad de colores, tamaños y formas.

Según Landínez (1992) dentro de los peces tropicales que hacia la década de los
90 se exportaron, el 98.7% de la totalidad de los individuos fueron capturados del
medio natural y solamente el 1.3% fueron producidos en cautiverio. Por esta
razón existen muchas especies en peligro de extinción.


F 84-85 Plantas Acuáticas utilizadas en los acuarios


Especies más cultivadas


¾ Carácidos:


F 86-87 Metynnis sp. (pez moneda)


Características:

. Cuerpo cubierto de escamas,
. Generalmente cuentan con aleta adiposa;
. no poseen barbillas; y; por lo general tienen dientes fuertes.
. Pueden existir desde individuos carnívoros hasta herbívoros, pasando por
los omnívoros.
. Desovan un buen número de huevos y no presentan cuidado parental
(Vevers, 1982 y Mills y Vevers, 1990).
. Requiere de aguas blandas o ligeramente duras y p.H neutro con ligera
tendencia a la acidez y temperaturas superiores a 25oC.
Tabla No. 39 Principales especies de carácidos ornamentales

Nombre común Nombre científico
Cachama blanca Piaractus brachypomus
Moneda Metynnis sp.
Monjita Gymnocorymbus ternetzi
Pez lápiz Nannostomus eques
Piraña dorada Serrasalmus gibbus
Rojito Megalamphodus sweglesi
Pechona común Gasteropelecus sternicla
Tetra bandera Hyphessobrycon heterorhabdus

¾ Ciprínidos:

Las principales especies de esta familia son los barbos (Barbus sp), peces
dorados como las bailarinas (Carassius auratus), los kois (Cyprinus sp).



. No tienen dientes en las mandíbulas, pero si en la faringe.
. Pueden presentar uno o dos barbillones en la boca,
. Nunca presentan aleta adiposa;
. Generalmente están recubiertos de escama.
. La mayoría son omnívoros.
. Su reproducción se lleva a cabo en aguas estancadas o de flujo lento, en
donde haya presencia de plantas sumergidas sobre las cuales la hembra
depositará sus huevos generalmente adhesivos.
Tabla No. 40 Principales especies de Ciprínidos ornamentales


Nombre Común Nombre científico
Arlequín Rasbora heteromorpha
Bailarina – Pez dorado-Burbuja –
Cabeza de león - Telescopio
Carassius auratus
Barbo dorado Barbus schuberti
Zebra Brachydanio rerio
Koi Cyprinus sp.
Labeo negro Morulius chrysophekadion



¾ Silúridos:


Características principales:

. Se les llama peces gato porque presentan barbillas que forman parte de
un complejo órgano sensorial que emplean para localizar el alimento,
encontrar su pareja y orientarse en el medio en que se desenvuelven
(Geis, 1997 y Gratsek y Mathews, 1992).
. Su piel está desnuda, o bien cubierta de placas óseas, pero nunca
poseen escamas propiamente dichas (Mills y Vevers, 1990).
. Muchas especies exhiben dimorfismo sexual, órganos intromitentes en
los machos y hábitos reproductivos complejos que incluyen fabricación
de nidos y cuidados parental (Salazar, 1996). Sin embargo, pueden
presentar la mayor diversidad de conductas reproductivas de todos los
órdenes de peces. Algunos se aparean, desovan y se van para no
volverse a encontrar, mientras que otros protegen cuidadosamente a

sus crías; otros se reproducen en grupos en los cuales un solo macho
fertiliza huevos de varias hembras (Geis, 1997).

. La mayoría habitan en el fondo o cerca de él,
. Son generalmente peces solitarios que desarrollan su actividad cuando
oscurece y solamente en raras ocasiones forman cardúmenes (Mills y
Vevers).

Tabla No. 41 Principales especies de silúridos ornamentales

Nombre común Nombre científico
Coredora arcuato Corydora arcuatus
Coredora meta Corydora metae
Coredora gigante Brochis coeruleus
Cucha barbuda Ancistrus temninckii
Cucha real Panaque nigrolineatus
Cuchas Pterygoplichthys sp
Lapicero Farlowella sp
Platidora Platydora costatus
Tiburón Pimelodus telemoncito
Tigrito Pimelodus pictus



Los “panchax” (Aplocheilus panchax) y “colas de lira” (Aphyosemion
filamentosum) son sus principales representantes, aunque en Colombia
tenemos sólo el “cuatro ojos” (Anableps anableps).

Características principales:

. Tienen gran variedad de colores.
. Este grupo es conocido popularmente como carpas dentadas porque
poseen dientes en las mandíbulas.
. No poseen barbillones ni aleta adiposa,
. Suelen tener la boca abultada y por lo general está dirigida hacia arriba,
posibilitando la obtención del alimento de la superficie (Vevers, 1982;
Mills y Vevers, 1990 y Halsted y Landa, 1992).
. Los machos presentan mayor tamaño que las hembras, aletas más
largas y colores más vistosos.
Tabla No. 42 Principales especies de ciprinodóntidos ornamentales

Nombre común Nombre científico
Abanico azul Cynolebias belloti
Abanico negro Cynolebias igripinnis
Cola de lira Aphyosemion filamentosum
Cola de lira rojo Aphyosemion bivistatum
Cuatro ojos Anableps anableps
Panchax azul Aplocheilus panchax
Panchax luminoso Aplocheilus macrophtalmus

¾ Poecílidos:



. En este grupo están las carpas dentadas vivíparas que en algunos
países se utilizaron para el control de larvas de mosquitos trasmisores
de enfermedades.
. Sus hábitos reproductivos son complejos, presentando uno de los
mecanismos propios de los peces teleósteos: la superfetación (Vazzoler,
1996 y Salazar, 1996), la cual consiste en que la hembra puede
almacenar el esperma de un macho por períodos largos de tiempo,
pudiendo fertilizar huevos maduros, sin necesidad de la presencia de
este (Vevers, 1982 y Gratzek y Mathews, 1992).
. El macho presenta un órgano copulador llamado gonopodio, el cual es
una modificación de la aleta anal que le permite introducir en la hembra
una especie de espermatóforo, entro del cual están los espermatozoides
que fertilizarán los huevos maduros para dar origen a los nuevos
individuos, los cuales nacen completamente desarrollados (Mills y
Vevers, 1990 y Pérez, 1999).
Tabla No. 43 Principales especies de poecílidos ornamentales

Nombre común Nombre científico
Espada Xiphophorus helleri
Guppy Poecilia reticulata
Molly de vela Poecilia velifera
Pez mosquito o enano Heterandria formosa
Platy común Xiphophorus variatus

¾ Anabántidos:

Se destaca el beta (Betta splendens), de gran colorido y hermosas aletas, y
quien es conocido como luchador siamés, porque en presencia de otro macho
de la misma especie reacciona iniciando una pelea que culminará con la
muerte de uno de los dos ejemplares.



F 88-94 Diversidad de especies del género Betta


Características principales:

. Son individuos que poseen un órgano respiratorio auxiliar conocido como
laberinto, el cual está formado por una masa de tejido epitelial plegado con
numerosos vasos sanguíneos, situado en la parte superior de la cavidad
branquial y le permite al pez respirar aire atmosférico (Halstead y
Landa,1992).
. La mayoría de las especies construyen nidos de burbujas en la superficie del
agua y después del apareamiento el macho se encarga del cuidado parental.
Tabla No. 44 Principales especies de anabántidos ornamentales

Nombre común Nombre científico
Beta combatiente Betta splendens
Cola de peine Belontia signata
Gurami común Osphronemus goramy
Gurami enano Colisa lalia
Perca trepadora Anabas testudineus
Pez paraíso Macropodus opercularis

¾ Cíclidos:

En esta familia se hallan los mejores ejemplares de la acuariofilia mundial.

Características principales:

. En esta familia se tienen miles de especies diferentes, todas ellas de
coloración, forma y comportamiento atractivo.
. Generalmente habitan en lagos o aguas de curso lento, las cuales poseen
rocas y abundante vegetación.
. Se reproducen normalmente sobre una superficie limpia sobre la cual la
hembra pone los huevos y en seguida el macho los fertiliza y elimina los no
viables.
. Comúnmente se presenta cuidado parental.

Tabla No. 45 Principales especies de cíclidos ornamentales

Nombre común Nombre científico
Agasizi Apistogramma agassizi
Altum Pterophylum altum
Apistograma Apistogramma artmanni
Cebra - Convicto Cichlasoma nigrofasciatum
Disco Symphysodon sp
Escalar – Pez Ángel Pterophyllum scalare
Oscar Astronotus ocellatus
Falso escalar - Festivo Macropodus cupanus dayi
Falso disco Cichlasoma severum

Cultivo de algunas especies
El escalar o pez ángel

Pterophyllum scalare (Lichendtein, 1840); P. Leopoldo (Gosse, 1963); P. altum
(Pellegrini, 1903)


F 95 y 96 Adultos y juveniles de escalares


F - 97



F-98



F- 99



F- 100



F- 101



F- 102 Diversidad de especies del escalar


Son los más difundidos en el mundo dentro peces tropicales de acuario. En
Pterophyllum scalare se tienen las variedades: escalar de velo, plateado, negro,
dorado, mutante, rosa, holandés, albino, mármol y perla, entre otros.
Pertenecen a la familia Cichlidae.


Parámetro/Fase Características
Temperatura promedio 26 oC
P.H 6.8
Tipo de agua Blanda, sin corrientes fuertes
Tipo de alimento Reciben bien los concentrados comerciales para peces,
aunque tienen preferencia por el alimento vivo, como
adultos de artemia salina, larvas de mosquito, Tubifex,
Daphnia, etc. (Reyes, 1998; Hawley, 1999; Chianni,
1999).
Dimorfismo sexual Los machos tienen una mandíbula más prominente,
frente protuberante y convexa -hembra con frente
ligeramente cóncava.
Los primeros radios o espinas de la aleta dorsal son
más fuertes, dentados e irregulares que en las hembras.
(Martty, 1984), pero se requiere de destreza para
sexarlos con facilidad. Se facilita este procedimiento
puesto que el tubo ovopositor de la hembra se dirige
hacia atrás y el espermiducto del macho lo hace hacia
delante (Martty, 1984; Salas, 1999 y Hawley, 1999).
Selección de
Reproductores
Se debe disponer de un acuario de al menos 150 litros,
con un grupo de 6 ó 7 ejemplares para observar cuáles
de ellos se establecen como pareja, quienes al hacerlo
defienden y dominan un territorio. La recién conformada
pareja se retira a un acuario de postura, con una
capacidad mínima de 70 litros, en el que se ha
acondicionado una estructura lisa (tubo PVC) que hará
las veces de nido para lograr el desove.
Reproducción Para el desove se observa un comportamiento
relativamente agresivo y los ejemplares están en alerta,
viene el cortejo , permaneciendo juntos cerca al nido,
con su boca limpian lo que será el nido, y la hembra
comienza a poner en hileras sus huevos y es seguida
por el macho quien pasa sobre ellos eyaculando y


fertilizándolos. Generalmente una hembra puede poner
entre 200 y 500 huevos fértiles dependiendo de su
tamaño (Ghianni, 1999 y Salas, 1999).
Incubación Se recomienda sacar el nido del acuario para su
incubación ya que a veces los huevos y las larvas son
consumidas por sus padres. El acuario incubador debe
contener al menos 20 litros de agua, con aireación
constante. La incubación dura de 2 a 3 días a una
temperatura promedio de 26ºC, nacen las larvas pero
quedan adheridas al nido
Manejo de larvas Las larvas recién eclosionadas dependen de su saco
vitelino durante 3 a 4 días. Cuando se reabsorbe el
saco, los nuevos individuos ya presentan aberturas
bucal y anal y han llenado su vejiga natatoria; para
entonces su nado es horizontal y reciben alimentación
exógena. Aquí se les suministra infusorios por
aproximadamente un día, estos corresponden a
protozoarios principalmente Paramesium y se preparan
dejando cultivar el agua con diferentes tipos de materia
prima como grama seca cortada, hervida y después
reposada, cáscara de banano, yema de huevo, leche,
lechuga, etc. Se continúa el proceso dando los nauplios
de artemia salina, los que son consumidos ávidamente.
Alevinaje Se inicia el proceso de acostumbramiento al
concentrado comercial. Una vez adaptados a este se
trasladan a acuarios mayores, hasta adquirir la talla de
venta (2.5 cm), aproximadamente 45 días después. Su
alimento deberá contener mínimo 45% de proteína y
12% de lípidos.


F 103 -Estanque en tierra para reproducción de escalar

El Disco (Symphysodon discus; S. aequifasciata)

Sus nombres comunes son disco verdadero o de heckel o piña (Symphysodon
discos); y disco común o de bandas: disco marrón, disco azul y disco verde (S.
aequifasciata. Es considerado el rey del acuario, es el pez tropical más hermoso y
apetecido del mundo. Pertenece a la familia Cichlidae.

Parámetro/Fase Características
Temperatura promedio 27 -30 oC
P.H 6 – 6.5 (Yoshino y Kobayashi,1997 y Tejedor,1997
Tipo de agua Blanda, con aireación constante sin generación de
burbujas grandes ni turbulencias.
Se acostumbra a proveer oscuridad al acuario y a
adicionar extracto de turba al agua.
Disponibilidad de área El tamaño de los acuarios para 4 ó 5 adultos debe ser
superior a 200 l (Quarles, 1995; Séller, 1996 y Sweeney,
1997).
Tipo de alimento Consumen bien el alimento vivo como larvas de
mosquito, gusanos blancos, gusanos rojos, gammarus
y adultos de artemia y alimentos inertes como hojuelas,


granulados y las papillas nutritivas preparadas con
hígado de pollo, corazón de res, espinaca, mariscos,
etc.(Quarles,1999).
Dimorfismo sexual No existe dimorfismo sexual secundario y por esto es
muy difícil su sexaje.
Selección de
Reproductores
Se debe estar atento a la formación de parejas para
fines reproductivos, para esto, se debe introducir el nido
( tubo PVC), área que defenderá la recién conformada
pareja
Reproducción Se traslada la pareja a otro acuario de mínimo 120 litros
(Quarles, 1995), procurando no manipular en exceso los
ejemplares; pues, el estrés puede hacer perder la
atracción en la pareja.
Una vez adaptada la pareja a su nuevo hábitat se inicia
la actividad de cortejo con cierta conducta agresiva,
seguidamente el macho nada hacia la hembra,
presentando una vibración característica en sus aletas;
la hembra cambia de color y en señal de sumisión baja
la cabeza. En este momento los ejemplares se
muestran más oscuros e inician la limpieza del sitio de
puesta con sus bocas y la hembra pasa sobre él su
tubo ovopositor desde abajo hacia arriba. Sin embargo,
aún no pega ningún huevo. (Séller, 1996; Quarles,
1995; Sweeney, 1997 y Salas y Garrido, 1999).
Posteriormente comienza a pegar los huevos en hileras,
seguida del macho quien los fertiliza. Regularmente una
hembra pone entre 300 y 400 huevos, de color
amarillento y de 1 mm de diámetro (Séller, 1996).
Incubación La incubación dura aproximadamente 60 horas, a una
temperatura promedio de 28ºC, eclosionan sin
desprenderse del nido. Durante todo este proceso los
padres cuidan a sus crías, aireándolos con sus aletas y
eliminando los huevos muertos. Pero suele presentarse
depredación. Una acción preventiva sería cubrir los
huevos con una membrana transparente que permita a
los progenitores observarlos sin tener acceso directo a
ellos. De todas formas lo mejor es dejar a los padres
encargarse del cuidado de la incubación
Manejo de larvas El saco vitelino se reabsorbe en 3 ó 4 días, las larvas ya
pueden nadar y los nuevos individuos se alimentan de
una secreción mucosa característica de los


reproductores a nivel de sus flancos. Pasados 6 a 7 días
se suministrar nauplios de Artemia salina.

Alevinaje A partir del día 12 comienza la adaptación de los peces
al alimento comercial, lo que se logra alternándolo con
el suministro de Artemia. Aquí se trasladan los peces a
un acuario de 70-80 litros que contengan un filtro de
espuma, en donde luego de 60 días se alcanza una talla
de 3 a 4 cm. (Salas y Garrido, 1999).

El Oscar Astronotus crassipinis (Heckel, 1840); Astronotus ocellatus
(Agassiz, 1831)

Apetecido por su temperamento, colorido y gran tamaño. Pertenece a la familia
Cichlidae.


F-104 – 105 El Oscar

Parámetro/Fase Características
Temperatura promedio 24.5 a 26.5 ºC
P.H Neutro o ligeramente alcalino (Axelrod, 1994; Toshiro,
1999; MacDonald, 1999).
Tipo de agua Requiere aguas blandas.
Disponibilidad de área Debido a su gran tamaño es recomendable mantenerlos
en piletas o estanques, con rocas grandes en el piso, ya
que es inútil mantener substratos pequeños, ya que a
este pez le gusta excavar el fondo de los estanques.
Tipo de alimento Es un pez muy voraz, que se acopla muy bien al
alimento comercial cuyo tamaño de partícula sea


considerable. También recibe ávidamente trozos de
carne, hígado, corazón, pescado y camarón, sin
embrago, su alimento preferido son pequeños peces
que él pueda capturar, por lo que es recomendable
contar con un cultivo alterno de guppies y/o tilapias de
desecho.
Dimorfismo sexual El sexaje es algo difícil.
Selección de
Reproductores
En época de reproducción la papila de la hembra se
encuentra engrosada y roma, mientras que la del macho
se ve alargada y puntiaguda (Axelrod, 1994 y Toshiro,
1999).
Reproducción Al igual que en los casos anteriores una vez
conformadas las parejas se pueden retirar a acuarios
independientes o también algunos cultivadores
acostumbran a dejarlos en los acuarios comunitarios y
después recoger las larvas, pero en todo caso es más
efectivo el primer método.
Generalmente desovan en superficies planas,
transportando después los huevos a pequeños nidos en
donde es evidente el cuidado parental.
Para el desove se recomienda acondicionar el estanque
ubicando en el fondo del acuario un substrato,
generalmente de arena, sobre el que se ponen rocas
grandes, macetas de barro, bloques y en general que
permitan elegir por la pareja el sitio más adecuado para
la postura. Una hembra desova en promedio 500 a 600
huevos. Luego inicia el cuidado parental, el cual se lleva
a cabo normalmente en una depresión en la arena del
tanque.
Incubación Dura 3 a 4 días y lo más aconsejable es dejar a las crías
con sus padres, hasta la reabsorción del saco vitelino,
cuando ya pueden nadar libremente.
Manejo de larvas Es conveniente suministrar rotíferos y dafnias o bien,
mantener abonado el estanque durante todo el proceso
de reproducción. Las larvas se trasladan al nuevo
estanque a los 12 días de nacidas, y empiezan a recibir
fácilmente los concentrados comerciales, aunque es
bueno que tengan a disposición plancton
Alevinaje El alimento debe suministrarse la mayor cantidad de
veces al día, hasta que los ejemplares alcancen una
talla de 3 cm (40 días después), día en el que su
alimento preferido son los guppies, los cuales, en lo


posible se deben suministrar a diario.
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